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        SHOX2體外增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞的遷移、侵襲和干細(xì)胞特性

        2021-07-22 11:29:50周俊豪周冉冉黃振輝劉存東
        關(guān)鍵詞:劃痕膀胱癌干細(xì)胞

        植 曦,周俊豪,田 湖,周冉冉,黃振輝,劉存東

        1南方醫(yī)科大學(xué)第三附屬醫(yī)院泌尿外科,廣東廣州 510630;2肇慶市第一人民醫(yī)院泌尿外科,廣東 肇慶526020

        膀胱癌是泌尿系統(tǒng)第2常見(jiàn)的惡性腫瘤,已成為嚴(yán)重的公共衛(wèi)生威脅之一[1,2]。約25%的膀胱癌為肌層浸潤(rùn)性膀胱癌,約75%為非肌層浸潤(rùn)性膀胱癌[3]。盡管非肌層浸潤(rùn)性膀胱癌可以通過(guò)經(jīng)尿道膀胱腫瘤電切術(shù)等外科學(xué)方式進(jìn)行治療,但術(shù)后復(fù)發(fā)率高達(dá)70%,其中約20%進(jìn)展為肌層浸潤(rùn)性膀胱癌,最終導(dǎo)致遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移,預(yù)后不良[4]。因此,了解膀胱癌侵襲轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)的分子機(jī)制,探索新的治療靶點(diǎn)極具臨床意義和研究?jī)r(jià)值。

        人矮小同源盒基因2(SHOX2)是人矮小同源盒基因的同源物[5],主要參與脊椎動(dòng)物胚胎形成期的轉(zhuǎn)錄調(diào)控[6]。近年來(lái),越來(lái)越多證據(jù)表明SHOX2在腫瘤的發(fā)生發(fā)展過(guò)程中扮演了重要角色。在肺癌中,SHOX2可以作為診斷和預(yù)后的生物標(biāo)志物[7-9];在食管鱗狀細(xì)胞癌、胃腺癌、口腔鱗狀細(xì)胞癌中,SHOX2可以促進(jìn)腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移[10-12];在肝癌中,高表達(dá)的SHOX2與術(shù)后復(fù)發(fā)密切相關(guān)[13]。然而,SHOX2在膀胱癌細(xì)胞中的生物學(xué)功能和作用機(jī)制目前國(guó)內(nèi)外尚未見(jiàn)報(bào)道。因此,本研究分析了TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)中SHOX2基因在膀胱癌與癌旁膀胱組織中的表達(dá)差異及其對(duì)膀胱癌預(yù)后的影響,利用基因集富集分析GSEA軟件對(duì)SHOX2的生物學(xué)功能進(jìn)行預(yù)測(cè),并通過(guò)功能缺失性及功能獲得性實(shí)驗(yàn),在細(xì)胞水平觀察SHOX2對(duì)膀胱癌細(xì)胞遷移、侵襲能力和干細(xì)胞特性的影響。本研究探索SHOX2在膀胱癌細(xì)胞中對(duì)上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)的調(diào)控作用及其可能機(jī)制,為深入研究探討膀胱癌侵襲轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)的機(jī)制提供重要的理論基礎(chǔ)與實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1 細(xì)胞株、主要試劑和耗材

        人膀胱癌細(xì)胞株T24(美國(guó)典型物保藏中心)。RPMI 1640培養(yǎng)基、DMEM/F12培養(yǎng)基、胎牛血清和胰蛋白酶(BI);SHOX2 鼠單克隆抗體(Abcam);Ecadherin兔多克隆抗體、Vimentin兔多克隆抗體、β-actin鼠單克隆抗體、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔抗體、辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗鼠抗體(proteintech);基質(zhì)膠、Transwell小室、超低吸附六孔板(Corning);人EGF、人bFGF(Peprotech);B-27(Thermo Fisher);人胰島素(Meilunbio);總蛋白提取試劑盒、蛋白濃度測(cè)定試劑盒、蛋白上樣緩沖液、PVDF膜、ECL發(fā)光試劑盒、細(xì)胞培養(yǎng)皿、六孔板、PBS、甲醇、4%多聚甲醛、結(jié)晶紫、TBS、吐溫等(碧云天)。

