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        釀造蝦頭蝦殼功能性調(diào)味料用高產(chǎn)菌株選育研究

        2021-08-09 03:00:42王常高杜馨林建國(guó)趙澤鑫蔡俊
        中國(guó)調(diào)味品 2021年8期
        關(guān)鍵詞:蝦殼致死率懸液

        王常高,杜馨,林建國(guó),趙澤鑫,蔡俊

        (湖北工業(yè)大學(xué)發(fā)酵工程教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,工業(yè)微生物湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,工業(yè)發(fā)酵湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心,武漢 430068)

        小龍蝦,又稱克氏原鰲蝦或淡水小龍蝦,不僅營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高,而且肉質(zhì)鮮美、食用方式多樣,深受廣大消費(fèi)者喜愛(ài)。近年來(lái),小龍蝦的養(yǎng)殖和消費(fèi)量都呈現(xiàn)不斷增長(zhǎng)的趨勢(shì),使得小龍蝦已經(jīng)成為我國(guó)重要的經(jīng)濟(jì)養(yǎng)殖品種[1-3]。然而,目前小龍蝦的可食用部分——蝦尾蛋白仁僅占整個(gè)蝦體重量的1/3,每食用或生產(chǎn)1噸的蝦仁將產(chǎn)生2~3噸的蝦頭蝦殼副產(chǎn)物。蝦頭蝦殼副產(chǎn)物以前直接扔掉,不僅浪費(fèi)資源,且造成環(huán)境的污染,之后逐漸開(kāi)始加以利用,早期只是將其簡(jiǎn)單干燥粉碎后添加到各種飼料中,附加值不高[4]。后來(lái)利用酸堿等化學(xué)法從中提取甲殼素使其利用價(jià)值得到提升,但因新的環(huán)境污染而被限制使用[5]。

        近年來(lái),研究人員不斷嘗試?yán)酶鞣N發(fā)酵法、酶法、萃取法等生化方法來(lái)開(kāi)發(fā)利用蝦頭蝦殼中的各種有效成分,既可減少環(huán)境污染,又可使資源得到充分利用[6]。蝦仁加工廠產(chǎn)生的蝦頭蝦殼等副產(chǎn)物中含有豐富的蛋白質(zhì)、不飽和脂肪酸、磷脂、蝦青素、甲殼素、礦物質(zhì)等多種營(yíng)養(yǎng)性和功能性有效成份[7-11]。將蝦仁加工廠余留的新鮮蝦頭蝦殼作為原材料,利用酶解或微生物發(fā)酵作用,可用來(lái)制備各種新型調(diào)味料,不僅具有良好的營(yíng)養(yǎng)和增鮮調(diào)味作用,而且具有一定的功能性作用[12-15]。為提高蝦頭蝦殼中有效成分的利用率,本研究對(duì)蝦頭蝦殼功能性醬油釀造用菌種——米曲霉(滬釀3.042)進(jìn)行了多次誘變選育,以提高其在以蝦頭蝦殼為主料的基質(zhì)中的生長(zhǎng)適應(yīng)性和產(chǎn)酶水平。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 菌株

        米曲霉(滬釀3.042):本實(shí)驗(yàn)室保藏菌種。

        1.1.2 蝦頭蝦殼原料

        潛江市熟制冷藏蝦仁加工廠提供的烘干蝦頭蝦殼粉碎產(chǎn)品(顆粒大小2~3 mm),先用有機(jī)酸進(jìn)行浸泡脫鈣處理,洗滌抽濾后于冰箱中保藏備用。

        1.1.3 培養(yǎng)基

        斜面種子培養(yǎng)基:察氏酵母膏瓊脂(CYA)。

        初篩用酪素平板培養(yǎng)基:A:Na2HPO4·7H2O 1.1 g,干酪素4 g,KH2PO40.36 g,MgSO40.05 g,酪素水解液0.3 mL,水1000 mL,瓊脂粉20 g;B:稱取 BaCl25 g用牛皮紙包好。將A與B分開(kāi)滅菌后,在無(wú)菌條件下趁熱混勻,倒入無(wú)菌培養(yǎng)皿內(nèi)制成平板,于121 ℃滅菌 20 min。

