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        沉默TRIM59對宮頸癌SiHa細(xì)胞增殖、凋亡、侵襲與遷移能力的影響

        2021-07-09 09:17:46張曉丹徐毅杜德奇郭瑩王魯文
        關(guān)鍵詞:水平檢測

        張曉丹 1,徐毅 1,杜德奇 1,郭瑩 2,王魯文

        (鄭州市婦幼保健院 1.產(chǎn)科;2.婦科,河南鄭州 450000;3.鄭州大學(xué)第三附屬醫(yī)院婦科,河南鄭州 450000)

        宮頸癌是女性生殖系統(tǒng)最常見的3種惡性腫瘤之一,在婦科中死亡率最高[1]。臨床上對于早期宮頸癌的治療多以手術(shù)切除為主,輔以化學(xué)療法、中藥和生物療法[2]。盡管在診斷技術(shù)和治療方法上取得了長足進(jìn)步,但由于復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移,宮頸癌患者的長期生存率仍然很差,5年生存率僅為50%~70%[3]。因此,迫切需要找到宮頸癌的新型治療靶標(biāo)和診斷生物標(biāo)記物。

        三結(jié)構(gòu)域蛋白59(tripartite motif?containing 59,TRIM59),是三結(jié)構(gòu)域蛋白家族成員,在腫瘤細(xì)胞增殖、凋亡和侵襲中發(fā)揮著重要作用[4]。TRIM59可作為癌基因,在胃癌、肝癌、肺癌和結(jié)直腸癌等腫瘤中高表達(dá)[5]。已有研究表明,TRIM59在宮頸癌中高表達(dá),TRIM59敲低可引起S期細(xì)胞周期阻滯[6]。但TRIM59在宮頸癌中的具體作用機(jī)制尚不清楚,本文旨在探究沉默TRIM59對宮頸癌SiHa細(xì)胞增殖、凋亡、侵襲與遷移能力的影響。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)試劑

        DMEM培養(yǎng)基(11965?175)、胎牛血清(10099?141)、青‐鏈 霉 素(15140?122)和 胰 蛋 白 酶(25200?056)購自美國Gibco公司;shRNA TRIM59載體、shRNA?NC由上海生工生物工程股份有限公司合成;Transwell(PIEP12R48)購自美國Millipore公司;Annexin V?FITC細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(C1062S)、BCA蛋白濃度測定試劑盒(P0012S)、辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔IgG(A0208)購自上海碧云天生物技術(shù)研究所;兔抗單克隆抗體TRIM59(ab69639)、Ki67(ab15580)、c?Myc(ab39688)、PC‐NA(ab18197)、Bax(ab104156)、Bcl?2(ab194583)、Caspase?3(ab13847)和Actin(ab5694)購 自 英 國Abcam公司。

        1.2 細(xì)胞培養(yǎng)

        宮頸鱗狀細(xì)胞癌SiHa細(xì)胞株來源于中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會細(xì)胞庫,置于37℃,5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中用高糖DMEM培養(yǎng)基(含10%胎牛血清和1%青‐鏈霉素)培養(yǎng),每3天更換1次培養(yǎng)基,收集細(xì)胞時(shí)用0.25%胰蛋白酶消化,試驗(yàn)選用對數(shù)生長期細(xì)胞。

        1.3 細(xì)胞處理及分組

        為了防止脫靶效應(yīng),設(shè)計(jì)了3對shRNA序列(TRIM 59-shRNA1:5'-GGAAGCTGTTCTCCAGTAT-3';TRIM59-shRNA2:5'GAAGAGTCTCCACTTAAAT-3';TRIM59-shRNA3:5'-GAATGGAGCAGAACAGAAA-3')干擾TRIM59的表達(dá),通過RT?PCR和Western blot檢測選擇干擾效果最好的TRIM59?shRNA2進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。取對數(shù)生長期SiHa細(xì)胞,將細(xì)胞隨機(jī)分為3組:Control組、shRNA?NC組 和TRIM59?shRNA2組。Control組不做處理,shRNA?NC組轉(zhuǎn)染shR‐NA?NC陰性對照載體,TRIM59?shRNA2組轉(zhuǎn)染TRIM59?shRNA2慢病毒載體。