        1.2 膀胱癌細(xì)胞培養(yǎng)、SHOX2 shRNA及SHOX2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染

        1.2.1 膀胱癌細(xì)胞培養(yǎng) 膀胱癌細(xì)胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清、100 U/mL 青霉素和100 μg/mL 鏈霉素的RPMI 1640培養(yǎng)基中,于37 ℃、5%CO2溫育箱中培養(yǎng),取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。

        1.2.2 SHOX2 shRNA轉(zhuǎn)染 提前1 d將T24細(xì)胞鋪于6 cm培養(yǎng)皿,在37 ℃、5%CO2溫育箱中孵育過(guò)夜。待細(xì)胞融合度達(dá)70%~80%,更換含有8~10 μg/mL polybrene的新鮮培養(yǎng)基,添加1 mL慢病毒液,在37 ℃、5%CO2溫育箱中孵育過(guò)夜。

        每次實(shí)驗(yàn)設(shè)3個(gè)組:對(duì)照組(Scramble)、實(shí)驗(yàn)組1、實(shí)驗(yàn)組2;實(shí)驗(yàn)組1:shSHOX2-1:正義鏈為5'-CCGGgg accaatttcaccctggaacCTCGAGgttccagggtgaaattggtccTT TTTG-3',反義鏈為5'-AATTCAAAAAggaccaatttcaccc tggaacCTCGAGgttccagggtgaaattggtcc-3';實(shí) 驗(yàn) 組2:shSHOX2-2,正義鏈為5'-CCGGggatgcgaaagggatggag gaCTCGAGtcctccatccctttcgcatccTTTTTG-3',反義鏈為5'-AATTCAAAAAggatgcgaaagggatggaggaCTCGAGtc ctccatccctttcgcatcc-3'。質(zhì)粒載體為PLKO.1。

        轉(zhuǎn)染后24 h更換為新鮮培養(yǎng)基,向培養(yǎng)基中添加終濃度為3.5 μg/mL的嘌呤霉素進(jìn)行篩選,藥篩24 h后更換新鮮培養(yǎng)基,提取各組細(xì)胞的蛋白質(zhì),檢測(cè)各項(xiàng)相關(guān)指標(biāo)。

        1.2.3 SHOX2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 提前1 d將T24細(xì)胞鋪于6 cm培養(yǎng)皿,在37 ℃、5%CO2溫育箱中孵育過(guò)夜。待細(xì)胞融合度達(dá)70%~80%,將pc-DNA4-SFB-SHOX2和PEF-IRES-rtTA 1∶1 比例用轉(zhuǎn)染試劑PEI 共轉(zhuǎn)染入細(xì)胞,每次實(shí)驗(yàn)設(shè)2 個(gè)組:對(duì)照組(Vector)、實(shí)驗(yàn)組(p-SHOX2),轉(zhuǎn)染12 h后更換新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),36 h后,終濃度為3.5 μg/mL的嘌呤霉素藥篩24 h后更換新鮮培養(yǎng)基,提取各組細(xì)胞的蛋白質(zhì),檢測(cè)各項(xiàng)相關(guān)指標(biāo)。

        1.3 Western blot

        細(xì)胞總蛋白通過(guò)總蛋白提取試劑盒提取,加入蛋白上樣緩沖液,95 ℃下變性15 min,并保存于-20 ℃。凝膠電泳由10%SDS電泳液分離蛋白、濕法將蛋白轉(zhuǎn)印至PVDF膜;5%BSA室溫封閉1 h;加入一抗4 ℃孵育過(guò)夜;TBST 液洗膜3 次,洗5 min/次;加入二抗室溫孵育1 h;TBST液洗膜4次,洗5 min/次;ECL發(fā)光試劑盒顯影;GeneGnome XRQ化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)獲取圖像。

