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        氧化應(yīng)激調(diào)控在CHO 細胞培養(yǎng)中的應(yīng)用

        2021-09-02 05:53:24孔倩倩陳飛白曉雨張娟
        生物化工 2021年4期
        關(guān)鍵詞:胞內(nèi)細胞培養(yǎng)抗氧化劑

        孔倩倩,陳飛,白曉雨,張娟*

        (1.中國藥科大學 生命科學與技術(shù)學院,江蘇南京 211100;2.上海藥明生物技術(shù)有限公司 細胞培養(yǎng)工藝開發(fā)部,上海 200131)

        近年來,隨著單克隆抗體(Monoclonal Antibody,mAb)市場規(guī)模的擴大,以全人源化抗體為主導,雙特異性抗體(Bispecific antibody,BsAb)、抗體偶聯(lián)藥物(Antibody-Drug Conjugate,ADC)等改良型抗體先后問世,可有效治療多種疾病[1]。哺乳動物細胞表達系統(tǒng)是生物制藥的首選生產(chǎn)平臺,能夠提供特定的翻譯后修飾,其表達產(chǎn)物在分子結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)和生物學功能方面最接近天然的高等生物蛋白質(zhì)分子。由于具有可在無血清培養(yǎng)基中懸浮培養(yǎng)、被動物病毒污染風險低、較少分泌內(nèi)源性蛋白且易于基因改造的特點,中國倉鼠卵巢(Chinese Hamster Ovary,CHO)細胞已作為治療性蛋白生產(chǎn)的主要宿主細胞[2]。

        正常細胞狀態(tài)下,胞內(nèi)代謝產(chǎn)生的活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)可 被 谷 胱 甘 肽(Glutathione,GSH)等抗氧化防御系統(tǒng)中和,維持氧化還原穩(wěn)態(tài)。在CHO 細胞生產(chǎn)外源蛋白的過程中,高水平表達往往加劇培養(yǎng)過程中的氧化壓力,不適當?shù)呐囵B(yǎng)條件和工藝控制條件則會進一步引起胞內(nèi)ROS 和抗氧化系統(tǒng)失衡,從而導致氧化應(yīng)激。氧化損傷嚴重時可導致凋亡、線粒體功能紊亂和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,影響細胞正常生理活動[3]。

        因此,緩解細胞培養(yǎng)時出現(xiàn)的氧化應(yīng)激,在改善生長代謝以及提高抗體產(chǎn)量方面具有重要意義。目前,基因工程、抗氧化型添加劑和培養(yǎng)過程控制是應(yīng)用較為廣泛的氧化應(yīng)激調(diào)節(jié)手段,可有效減少ROS的產(chǎn)生或增強CHO 細胞抗氧化能力以維持氧化還原平衡。

        1 哺乳動物細胞培養(yǎng)與氧化應(yīng)激

        1.1 活性氧及其來源

        活性氧(ROS)是含氧且具有高度化學活性的幾種分子的總稱,主要包括超氧陰離子(O2-·)、羥自由基(OH·)等自由基分子,以及過氧化氫(H2O2)、單線態(tài)氧(1O2)等非自由基分子。ROS 作為信號分子,介導胞內(nèi)許多生理過程[4]。在培養(yǎng)過程中,培養(yǎng)基中的物質(zhì)還可以與O2、光照或其他成分相互作用而產(chǎn)生ROS[8]。例如核黃素對光敏感,光照下可產(chǎn)生大量ROS,培養(yǎng)基中存在色氨酸、酪氨酸、葉酸、吡哆醇時,還可以進一步促進核黃素產(chǎn)生ROS[9]。葉酸在光照和O2存在時降解,也可生成ROS[10]。且商業(yè)培養(yǎng)基中通常缺乏抗氧化劑,添加抗壞血酸、兒茶素等抗氧化劑時,也需考慮它們的穩(wěn)定性,以及是否可與其他成分反應(yīng)生成ROS[11-12]。

        1.2 細胞內(nèi)的抗氧化防御

        細胞內(nèi)的抗氧化防御系統(tǒng)包括酶類和非酶類抗氧化劑,可通過直接清除ROS、抑制ROS 產(chǎn)生或上調(diào)抗氧化能力等方式維持ROS 穩(wěn)態(tài)。