        1.4 RT?PCR

        用Trizol法從SiHa細(xì)胞中提取總RNA,采用PrimeScrip反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄成cDNA,通過SYBR Premix Ex Taq說明書配置PCR反應(yīng)體系,反應(yīng)條件為:94℃預(yù)變性5 min,94℃30 s,55℃30 s,72℃30 s,35個(gè)循環(huán),72℃10 min。以Actin為內(nèi)參基因,用2?△△Ct計(jì)算各目的基因相對表達(dá)量。

        1.5 克隆形成實(shí)驗(yàn)檢測細(xì)胞增殖

        在培養(yǎng)皿中培養(yǎng)SiHa細(xì)胞培養(yǎng)4 d,吹散為單個(gè)細(xì)胞,用6孔板培養(yǎng),約500個(gè)細(xì)胞每孔,培養(yǎng)14 d,棄掉培養(yǎng)基,用乙醇固定30 min,接著用0.5%結(jié)晶紫染色,用去離子水漂洗晾干,進(jìn)行拍照觀察觀察克隆形成數(shù)目,計(jì)算克隆形成率。克隆形成率=克隆數(shù)/接種細(xì)胞數(shù)×100%。

        1.6 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡

        收集SiHa懸浮細(xì)胞到10 mL的離心管中,每樣本細(xì)胞數(shù)為3×106/mL,1 000 r/min離心5 min,棄去培養(yǎng)液,用孵育緩沖液洗滌1次,1 000 r/min離心5 min,重懸細(xì)胞后室溫避光孵育15 min,1 000 r/min離心5 min,沉淀細(xì)胞后孵育緩沖液洗1次,加入熒光(SA?FLOUS)溶液4℃下孵育20 min,避光振動(dòng),通過流式細(xì)胞儀上機(jī)分析:流式細(xì)胞儀激發(fā)光波長用488 nm,波長515 nm檢測FITC熒光,波長大于560 nm檢測PI。

        1.7 Western blot檢 測Ki67、PCNA、c?Myc、Bax、Bcl?2和Caspase?3蛋白表達(dá)水平

        取各組對數(shù)生長期SiHa細(xì)胞,加入含蛋白酶抑制劑的細(xì)胞裂解液提取總蛋白,并用BCA試劑盒測定蛋白質(zhì)含量。取等量蛋白質(zhì)樣品,100℃變性5 min后用SDS?PAGE凝膠電泳法分離并轉(zhuǎn)移至PVDF膜,在4℃條件下加入Ki67、PCNA、c?Myc、Bax、Bcl?2和Caspase?3一抗并孵育過夜,清洗,然后在4℃下加入辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔IgG,孵育2 h,最后加入ECL發(fā)光液,曝光處理。Image J軟件統(tǒng)計(jì)灰度值。以目的條帶灰度值/Actin灰度值表示蛋白表達(dá)水平。

        1.8 Transwell檢測細(xì)胞侵襲

        4℃下取60μL Matrigel加入300μL無血清培養(yǎng)基中混勻,平均加入小室,置于37℃培養(yǎng)箱中孵育5 h,將100μL細(xì)胞用無血清培養(yǎng)基清洗3次,配成細(xì)胞懸液加入Transwell下室,小室中加入600μL含有20%胎牛血清的培養(yǎng)基,置于37℃培養(yǎng)箱中孵育24 h,取出Transwell小室用PBS沖洗2次,5%戊二醛固定,0.1%結(jié)晶紫染色0.5 h后于熒光顯微鏡下觀測,隨機(jī)選擇5個(gè)視野對細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù),侵襲細(xì)胞數(shù)為每視野的平均細(xì)胞數(shù)。