        1.4 劃痕實(shí)驗(yàn)

        細(xì)胞以4×105/孔接種于6孔板,培養(yǎng)細(xì)胞使匯合度接近100%,用100 μL槍頭在6孔板內(nèi)畫(huà)1條寬度均勻的直線,使兩側(cè)細(xì)胞不相連接,PBS洗滌清除漂浮細(xì)胞,加入完全培養(yǎng)基,放入37 ℃、5%CO2溫育箱中培養(yǎng),分別于0、24 h在同一部位用倒置顯微鏡觀察并拍照,計(jì)算劃痕愈合率,劃痕愈合率=(0 h劃痕面積-24 h劃痕面積)/0 h劃痕面積,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        1.5 Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)

        用基質(zhì)膠包被Transwell小室底部膜,于4 ℃風(fēng)干,再水化基底膜。細(xì)胞提前用無(wú)血清RPMI 1640培養(yǎng)基饑餓處理12 h后,收集細(xì)胞制成細(xì)胞懸液,將200 μL含1×105細(xì)胞數(shù)的懸液加入上室,下室加入500 μL含10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基,放入37 ℃、5%CO2溫育箱中培養(yǎng)24 h,取出小室,棄上室培養(yǎng)基,用干棉簽輕拭去上室細(xì)胞,4%多聚甲醛固定,結(jié)晶紫染色,PBS洗滌,在顯微鏡下隨機(jī)選取3個(gè)視野拍照計(jì)數(shù)。

        2016年調(diào)查顯示,對(duì)收入不滿意的各族裔比例都在10%左右,滿意度最高的是日裔醫(yī)生(72%),其次是白人(59%)和菲裔(57%)。2017年57%的男性醫(yī)生和53%的女性醫(yī)生表示他們收入足夠支撐他們的目標(biāo)(2016年這個(gè)比例是52% vs.47%)。

        1.6 懸浮成球?qū)嶒?yàn)

        將細(xì)胞分散接種于超低吸附六孔板中(2000細(xì)胞/孔),使用無(wú)血清DMEM/F12培養(yǎng)基,其中添加20 ng/mL人EGF、20 ng/mL人bFGF、5 ng/mL胰島素、2%B-27。培養(yǎng)1~2周后,顯微鏡下觀察并計(jì)算腫瘤球數(shù)目。

        1.7 克隆形成實(shí)驗(yàn)

        將細(xì)胞分散接種于6孔板中(1000細(xì)胞/孔),培養(yǎng)1~2周。PBS洗滌后,4%多聚甲醛固定,結(jié)晶紫染色,PBS洗滌。直接觀察,計(jì)算克隆數(shù)。

        1.8 生物信息學(xué)分析

        利用GEPIA(http://gepia.cancer-pku.cn/)網(wǎng)站對(duì)TCGA膀胱癌數(shù)據(jù)集進(jìn)行Kaplan-Meier生存分析;使用基因集富集分析(GSEA,http://software.broadinstitute.org/gsea/msigdb/index.jsp)軟件分析TCGA 膀胱癌數(shù)據(jù)集。

        1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        應(yīng)用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)檢驗(yàn),計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較用兩樣本t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。圖片數(shù)據(jù)的采集及處理用Graphpad Prism5和Image J軟件進(jìn)行。每次實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        2 結(jié)果

        2.1 SHOX2基因在膀胱癌組織中高表達(dá)并與不良預(yù)后相關(guān)

        TCGA膀胱癌標(biāo)本數(shù)據(jù)分析顯示,與癌旁膀胱組織相比,SHOX2基因在膀胱癌組織中的表達(dá)量升高(P=0.01,圖1A),此趨勢(shì)在配對(duì)的膀胱癌組織中更為明顯(P=0.001,圖1B)。GEPIA網(wǎng)站Kaplan-Meier生存分析顯示,SHOX2基因表達(dá)水平與膀胱癌患者總體生存率呈負(fù)相關(guān)(P=0.01,圖1C)。