        復(fù)篩用固體培養(yǎng)基:脫鈣后的濕蝦頭蝦殼粉90 g,麩皮10 g,水50 mL,于121 ℃滅菌30 min。

        1.2 方法

        1.2.1 孢子懸浮液制備

        取保藏菌株接種于新鮮的斜面種子培養(yǎng)基,30 ℃培養(yǎng)3 d,取兩環(huán)活化孢子于盛有玻璃珠和pH 7.0無(wú)菌磷酸緩沖液的三角瓶中,振蕩20 min,得單孢子懸液。懸液用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),調(diào)整孢子懸液濃度為106個(gè)/mL左右。

        1.2.2 誘變處理方法

        紫外線(UV)誘變:各取孢子懸液15 mL放入5個(gè)90 mm無(wú)菌玻璃平皿中,在磁力攪拌作用下,用紫外燈(30 W,40 cm)取不同時(shí)間分別進(jìn)行照射處理,繪制UV的致死曲線。選取75%左右致死率的時(shí)間再進(jìn)行孢子懸液誘變處理,適當(dāng)稀釋后涂酪素平板。

        硫酸二乙酯(DES)誘變處理:取經(jīng)UV誘變篩選后所得變異菌株,用不同劑量的DES誘變處理,測(cè)定DES對(duì)變異菌株的誘變致死率,根據(jù)致死率選擇合適的DES誘變劑量處理變異菌株的孢子懸液,加25% Na2S2O3溶液中止誘變反應(yīng),將處理后的懸液適當(dāng)稀釋后涂酪素平板。

        1.2.3 變異菌株的篩選

        酪素平板水解透明圈初篩法:將經(jīng)過(guò)誘變處理后的孢子懸液進(jìn)行不同程度稀釋后涂布于酪素平板,30 ℃培養(yǎng)3 d,從中選取分離好、透明圈大且清晰、孢子致密的菌落,用無(wú)菌牙簽取少量孢子再點(diǎn)種于酪素平板,30 ℃培養(yǎng)3 d,分別測(cè)定各個(gè)單菌落透明圈直徑和菌落直徑,計(jì)算 HC值。HC值=透明圈直徑/菌落直徑。選取HC值較大的菌株進(jìn)行復(fù)篩。

        固態(tài)發(fā)酵復(fù)篩法:將經(jīng)過(guò)初篩后所得菌株的孢子懸浮液,分別接種于復(fù)篩固體培養(yǎng)基,攤開(kāi)成1 cm的薄層在雙層紗布上,于恒溫恒濕培養(yǎng)箱中28 ℃、100%相對(duì)濕度(RH)條件下培養(yǎng)72 h,測(cè)定蛋白酶活力。選取蛋白酶活最高的菌株作為下一步誘變的出發(fā)菌株或作為生產(chǎn)菌株。

        1.2.4 蛋白酶活力測(cè)定方法

        采用Folin-酚法測(cè)定蛋白酶活力。

        準(zhǔn)確稱取鮮曲5 g加50 mL pH 7.2、0.2 mol/L磷酸緩沖液,將曲充分打散,于40 ℃水浴中恒溫浸提1 h,用定性濾紙過(guò)濾,得酶液。酶液用磷酸緩沖液進(jìn)行適當(dāng)稀釋后用Folin-酚法測(cè)其蛋白酶活,同時(shí)測(cè)定鮮曲水分含量。

        蛋白酶活力單位定義:在40 ℃、pH 7.2條件下,每分鐘水解酪蛋白產(chǎn)生1 μg酪氨酸的酶量為一個(gè)酶活力單位(U)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 UV誘變結(jié)果

        2.1.1 UV誘變致死曲線

        將經(jīng)過(guò)不同時(shí)間UV誘變處理后的孢子懸浮液適當(dāng)稀釋后涂布在CYA平板上,30 ℃培養(yǎng)3 d,根據(jù)平板上長(zhǎng)出的菌落數(shù)與未經(jīng)處理的平板上菌落數(shù)進(jìn)行比較,計(jì)算各照射時(shí)間下的致死率,結(jié)果見(jiàn)圖1。