        酶類抗氧化劑又可分為一級和二級[13]。一級抗氧化酶可催化ROS 轉(zhuǎn)化為更穩(wěn)定的分子。例如,超氧化物歧化酶(SOD)通過還原催化O2-·歧化為H2O2,降低ROS 毒性;過氧化氫酶(CAT)可高效催化H2O2轉(zhuǎn)變?yōu)镠2O 和O2;谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)利用GSH 作為還原劑,清除H2O2,還可催化脂質(zhì)過氧化物轉(zhuǎn)化為相應(yīng)的醇[14]。二級抗氧化酶可與其他內(nèi)源性抗氧化劑協(xié)同作用,間接中和ROS。例如,谷胱甘肽還原酶(GR)利用NADPH 作為還原劑,催化氧化型谷胱甘肽(GSSG)再生成GSH,維持胞內(nèi)GSH 水平;葡萄糖-6-磷酸脫氫酶(G6PD)參與磷酸戊糖途徑時,再生NADPH[13]。

        上述大分子抗氧化酶是胞內(nèi)ROS 清除的主要途徑,同時也有小分子抗氧化劑,直接清除或作為酶系統(tǒng)的輔助因子參與維持氧化還原平衡。細胞內(nèi)的非酶類抗氧化劑可根據(jù)溶解性分為兩類:一類為水溶性,如GSH、抗壞血酸、半胱氨酸及金屬結(jié)合蛋白等;另一類為脂溶性,如α-生育酚、輔酶Q 等[15]。他們與抗氧化酶共同作用,與細胞內(nèi)的ROS 抗衡。

        1.3 氧化應(yīng)激的影響

        細胞內(nèi)ROS 生成增加或抗氧化能力降低,使平衡出現(xiàn)紊亂時,將引起氧化應(yīng)激、氧化還原信號和控制中斷和/或分子損傷。細胞培養(yǎng)時,培養(yǎng)基成分和高糖高氧環(huán)境可提高ROS 水平,培養(yǎng)體系惡化、內(nèi)外源抗氧化劑耗竭也可降低細胞抗氧化防御能力[16]。

        當氧化應(yīng)激發(fā)生時,胞內(nèi)抗氧化防御系統(tǒng)首先增強,通過清除ROS 拮抗氧化系統(tǒng);但當氧化壓力超出拮抗能力時,將引起DNA、蛋白質(zhì)和脂質(zhì)的氧化損傷,甚至細胞出現(xiàn)損傷。胞內(nèi)過多ROS 會導致DNA堿基修飾或缺失、鏈斷裂、雙鏈畸變等形式的DNA 損傷,而后引發(fā)DNA修復、細胞周期延遲甚至細胞凋亡。其中,線粒體DNA 極易受到氧化損傷,且呼吸鏈產(chǎn)生的ROS 導致的線粒體DNA 損傷能反過來使呼吸鏈功能失效,進一步促進ROS 產(chǎn)生。ROS 可氧化修飾蛋白質(zhì)中的半胱氨酸、色氨酸、酪氨酸等,介導肽裂解,引起蛋白質(zhì)與脂質(zhì)過氧化物反應(yīng)形成交聯(lián),使其正常功能受損,或出現(xiàn)沒有功能的堆積,進而導致細胞損傷。ROS 還可攻擊生物膜中的不飽和脂肪酸,促使其氧化或過氧化,生成脂質(zhì)過氧化物,使生物膜的流動性降低,最終改變膜通透性、膜受體、膜蛋白酶和離子通道活性,影響眾多生物學功能[4]。

        ROS 導致的氧化應(yīng)激是造成細胞凋亡的重要環(huán)節(jié),可通過內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激(ERS)反應(yīng)途徑、絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)通路、核因子(NF-kB)通路、Caspase 和Bcl-2 家族等機制使細胞凋亡。在培養(yǎng)過程中,上述生物大分子氧化損傷嚴重時,將導致線粒體功能紊亂和代謝效率降低,且影響蛋白質(zhì)穩(wěn)態(tài)和結(jié)構(gòu)修飾,對細胞生長代謝和蛋白產(chǎn)量質(zhì)量不利。

        2 基因工程

        運用基因編輯和基因干擾等技術(shù),減少產(chǎn)生ROS的代謝活動或增強細胞抗氧化防御能力,理論上可以緩解培養(yǎng)過程中出現(xiàn)的氧化應(yīng)激。但通過調(diào)控相關(guān)基因減少ROS 生成,可能影響細胞代謝產(chǎn)能、蛋白質(zhì)折疊等基本生理過程,不利于實際生產(chǎn)。因此,通常運用基因工程提高細胞抗氧化能力。