        圖1 SHOX2基因在TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)膀胱癌組織中高表達(dá)并與不良預(yù)后相關(guān)Fig.1 SHOX2 gene expression was significantly elevated in bladder cancer tissues based on TCGA-BLCA datasets and was associated with poor survival of the patients.A:Relative SHOX2 mRNA expression in bladder cancer tissues(n=408)and adjacent bladder tissues(n=19,*P=0.01).B:Relative SHOX2 mRNA expression in bladder cancer tissues(n=18)and paired adjacent tissues (n=18,**P=0.001).C:Kaplan-Meier survival analysis of overall survival of patients with bladder cancer with high and low SHOX2 expression level using GEPIA(P=0.01).

        2.2 SHOX2基因表達(dá)水平與EMT及腫瘤干細(xì)胞特性呈正相關(guān)

        SHOX2基因表達(dá)水平與EMT(P=0.01,P=0.03,圖2A)及腫瘤干細(xì)胞相關(guān)的基因集呈正相關(guān)(P=0.006,P=0.008,圖2B)。

        圖2 SHOX2基因在GSEA數(shù)據(jù)庫(kù)中與膀胱癌的EMT及干細(xì)胞特性呈正相關(guān)Fig.2 SHOX2 gene expression is positively correlated with EMT-related and stemness-related gene signatures of bladder cancer based on GSEA database.A:Data from GSEA indicate significant correlations between SHOX2 gene expression and EMT-related gene signatures of bladder cancer (HALLMARK_EPITHELIAL_MESENCHYMAL_TRANSITION, P=0.002;GO_EPITHELIAL_TO_MESENCHYMAL_TRANSITION,P=0.03).B:SHOX2 gene expression was significantly correlated with stemness-related gene signatures of bladder cancer(BOQUEST_STEM_CELL_UP,P=0.006;LIM_MAMMARY_STEM_CELL_UP,P=0.008).

        2.3 構(gòu)建SHOX2敲低、過(guò)表達(dá)的穩(wěn)定細(xì)胞株

        Western blot分析顯示,在轉(zhuǎn)染SHOX2 shRNA的膀胱癌細(xì)胞T24 中SHOX2 蛋白表達(dá)水平顯著降低(shSHOX2-1,P=0.004;shSHOX2-2,P=0.03,圖3A);而轉(zhuǎn)染SHOX2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒的T24細(xì)胞中,SHOX2的蛋白表達(dá)水平顯著升高(P=0.007,圖3B)。

        圖3 SHOX2 shRNA及SHOX2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染T24細(xì)胞后SHOX2蛋白的表達(dá)水平Fig.3 Expression of SHOX2 in T24 cells after transfection with SHOX2 shRNA or SHOX2 lentivirus.A:Effect of SHOX2 shRNA and scramble shRNA on SHOX2 expression in T24 cells detected by Western blotting (**P=0.004,*P=0.03 vs scramble).B:Effect of SHOX2 lentivirus and vector control on SHOX2 expression in T24 cells detected by Western blotting(**P=0.007).

        2.4 SHOX2促進(jìn)膀胱癌細(xì)胞的遷移、侵襲

        劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,shSHOX2敲低組細(xì)胞劃痕面積愈合百分比與對(duì)照組Scramble 相比明顯減少(shSHOX2-1,P<0.001;shSHOX2-2,P=0.02,圖4A);過(guò)表達(dá)SHOX2 組細(xì)胞劃痕面積愈合百分比與對(duì)照組Vector相比明顯增加(P<0.001,圖4B)。

        Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,shSHOX2敲低組細(xì)胞穿透至下層的數(shù)量較Scramble 組明顯減少(shSHOX2-1,P=0.002;shSHOX2-2,P=0.003,圖4C);過(guò)表達(dá)SHOX2組細(xì)胞穿透至下層的數(shù)量較Vector組明顯增加(P=0.004,圖4D)。