        1.9 劃痕愈合實(shí)驗(yàn)檢測細(xì)胞遷移

        取對數(shù)生長期的各組SiHa細(xì)胞,接種于6孔板中培養(yǎng)48 h,待生長至密度>95%時(shí),使用滅菌槍頭在細(xì)胞培養(yǎng)板上劃痕,劃痕后用PBS洗滌細(xì)胞培養(yǎng)板,再加入無血清的培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)細(xì)胞。于0和24 h取樣并拍照,劃痕愈合率=(0 h劃痕寬度?24 h劃痕寬度)/0 h劃痕寬度×100%。

        1.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        使用GraphPad Prism 5進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用x±s表示,兩組間比較采取t檢驗(yàn),多組間比較采用單因素方差分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 TRIM59 mRNA和蛋白表達(dá)水平

        通過RT?PCR和Western blot檢測各組細(xì)胞TRIM59 mRNA和蛋白表達(dá)水平結(jié)果如圖1所示,與Control組比較,TRIM59?shRNA1組、TRIM59?shRNA2組和TRIM59?shRNA3組細(xì)胞TRIM59 mRNA和蛋白表達(dá)水平降低,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。選擇TRIM59?shRNA2進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        圖1 TRIM59 mRNA和蛋白表達(dá)水平Figure 1 Expression of TRIM59 mRNA and protein

        2.2 沉默TRIM59降低SiHa細(xì)胞克隆形成率

        通過克隆形成實(shí)驗(yàn)檢測各組細(xì)胞克隆形成率結(jié)果如圖2所示,與Control組比較,TRIM59?shR‐NA2組細(xì)胞克隆形成率降低,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖2 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞克隆形成率的影響Figure 2 Effect of silencing TRIM59 on the clonal formation rate of SiHa cells

        2.3 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞Ki67、PCNA蛋白表達(dá)水平的影響

        通過Western blot檢測各組細(xì)胞Ki67、PCNA蛋白表達(dá)水平結(jié)果如圖3所示,與Control組比較,TRIM59?shRNA2組Ki67、PCNA蛋白表達(dá)水平降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖3 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞Ki67、PCNA蛋白表達(dá)水平的影響Figure 3 Effect of silencing TRIM59 on the expression of Ki67 and PCNA protein in SiHa cells

        2.4 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞凋亡率的影響

        通過流式細(xì)胞儀檢測各組細(xì)胞凋亡結(jié)果如圖4所示,與Control組比較,TRIM59?shRNA2組細(xì)胞凋亡率升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖4 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞凋亡率的影響Figure 4 Effect of silencing TRIM59 on the apoptosis rate of SiHa cells

        2.5 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞c?Myc蛋白表達(dá)水平、cleaved Caspase?3/Caspase?3、Bax/Bcl?2的影響

        通過Western blot檢測各組細(xì)胞c?Myc、Bax、Bcl?2和Caspase?3蛋白表達(dá)水平結(jié)果如圖5所示,與Control組比較,TRIM59?shRNA2組c?Myc蛋白表達(dá)水平降低,cleaved Caspase?3/Caspase?3、Bax/Bcl?2比值升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖5 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞c-Myc、Bax、Bcl-2和Caspase-3蛋白表達(dá)水平的影響Figure 5 Effect of silencing TRIM59 on the expression of C-Myc,Bax,Bcl-2 and Caspase-3 protein in SiHa cells

        2.6 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞侵襲細(xì)胞數(shù)的影響

        通過Transwell檢測各組細(xì)胞侵襲細(xì)胞數(shù)結(jié)果如圖6所示,與Control組比較,TRIM59?shRNA2組侵襲細(xì)胞數(shù)降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖6 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞侵襲細(xì)胞數(shù)的影響Figure 6 Effect of silencing TRIM59 on the number of invasive cells in SiHa cells

        2.7 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞劃痕愈合率的影響

        通過劃痕愈合實(shí)驗(yàn)檢測各組細(xì)胞劃痕愈合率結(jié)果如圖7所示,與Control組比較,TRIM59?shR‐NA2組劃痕愈合率降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖7 沉默TRIM59對SiHa細(xì)胞劃痕愈合率的影響Figure 7 Effect of silencing TRIM59 on the scratch healing rate of SiHa cells