        最初,研究者在CHO 細胞中表達hMn-SOD[17]和hGR[18],明顯提高了細胞對氧化損傷的抵抗能力。有研究在CHO 細胞中過表達?;撬徂D(zhuǎn)運蛋白(Taurine Transporter,TAUT),發(fā)現(xiàn)GSH 的前體谷氨酰胺消耗增加,認為TAUT 提高了胞內(nèi)GSH 水平而緩解了氧化損傷及凋亡,有效延長培養(yǎng)時間并使單抗產(chǎn)量提高近50%[19]。通過代謝組學[20]和蛋白質(zhì)組學[21]分析發(fā)現(xiàn),高產(chǎn)CHO 細胞表現(xiàn)出更高的GSH含量。在此基礎(chǔ)上,研究者建立穩(wěn)定表達谷氨酸半胱氨酸連接酶(Glutamate Cysteine Ligase,Gcl)兩種亞基的CHO 細胞系以增加GSH 合成,發(fā)現(xiàn)過表達其修飾亞基Gclm 可提高70%單抗產(chǎn)量,而過表達其催化亞基Gclc 雖產(chǎn)生更多GSH,但未提高單抗產(chǎn)量[22]。還有研究者采用蛋氨酸磺基肟(Methionine Sulfoximine,MSX)和丁硫氨酸-亞砜胺(L-Buthionine Sulfoximine,BSO)抑制GS-CHOKISV 細胞系的Gcl活性,單抗產(chǎn)量反而提高1 倍,可能由于GSH 耗竭促進了其從頭合成途徑,阻止細胞分裂并伴隨著PDI/ERO1 維持在活躍的氧化態(tài)而促進蛋白合成[23]。最新研究發(fā)現(xiàn),在CHO-DG44 細胞系中采用BSO 抑制Gcl 活性,使GSH 顯著耗竭時,63 種蛋白質(zhì)表達水平發(fā)生變化以適應(yīng)氧化應(yīng)激,細胞生長和生產(chǎn)下降[24]。盡管關(guān)于調(diào)控CHO 細胞GSH 合成途徑的研究存在不一致的結(jié)果,但該方向依然為CHO 細胞改造提供了可行思路。

        此外,一些轉(zhuǎn)錄因子、抗凋亡蛋白或miRNA 的研究也取得了成果。已知激活轉(zhuǎn)錄因子4(Activating Transcription Factor 4,ATF4)在調(diào)節(jié)氧化應(yīng)激和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激中發(fā)揮關(guān)鍵作用,在CHO 細胞中過表達ATF4 使抗體產(chǎn)量增加到2.4 倍[25]。將人葡萄糖調(diào)節(jié)蛋白78(GRP78)在CHO 細胞中過表達,在氧化應(yīng)激和血清剝奪條件下,提高了活率和抗體產(chǎn)量[26]。使用miRNA 海綿耗竭miR-23,使CHO 細胞線粒體活性升高,抗氧化蛋白中TXNRD1 和PRDX6表達量升高,氧化防御能力增強,最終酶產(chǎn)量平均提高3 倍[27]。

        上述通過改造與氧化應(yīng)激相關(guān)的酶、轉(zhuǎn)錄因子或蛋白表達的研究,在減少細胞凋亡和提高抗體產(chǎn)量方面已有所突破。值得注意的是,抗氧化與調(diào)控凋亡和蛋白生產(chǎn)的關(guān)系十分復雜,也可能在不同選擇系統(tǒng)的CHO 細胞中表現(xiàn)不同。并且這些改造大部分處于研究階段,暫未運用于大規(guī)模生產(chǎn),其工業(yè)化應(yīng)用可行性仍需進一步評估。

        3 抗氧化型添加劑

        在培養(yǎng)過程中,環(huán)境惡化導致胞內(nèi)抗氧化系統(tǒng)無法與大量產(chǎn)生的ROS 抗衡時,添加一些外源性抗氧化劑可清除ROS 或穩(wěn)定培養(yǎng)基成分,有助于緩解氧化應(yīng)激,改善細胞生長及生產(chǎn)??寡趸瘎┛煞譃榱虼蓟衔?、維生素、微量元素及螯合劑和多元酚類,它們在CHO 細胞培養(yǎng)中的作用見表1。

        表1 CHO 細胞培養(yǎng)時添加的抗氧化劑及其作用

        添加時需考慮抗氧化劑自身穩(wěn)定性、是否可與培養(yǎng)基中成分反應(yīng)生成ROS 以及培養(yǎng)基中成分配比,避免抗氧化劑濃度過高時轉(zhuǎn)變?yōu)榇傺趸饔谩?/p>