        圖4 SHOX2促進(jìn)膀胱癌細(xì)胞的遷移、侵襲Fig.4 SHOX2 promotes migration and invasion of bladder cancer cells.A:Wound healing assay of T24 cells transfected with SHOX2 shRNA or scramble shRNA (Original magnification:×40) and quantitative analysis (***P<0.001,**P=0.02 vs scramble).B:Wound healing assay of T24 cells transfected with SHOX2 lentivirus or the control vector (×40) and quantitative analysis (***P<0.001).C:Transwell assay in T24 cells transfected with SHOX2 shRNA or scramble shRNA(×200) and quantitative analysis (shSHOX2-1,**P=0.002 vs scramble;shSHOX2-2,**P=0.003 vs scramble).D:Transwell assay ofn T24 cells transfected with SHOX2 lentivirus or the control vector(×200)and quantitative analysis(**P=0.004).

        2.5 SHOX2增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞的干細(xì)胞特性

        懸浮成球?qū)嶒?yàn)結(jié)果顯示,shSHOX2敲低組細(xì)胞形成腫瘤球的數(shù)目與對(duì)照組Scramble 相比減少(shSHOX2-1,P=0.002;shSHOX2-2,P=0.007,圖5A);過(guò)表達(dá)SHOX2 組細(xì)胞形成腫瘤球的數(shù)目與對(duì)照組Vector相比增加(P=0.002,圖5B)。

        克隆形成實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,shSHOX2敲低組細(xì)胞克隆形成數(shù)與對(duì)照組Scramble相比減少(shSHOX2-1,P<0.001;shSHOX2-2,P<0.001,圖5C);過(guò)表達(dá)SHOX2組細(xì)胞克隆形成數(shù)與對(duì)照組Vector相比增加(P<0.001,圖5D)。

        圖5 SHOX2增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞的干細(xì)胞特性Fig.5 SHOX2 enhances cancer stem cell-like characteristics of bladder cancer cells.A:Tumorsphere formation assay of T24 cells transfected with SHOX2 shRNA or scramble shRNA(×100)(shSHOX2-1,**P=0.002 vs scramble;shSHOX2-2,**P=0.007 vs scramble);B:Tumorsphere formation assay of T24 cells transfected with SHOX2 lentivirus or the control vector (×100) (**P=0.002).C:Colony formation assay of T24 cells transfected with SHOX2 shRNA or scramble shRNA(***P<0.001 vs scramble);D:Colony formation assay of T24 cells transfected with SHOX2 lentivirus or the control vector(***P<0.001 vs vector).

        2.6 SHOX2通過(guò)TGF-β信號(hào)通路誘導(dǎo)EMT

        在光鏡下觀察膀胱癌細(xì)胞T24的形態(tài)變化,結(jié)果顯示抑制SHOX2表達(dá)可使細(xì)胞呈現(xiàn)連接緊密的卵圓形的上皮樣形態(tài)(圖6A),而SHOX2過(guò)表達(dá)可使細(xì)胞呈現(xiàn)連接松散的長(zhǎng)條形的間充質(zhì)樣形態(tài)(圖6B)。

        Western blot結(jié)果顯示,抑制SHOX2的表達(dá)可使膀胱癌細(xì)胞T24 中的EMT 標(biāo)志分子E-cadherin 蛋白(shSHOX2-1,P<0.001;shSHOX2-2,P<0.001,圖6C)表達(dá)水平升高、Vimentin 蛋白(shSHOX2-1,P<0.001;shSHOX2-2,P=0.01,圖6C)表達(dá)水平降低,而過(guò)表達(dá)SHOX2的膀胱癌細(xì)胞中Vimentin蛋白(P=0.04,圖6D)表達(dá)水平升高。此外,抑制SHOX2的表達(dá)可使T24細(xì)胞中的TGF-β信號(hào)通路重要組件TβR-I蛋白(shSHOX2-1,P=0.03;shSHOX2-2,P=0.02,圖6C)表達(dá)水平降低,而過(guò)表達(dá)SHOX2的T24細(xì)胞中TβR-I蛋白(P=0.003,圖6D)表達(dá)水平升高。

