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        四川某豬場豬藍(lán)耳病感染情況檢測分析

        2021-08-21 06:01:08曉,楊
        四川畜牧獸醫(yī) 2021年8期
        關(guān)鍵詞:耳病豬場陽性率

        胡 曉,楊 蕊

        (1.內(nèi)江市種豬場,四川 內(nèi)江 641007;2.西南大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院,重慶 榮昌 402460)

        豬繁殖與呼吸綜合征(PRRS)又名豬藍(lán)耳病,是20世紀(jì)80年代出現(xiàn)的一種新型高致病性傳染病。該病在1987年最早發(fā)現(xiàn)于美國。2007年1月我國將其列為一類動物疫病[1]。豬藍(lán)耳病在各個(gè)豬場之間廣泛傳播,有的豬場使用疫苗,而有的未使用,但均有一些豬場發(fā)病,主要引起繁殖母豬生產(chǎn)性能嚴(yán)重下降和仔豬的呼吸道癥狀,生長發(fā)育不良,甚至繼發(fā)細(xì)菌性傳染病,如副豬、傳胸等,給豬場造成了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。本試驗(yàn)以四川某豬場未進(jìn)行藍(lán)耳病疫苗免疫的3~4月齡架子豬為研究對象,采集血液樣本235 份分離血清,用間接ELISA 法檢測豬藍(lán)耳病抗體,同時(shí)根據(jù)豬藍(lán)耳病病毒ORF6 基因設(shè)計(jì)引物,采集19 份血液樣本進(jìn)行RT-PCR檢測。現(xiàn)將檢測結(jié)果報(bào)告如下:

        1 試驗(yàn)材料

        1.1 被檢血清及血液樣本的采集 血清樣本采集:隨機(jī)選擇四川某豬場未進(jìn)行藍(lán)耳病疫苗免疫的3~4月齡架子豬,前腔靜脈采血2~5 mL,共采集235 份,放入離心管中,室溫下靜置2~4 h,待血液凝固血清析出后,以3 000 r/min 離心分離血清,于-20 ℃保存待檢。

        血液樣本采集:使用醫(yī)用真空抗凝采血管,隨機(jī)采集未免疫的架子豬前腔靜脈血液2~5 mL,共采集19份,置4~8 ℃保存待檢。

        1.2 試劑 豬繁殖與呼吸綜合征抗體檢測試劑盒,山東綠都生物科技有限公司生產(chǎn)(批號:2018010136);RNA基因組提取試劑盒,寶生物工程(大連)有限公司生產(chǎn)(批號:20170503202)。

        2 方法

        2.1 豬血清藍(lán)耳病ELISA抗體檢測

        2.1.1 樣品準(zhǔn)備 將保存的待測血清取出,室溫靜置30 min,用試劑盒樣品稀釋液對血清樣品進(jìn)行40倍稀釋,陰、陽性對照進(jìn)行4倍稀釋。

        2.1.2 試劑準(zhǔn)備 將10×濃縮洗滌液在使用前恢復(fù)至室溫,有沉淀的等到其沉淀溶解,然后用蒸餾水進(jìn)行10 倍稀釋(即10 μL 濃縮洗滌液加入90 μL的蒸餾水)。

        2.1.3 操作步驟 將試劑盒取出,待其恢復(fù)至室溫。取出抗原包被板,根據(jù)樣品數(shù)拆分出需要的孔數(shù),并對樣品位置進(jìn)行標(biāo)記和記錄,在相應(yīng)孔的位置上加入稀釋好的樣品100 μL。各取100 μL 陰、陽性對照加入到抗原包被板中,每次檢測各設(shè)兩孔對照。加樣完成后,37℃孵育30min。將各孔的廢液棄去,每孔加入稀釋好的洗滌液200 μL洗板,重復(fù)此操作5次,每次2~3 min。倒掉洗滌液后將孔中殘留的液體拍干,每孔加入酶標(biāo)二抗100 μL,37 ℃孵育30 min。再將孔中液體棄去,加入洗滌液洗板,重復(fù)5 次,拍干,每孔加入100 μL TMB 底物液。37 ℃孵育15 min 后,用移液槍在板條上每孔加50 μL 的終止液,立刻于450 nm波長處用酶標(biāo)儀測定各孔的吸光值。