        3 討論

        宮頸癌是婦科腫瘤中發(fā)病率最高的惡性腫瘤之一,在我國發(fā)病率逐年遞增,嚴(yán)重威脅女性健康[7]。相關(guān)研究表明TRIM59可通過多種途徑促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的增殖和遷移,可作為腫瘤診斷和治療的新靶點(diǎn)[8]。深入研究TRIM59可為宮頸癌分子靶向診斷和治療提供新的策略。

        癌細(xì)胞過度增殖是宮頸癌病灶內(nèi)重要的生物學(xué)特征,即抑制癌細(xì)胞增殖是治療宮頸癌的必要方式。Ki67是存在于細(xì)胞增殖期的蛋白質(zhì),位于10號染色體上,與細(xì)胞增殖有關(guān),在宮頸癌中呈現(xiàn)高表達(dá)[9]。增殖細(xì)胞核抗原(proliferating cell nuclear an‐tigen,PCNA)是與細(xì)胞增殖周期有關(guān)的周期蛋白,是一種較好的判斷細(xì)胞增殖狀態(tài)的標(biāo)記,應(yīng)用免疫組化方法檢測PCNA是研究腫瘤細(xì)胞增殖活性的常用方法,表達(dá)強(qiáng)意味著腫瘤細(xì)胞處于增殖期[10]。Sun等[11]研究發(fā)現(xiàn)慢病毒介導(dǎo)的TRIM59基因沉默是肝癌的增殖、遷移、侵襲受到抑制。本文研究發(fā)現(xiàn),沉默TRIM59具有降低SiHa細(xì)胞克隆形成率及Ki67、PCNA蛋白表達(dá)水平的作用,提示TRIM59抑制SiHa細(xì)胞增殖。

        凋亡是細(xì)胞程序性死亡,治療癌癥的化學(xué)預(yù)防策略之一就是誘導(dǎo)凋亡細(xì)胞死亡。Bax和Bcl?2屬于Bcl?2基因家族成員,Bcl?2為凋亡抑制基因,Bax為促凋亡基因,Bax/Bcl?2比值越高,凋亡狀況越嚴(yán)重[12]。Caspase?3是Caspase家族中的一員,屬于細(xì)胞凋亡蛋白,激活后能直接水解細(xì)胞體內(nèi)相關(guān)蛋白誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)生不可逆凋亡[13]。c?Myc蛋白具有調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖分化和促進(jìn)細(xì)胞凋亡的作用,宮頸癌組織中伴隨有c?Myc的過度表達(dá)和擴(kuò)增[14]。Sun等[15]研究發(fā)現(xiàn)TRIM59敲低可以抑制Bcl?2的表達(dá),增強(qiáng)Bax的表達(dá),提示TRIM59可能通過線粒體途徑影響結(jié)直腸癌細(xì)胞的凋亡。本文研究發(fā)現(xiàn),沉默TRIM59具有降低SiHa細(xì)胞c?Myc蛋白表達(dá)水平,升高cleaved Caspase?3/Caspase?3、Bax/Bcl?2比值的作用。提示TRIM59誘導(dǎo)SiHa細(xì)胞凋亡。

        局部侵襲和遠(yuǎn)處遷移是限制臨床外科手術(shù)治療宮頸癌的重要原因之一,因此降低宮頸癌細(xì)胞的侵襲和遷移能力可以增強(qiáng)宮頸癌的治療效果[16]。趙凱等[17]研究發(fā)現(xiàn)沉默TRIM59可通過抑制EMT過程抑制膀胱癌細(xì)胞的遷移及侵襲。本文研究發(fā)現(xiàn),沉默TRIM59具有降低SiHa細(xì)胞侵襲細(xì)胞數(shù)及劃痕愈合率的作用。提示沉默TRIM59抑制SiHa細(xì)胞侵襲和遷移。

        綜上所述,沉默TRIM59可抑制宮頸癌SiHa細(xì)胞增殖、侵襲和遷移,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。本文為TRIM59于臨床治療和診斷宮頸癌提供新的研究思路,但TRIM59在宮頸癌中的具體作用機(jī)制尚需進(jìn)一步的深入研究。

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