        圖6 SHOX2通過(guò)TGF-β信號(hào)通路誘導(dǎo)EMTFig.6 SHOX2 induces EMT through TGF-β signaling pathway.A:Morphology of T24 cells transfected with SHOX2 shRNA or scramble shRNA (× 200);B:Morphology of T24 cells transfected with SHOX2 lentivirus or the control vector (Original magnification:×200);C:Effect of SHOX2 shRNA and scramble shRNA on E-cadherin(***P<0.001),vimentin(***P<0.001,*P=0.01)and TβR-I(shSHOX2-1,*P=0.03;shSHOX2-2,*P=0.02)expressions in T24 cells detected by Western blotting;D:Effect of SHOX2 lentivirus and the control vector on vimentin(*P=0.04 vs vector)and TβR-I(**P=0.003 vs vector)expression in T24 cells detected by Western blotting.

        3 討論

        SHOX2最早在肺癌中被證實(shí)與腫瘤的發(fā)生發(fā)展有關(guān),SHOX2的表達(dá)量在肺癌早期即可發(fā)生變化,多項(xiàng)研究表明SHOX2啟動(dòng)子甲基化可作為肺癌診斷和預(yù)后的生物標(biāo)志物[7-9]。有研究在原發(fā)性肝癌臨床手術(shù)標(biāo)本中對(duì)比分析SHOX2表達(dá)量和患者術(shù)后復(fù)發(fā)的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)SHOX2與肝癌的術(shù)后復(fù)發(fā)密切相關(guān)[13]。近年來(lái),越來(lái)越多的證據(jù)表明SHOX2可以通過(guò)促進(jìn)腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移來(lái)影響腫瘤的預(yù)后[10-12]。本研究通過(guò)分析TCGA膀胱癌標(biāo)本數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)SHOX2基因在膀胱癌組織中高表達(dá),并與膀胱癌患者臨床預(yù)后不良密切相關(guān),這支持了SHOX2 在膀胱癌中的致癌作用。同時(shí),我們通過(guò)對(duì)TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)中膀胱癌樣本進(jìn)行GSEA富集分析,預(yù)測(cè)SHOX2可能的生物學(xué)功能。結(jié)果顯示,SHOX2基因表達(dá)水平與上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)及腫瘤干細(xì)胞特性呈正相關(guān)。

        為了進(jìn)一步驗(yàn)證SHOX2在膀胱癌細(xì)胞中的生物學(xué)功能與作用機(jī)制,我們采用SHOX2 shRNA 及SHOX2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染膀胱癌細(xì)胞T24,構(gòu)建SHOX2敲低、過(guò)表達(dá)的穩(wěn)定細(xì)胞株。劃痕實(shí)驗(yàn)、Transwell侵襲實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,下調(diào)SHOX2的表達(dá)后,T24細(xì)胞的遷移、侵襲能力明顯下降,而上調(diào)SHOX2的表達(dá)則顯著增強(qiáng)T24細(xì)胞的遷移、侵襲能力,這表明SHOX2可以促進(jìn)膀胱癌細(xì)胞的遷移及侵襲。EMT在腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移中起關(guān)鍵作用[14,15]。EMT是指具有極性的上皮樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化為運(yùn)動(dòng)能力較強(qiáng)的間充質(zhì)樣細(xì)胞,從而使細(xì)胞在細(xì)胞外基質(zhì)中的移動(dòng)能力增強(qiáng)[16,17],EMT對(duì)膀胱癌的侵襲轉(zhuǎn)移起著極為重要的作用[18,19]。有研究證實(shí)了SHOX2在食管鱗狀細(xì)胞癌細(xì)胞中可以促進(jìn)EMT的發(fā)生[10],本研究也發(fā)現(xiàn),在膀胱癌細(xì)胞T24中抑制SHOX2的表達(dá)可使細(xì)胞呈現(xiàn)上皮樣形態(tài),且EMT標(biāo)志分子E-cadherin蛋白表達(dá)水平升高、Vimentin蛋白表達(dá)水平降低;而過(guò)表達(dá)SHOX2 可使T24 細(xì)胞呈現(xiàn)間充質(zhì)樣形態(tài),且Vimentin蛋白表達(dá)水平升高,說(shuō)明SHOX2在膀胱癌細(xì)胞中可以促進(jìn)EMT,這與我們的生物信息學(xué)分析結(jié)果一致。