        圖1 UV誘變致死曲線Fig.1 The lethality curve of UV mutation

        一般認(rèn)為,UV誘變?cè)?5%致死率時(shí)正突變率比較高。由圖1可知,照射時(shí)間為120 s時(shí),該菌株的UV誘變致死率(76%)在75%左右,所以后面的誘變時(shí)間采用120 s。

        2.1.2 UV誘變初篩結(jié)果

        將米曲霉孢子懸液用紫外線照射120 s后,涂布于酪素平板上,選取15株單菌落分離好、透明圈大且清晰的菌落再點(diǎn)種在酪素平板,培養(yǎng)后測(cè)得各菌落的HC值為:原種1.32、U-11.37、U-21.45、U-31.36、U-41.62、U-51.73、U-61.71、U-71.56、U-81.33、U-91.67、U-101.78、U-111.43、U-121.82、U-131.72、U-141.58、U-151.69。

        由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,挑選出的15株突變菌株的HC值都比出發(fā)菌株要大一些。為進(jìn)一步驗(yàn)證其產(chǎn)酶水平,從中挑選HC值最大的U-5、U-10、U-12和U-13進(jìn)行固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)酶。

        2.1.3 UV誘變復(fù)篩結(jié)果

        將經(jīng)過(guò)UV誘變初篩挑選出的4株突變菌株和原種分別接種到復(fù)篩固體培養(yǎng)基進(jìn)行發(fā)酵產(chǎn)酶,用Folin-酚法檢測(cè)其蛋白酶活,結(jié)果為:原種3128 U/g(干曲)、U-54836 U/g(干曲)、U-105261 U/g(干曲)、U-126749 U/g(干曲)、U-134904 U/g(干曲)。

        由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,蛋白酶活最高的是U-12,這與初篩的結(jié)果基本是一致的。選取U-12作為出發(fā)菌株進(jìn)行后面的DES誘變處理。

        2.2 DES誘變結(jié)果

        2.2.1 DES誘變致死率

        取U-12孢子懸液各10 mL,分別加入不同劑量的DES醇溶液,以配制成0%、0.2%、0.4%、0.6%、0.8%和1.0%不同的終濃度,充分振蕩分散,于30 ℃振蕩處理2 h,分別加入5 mL 25% Na2S2O3溶液中止誘變反應(yīng)。將處理后的懸液適當(dāng)稀釋后涂CYA平板。與未經(jīng)處理的U-12進(jìn)行比較,根據(jù)平板上長(zhǎng)出的菌落數(shù)計(jì)算出不同濃度下的致死率。結(jié)果為:0%的致死率0%,0.2%的致死率21%,0.4%的致死率58%,0.6%的致死率79%,0.8%的致死率93%,1.0%的致死率100%。

        為防止U-12回復(fù)突變,同時(shí)為進(jìn)一步提高其產(chǎn)酶水平,后面的誘變采用0.8%的高致死率劑量進(jìn)行誘變處理。

        2.2.2 DES誘變初篩結(jié)果

        取U-12孢子懸液用0.8%的DES處理,適當(dāng)稀釋后涂布于酪素平板,培養(yǎng)后選取12株單菌落分離好、透明圈大且清晰的菌落再點(diǎn)種于酪素平板,培養(yǎng)后分別測(cè)得各菌落的HC值為:U-121.80、UD-11.88、UD-21.86、UD-31.94、UD-41.85、UD-52.54、UD-62.23、UD-72.76、UD-81.90、UD-91.97、UD-101.88、UD-112.48、UD-12。

        根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,從中選取HC值最大的4株突變菌株UD-5、UD-6、UD-7、UD-11進(jìn)行后面的固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)酶復(fù)篩。