        2.1.4 結(jié)果判斷(按試劑盒說明書進(jìn)行)豬繁殖與呼吸綜合征病毒抗體的陰陽性需通過計(jì)算每個(gè)樣品的S/P值來判斷。

        計(jì)算方法:樣本S/P 值=(樣本OD 值-陰性值的平均值)/(陽性值的平均值-陰性值的平均值)。

        若樣品S/P 值≥0.25,則判定為抗體陽性;若樣品S/P值≤0.20,則判定為抗體陰性;若0.20≤樣品S/P值≤0.25,則判定為可疑。

        2.2 藍(lán)耳病RT-PCR檢測

        2.2.1 藍(lán)耳病病毒ORF6 基因引物合成 根據(jù)已知的ORF6 基因引物序列,送上海生工生物公司合成(見表1)。

        表1 ORF6基因引物

        2.2.2 豬藍(lán)耳病病毒RNA 的提取 將保存的待測液取出加入100~200 μL 氯仿,用力搖勻。將加好氯仿的血液樣品以12 000 r/min 冷凍離心15 min,吸取上清液移入到新的去RNA 酶離心管中,加入0.25 mL異丙醇,輕柔地翻轉(zhuǎn)幾次將其搖勻,在冰盒上靜置35 min后以12 000 r/min冷凍離心15 min,棄去上清液取400 μL 用75%的酒精進(jìn)行三次洗滌,盡量去除離心管內(nèi)的異丙醇等其他物質(zhì)。用移液槍把離心管內(nèi)剩余的液體盡量吸干凈,打開離心管蓋放冰盒上10 min 待酒精揮發(fā)晾干,根據(jù)沉淀的多少加入20~40 μL 的去RNA 酶水,懸浮靜置片刻待其溶解后保存?zhèn)溆谩?/p>

        2.2.3 豬藍(lán)耳病病毒RNA 的反轉(zhuǎn)錄 將上一步獲得的RNA作為模板,根據(jù)實(shí)驗(yàn)室制定的反轉(zhuǎn)錄條件配制反轉(zhuǎn)錄體系。在PCR儀上進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,經(jīng)過30 ℃退火反應(yīng),42 ℃延伸反應(yīng),99 ℃變性反應(yīng)后獲得豬藍(lán)耳病病毒cDNA。反轉(zhuǎn)錄體系見表2,反轉(zhuǎn)錄條件見表3。

        表2 反轉(zhuǎn)錄體系

        表3 反轉(zhuǎn)錄條件

        2.2.4 ORF6基因PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系及條件 將以上反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物作為模板,用上、下游引物擴(kuò)增目的基因片段,再添加Taq DNA酶、dNTP于PCR反應(yīng)管中,用ddH2O 配平反應(yīng)體系。然后將PCR反應(yīng)管置于PCR擴(kuò)增儀中,發(fā)生預(yù)變性、變性、退火、延伸、總延伸反應(yīng),同時(shí)經(jīng)過30 個(gè)循環(huán)后,得到PCR產(chǎn)物。反應(yīng)體系及條件見表4。

        表4 PCR反應(yīng)體系及條件

        2.2.5 PCR 產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳 取0.4 g 瓊脂糖加入40 mL 水配制成濃度為1%的凝膠,在微波爐上熔至清澈透明的溶液狀。冷卻到60 ℃左右,加入EB 染料,搖勻,倒入事先安裝好的水平電泳槽內(nèi),凝膠厚度一般為3~5 mm,等到凝膠完全凝固后,室溫下放置30 min。根據(jù)樣品量選用梳子,在梳子齒附近加入少量電泳緩沖液,后緩慢輕輕地向上拔掉梳子,將凝膠放入電泳槽中,用移液器吸取樣品注入孔內(nèi)。給電泳儀通上電,30 min 后在凝膠成像系統(tǒng)中觀察結(jié)果。