        腫瘤干細(xì)胞是指具有自我更新和多向分化潛能的腫瘤細(xì)胞亞群[20,21],干細(xì)胞特性的維持與膀胱癌的侵襲轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)密切相關(guān)[22-24]。越來(lái)越多的證據(jù)表明,EMT過(guò)程可以使腫瘤干細(xì)胞富集,從而使腫瘤細(xì)胞的干細(xì)胞特性增強(qiáng)[25,26]。有研究發(fā)現(xiàn),EMT也可以增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞的干細(xì)胞特性[27,28]。本研究通過(guò)懸浮成球?qū)嶒?yàn)和克隆形成實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)下調(diào)SHOX2的表達(dá)后,T24細(xì)胞的成球數(shù)和克隆形成數(shù)均下降,而上調(diào)SHOX2的表達(dá)則可顯著增加T24 細(xì)胞的成球數(shù)和克隆形成數(shù),說(shuō)明SHOX2確實(shí)可以在一定程度上增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞的干細(xì)胞特性,與生物信息學(xué)分析結(jié)果一致。

        TGF-β信號(hào)通路在誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞EMT過(guò)程中起重要作用[29-31],許多研究證明TGF-β信號(hào)通路可以促進(jìn)膀胱癌細(xì)胞EMT[32-33]。有研究發(fā)現(xiàn)SHOX2在乳腺癌細(xì)胞中可以通過(guò)調(diào)控TGF-β信號(hào)通路中的重要組件TβR-I來(lái)誘導(dǎo)EMT過(guò)程[34]。本研究發(fā)現(xiàn),在膀胱癌細(xì)胞T24中抑制SHOX2的表達(dá)可使TβR-I蛋白表達(dá)水平降低,而過(guò)表達(dá)SHOX2可使T24細(xì)胞中的TβR-I蛋白表達(dá)水平升高,說(shuō)明SHOX2可能參與調(diào)控TGF-β信號(hào)通路。結(jié)合實(shí)驗(yàn)結(jié)果,本研究認(rèn)為SHOX2可能通過(guò)激活TGF-β信號(hào)通路,參與調(diào)控EMT過(guò)程,進(jìn)而增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞的遷移、侵襲能力和干細(xì)胞特性。

        綜上所述,本研究首先通過(guò)生物信息學(xué)分析,發(fā)現(xiàn)SHOX2基因在膀胱癌組織中高表達(dá)且與膀胱癌患者臨床預(yù)后不良相關(guān),其生物學(xué)功能與EMT和腫瘤干細(xì)胞特性密切相關(guān)。通過(guò)功能缺失性及功能獲得性實(shí)驗(yàn)證實(shí)SHOX2能增強(qiáng)膀胱癌細(xì)胞遷移、侵襲能力及腫瘤干細(xì)胞特性,其作用機(jī)制可能與TGF-β信號(hào)通路參與調(diào)控的EMT有關(guān)。這表明針對(duì)SHOX2靶點(diǎn)的基因治療可能成為減少膀胱癌侵襲轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā)的潛在治療手段,但SHOX2是如何激活TGF-β信號(hào)通路,最終誘導(dǎo)膀胱癌細(xì)胞EMT,值得進(jìn)一步研究。

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