        2.2.3 DES誘變復(fù)篩結(jié)果

        將DES誘變初篩的4株突變菌株和U-12及原種的孢子懸液分別接種到復(fù)篩固體培養(yǎng)基進(jìn)行發(fā)酵產(chǎn)酶,用Folin-酚法分別檢測(cè)其蛋白酶活,結(jié)果為:原種3436 U/g(干曲)、U-126693 U/g(干曲)、UD-59752 U/g(干曲)、UD-68920 U/g(干曲)、UD-711059 U/g(干曲)、UD-119327 U/g(干曲)。

        由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,UD-7的蛋白酶活最高,干基酶活達(dá)到11059 U/g,比U-12和原種的蛋白酶活都有顯著提高。故后面選取UD-7突變菌株進(jìn)行制曲及釀造工藝條件的優(yōu)化實(shí)驗(yàn)研究。

        2.3 UD-7遺傳穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)

        將UD-7共進(jìn)行7次試管斜面?zhèn)鞔囵B(yǎng),每傳代一次,將其孢子懸液接種至復(fù)篩固體培養(yǎng)基進(jìn)行固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)酶,用Folin-酚法分別檢測(cè)其蛋白酶活,結(jié)果為:第Ⅰ代11210 U/g(干曲)、第Ⅱ代11078 U/g(干曲)、第Ⅲ代11432 U/g(干曲)、第Ⅳ代10986 U/g(干曲)、第Ⅴ代11105 U/g(干曲)、第Ⅵ代11350 U/g(干曲)、第Ⅶ代11097 U/g(干曲)。

        由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,經(jīng)過(guò)7次傳代培養(yǎng),UD-7的蛋白酶活水平都能保持在11000 U/g左右,沒(méi)有太大的變化,說(shuō)明UD-7具有較好的遺傳穩(wěn)定性,這為后面的進(jìn)一步研究及今后的工業(yè)化生產(chǎn)打下了良好的基礎(chǔ)。

        3 結(jié)論

        米曲霉(滬釀3.042)是我國(guó)醬油生產(chǎn)中廣泛應(yīng)用的最經(jīng)典生產(chǎn)菌種,在以豆粕、花生粕、麩皮等植物性蛋白為主要原料的基質(zhì)上生長(zhǎng)良好,產(chǎn)蛋白酶活水平高,生產(chǎn)轉(zhuǎn)化率高,醬油產(chǎn)品鮮香味濃郁[16-18]。本項(xiàng)目研究發(fā)現(xiàn),米曲霉在以蝦頭蝦殼粉等動(dòng)物性蛋白為主要原料的基質(zhì)上長(zhǎng)勢(shì)不太好,產(chǎn)蛋白酶活水平也不太高。為使該菌株適應(yīng)蝦頭蝦殼粉等動(dòng)物性蛋白生長(zhǎng)環(huán)境,提高其產(chǎn)蛋白酶活水平,從而提高原料中蛋白質(zhì)等有效成分的轉(zhuǎn)化利用率,先對(duì)米曲霉菌種進(jìn)行了多輪的誘變選育。

        通過(guò)UV誘變,得到了一株蛋白酶活較高的突變菌株U-12,其在以蝦頭蝦殼粉為主要原料的固體培養(yǎng)基上的蛋白酶產(chǎn)酶水平達(dá)到了6749 U/g(干曲),比出發(fā)菌株滬釀3.042(3128 U/g)提高了116%。在U-12的基礎(chǔ)上再通過(guò)DES誘變,得到了一株蛋白酶活最高的突變菌株UD-7,其在以蝦頭蝦殼粉為主要原料的固體培養(yǎng)基上的蛋白酶產(chǎn)酶水平達(dá)到11059 U/g(干曲),比U-12(6693 U/g)提高了65%,比出發(fā)菌株滬釀3.042(3436 U/g)提高了222%。通過(guò)7次傳代培養(yǎng)和固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)酶,其產(chǎn)蛋白酶活水平變化幅度不大,說(shuō)明其具有較好的遺傳穩(wěn)定性,這為后面的制曲和釀造研究過(guò)程打下了良好的基礎(chǔ)。

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