        3 試驗(yàn)結(jié)果

        3.1 豬血清藍(lán)耳病ELISA 抗體檢測結(jié)果 對未免疫的235 份血清樣品進(jìn)行ELISA 抗體檢測,結(jié)果得出陽性149份,陰性52份,可疑34份,陽性率為63.4%。

        3.2 豬藍(lán)耳病RT-PCR 擴(kuò)增結(jié)果 利用RTPCR方法對19份血液樣本進(jìn)行藍(lán)耳病病毒檢測,結(jié)果顯示:19 份樣本中只有367-8 號樣本為陽性,其余18份樣本均為陰性,陽性率為5.26%(見表5)。

        表5 豬藍(lán)耳病RT-PCR擴(kuò)增結(jié)果

        4 討論

        4.1 Albina 等[2]用PRRSV 接種豬肺泡巨噬細(xì)胞(PAMs)培養(yǎng)病毒抗原,首次建立了檢測PRRSV抗體的酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn),其特異性和敏感性高于過氧化物酶單層試驗(yàn)(IPMA)和間接免疫熒光法(IFA)。本試驗(yàn)也采用ELISA 方法對未免疫架子豬的血清進(jìn)行(PRRSV)抗體檢測。結(jié)果陽性有149份,陽性率為63.4%。劉琳[3]對中西部部分地區(qū)的未免疫規(guī)?;i場進(jìn)行PRRSV ELISA 抗體檢測,得出陽性率為84.46%;郝中香等[4]對四川省某個(gè)未免疫規(guī)模化豬場的70 份血清進(jìn)行PRRSV ELISA抗體檢測,結(jié)果陽性率為90%。本試驗(yàn)對PRRSV的陽性檢出率均低于上述報(bào)道,說明該場豬藍(lán)耳病感染沒有上述報(bào)道的嚴(yán)重,但陽性率仍然較高,達(dá)到63.40%,應(yīng)引起豬場的高度重視。

        4.2 RT-PCR 法被廣泛應(yīng)用于豬藍(lán)耳病病毒的檢測,目前已成為實(shí)驗(yàn)室診斷藍(lán)耳病毒的主要手段。其主要優(yōu)點(diǎn)是特異性強(qiáng)、靈敏度高,不用進(jìn)行病毒分離鑒定,省時(shí)、省力。但是在臨床實(shí)踐中,越來越多的藍(lán)耳病病毒開放閱讀框(ORF)出現(xiàn)變異情況,針對不同開放閱讀框設(shè)計(jì)的引物的特異性不強(qiáng),RT-PCR 診斷結(jié)果的差異較大。在整個(gè)藍(lán)耳病病毒基因組中,以O(shè)RF6 最為保守,可作為分子生物學(xué)鑒定的重要依據(jù)。因此,本試驗(yàn)選用ORF6 基因設(shè)計(jì)引物,對采集的血液樣本進(jìn)行RT-PCR 擴(kuò)增,結(jié)果得出陽性率為5.26%。漆信橋[5]對四川省各地送檢的100 份血清樣本進(jìn)行藍(lán)耳病毒RT-PCR 檢測,得出陽性率為34%;蔣劉柱[6]對四川綿陽地區(qū)部分疑似發(fā)病豬場的78 份樣本進(jìn)行藍(lán)耳病毒RT-PCR 檢測,得出陽性率為35.90%。本試驗(yàn)結(jié)果與上述報(bào)道相比,陽性檢出率較低,其原因可能與檢測樣本較少,缺乏代表性,或感染時(shí)間較長,病毒血癥狀消失有關(guān)。

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