        4 培養(yǎng)過程控制

        除了運用基因工程和添加抗氧化劑外,培養(yǎng)時合理控制溫度、pH、溶解氧含量(dissolved oxygen,DO)、二氧化碳分壓(pCO2)、攪拌速率以及補料流加速率等工藝參數(shù),使細胞維持良好氧化還原狀態(tài),也是改善生產(chǎn)的關(guān)鍵方面。

        動物細胞開放培養(yǎng)通常在5% CO2環(huán)境中,氧壓力高達150 mmHg,高O2水平會增加ROS 產(chǎn)生[16]。而實際大規(guī)模生產(chǎn)時,DO 值通??刂圃?0%~80%,一般不會出現(xiàn)高氧誘導ROS 大量生成,但隨著細胞生長代謝,O2含量將大幅波動,且培養(yǎng)體積越大,培養(yǎng)基表面和下層細胞間的氧濃度梯度會越嚴重,甚至出現(xiàn)局部缺氧的狀況[53]。研究發(fā)現(xiàn),CHO 細胞在高氧壓力下具有更高的GSH 水平,而氧壓力過高時GSH 不足以抵抗氧化應(yīng)激,細胞生長將受到抑制,且從缺氧到復氧狀態(tài),細胞對O2的敏感性增加[54],升高的O2水平又可引起細胞再氧化產(chǎn)生ROS[55]。此外,有研究發(fā)現(xiàn),DO 值在20%~75%時,CHO 細胞生長狀態(tài)相似,但胞內(nèi)氧化還原和單抗產(chǎn)量差異顯著;隨著溶解的O2增加,胞內(nèi)H2O2增加,而還原酶活性相似,胞內(nèi)抗氧化機制難以控制氧化應(yīng)激[56]。因此,考慮到氧含量對胞內(nèi)氧化還原平衡的潛在干擾,需嚴格控制通氣量和攪拌轉(zhuǎn)速,維持培養(yǎng)體系O2均勻,并盡量降低剪切力造成的細胞損傷[2]。

        葡萄糖是培養(yǎng)基中最主要的能源物質(zhì),濃度高時誘導胞內(nèi)ROS 大量生成和細胞凋亡[57]。CHO 細胞培養(yǎng)時,應(yīng)合理選擇培養(yǎng)基和補料策略,嚴格控制體系中葡萄糖濃度,避免濃度過高引起乳酸累積或濃度過低影響正常代謝和蛋白糖基化。

        研究顯示,不同培養(yǎng)模式間也存在氧化壓力的差別,灌流培養(yǎng)與補料分批培養(yǎng)相比,CHO 細胞在生長穩(wěn)定期由重金屬離子和線粒體產(chǎn)生的H2O2減少,GSH/GSSG 比例提高,維持了良好的氧化還原環(huán)境而有效減輕二硫鍵錯配,最終表現(xiàn)為更高的活率和產(chǎn)量,以及更低的雙抗聚集體[58]。

        上述關(guān)于O2、葡萄糖濃度和培養(yǎng)模式的研究,再次強調(diào)了細胞培養(yǎng)過程中維持氧化還原穩(wěn)態(tài)的重要性。

        5 展望

        目前,隨著高細胞密度和高產(chǎn)量的CHO 細胞培養(yǎng)工藝發(fā)展,高水平代謝活動和副產(chǎn)物累積引起的氧化壓力增加及其導致的氧化應(yīng)激不容忽視。由于ROS 具有高反應(yīng)性、動態(tài)性、空間分布復雜的特點,且胞內(nèi)同時存在多種抗氧化物,不同部位的氧化還原能力與耐受能力也不同,在培養(yǎng)過程的動態(tài)環(huán)境變化下,難以精確監(jiān)測ROS 水平?;蚬こ淘谔岣呒毎寡趸烙芰Α⒖沟蛲?、調(diào)節(jié)代謝、提高蛋白表達和改善糖基化方面已有眾多研究,但研究成果尚未得到全面的工業(yè)化應(yīng)用。添加抗氧化劑可調(diào)控氧化還原內(nèi)環(huán)境,但額外添加不一定有利,實際應(yīng)用時需考慮細胞狀態(tài)和培養(yǎng)基成分,以及這些試劑對培養(yǎng)基貯存、蛋白純化分析、殘留量檢測等方面的影響。培養(yǎng)過程控制,尤其是保持合適O2水平,則在放大生產(chǎn)時充滿技術(shù)挑戰(zhàn)。

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