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        補腎安胎合劑對腎虛流產(chǎn)小鼠EPCs 動員、歸巢的影響

        2021-06-15 14:07:42江慧敏余欣慧李赟張源源宣躍廷楊天平
        中成藥 2021年4期
        關鍵詞:中藥小鼠劑量

        江慧敏余欣慧李 赟張源源宣躍廷楊天平

        (1.安徽中醫(yī)藥大學,安徽 合肥230000; 2.安徽中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院,安徽 合肥230000)

        自然流產(chǎn)是指在自然狀態(tài)下非人為因素發(fā)生的流產(chǎn),目前在我國的發(fā)生率為10%~15%,其中早期自然流產(chǎn)(孕周≤12 周)占比達80% 以上[1],嚴重影響女性身心健康和今后妊娠[2?3],其發(fā)病機制尚未完全明確,病因復雜多樣。目前,母胎界面血管新生障礙是國內(nèi)外相關研究的焦點,母胎界面血管修復過程(即母胎界面血管重鑄)從細胞學角度而言,與血管內(nèi)皮祖細胞(endothelial progenitor cells,EPCs)的動員、歸巢息息相關,可被人體組織器官所釋放的生長因子、多種細胞因子和激素等物質(zhì)所促進。

        組織損傷后,血液會釋放VEGF、SDF?1α 等細胞因子,并通過SDF?1α/CXCR?4 軸使骨髓造血系EPCs 與骨髓間質(zhì)細胞脫離,遷移至外周血[4],即SDF?1α 參與該動員過程,然后EPCs 順著其濃度進入損傷部位,完成歸巢,表明SDF?1α/CXCR?4 信號轉導通路在胚胎發(fā)育、血管發(fā)育、心臟發(fā)育過程中發(fā)揮著關鍵的作用[5?6]。本實驗通過監(jiān)測腎虛流產(chǎn)小鼠EPCs 動員、歸巢過程,探究補腎安胎合劑對自然流產(chǎn)的影響。

        1 材料

        1.1 動物 雌性綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)轉基因小鼠6 只(用于活體追蹤的活性骨髓來源干細胞),4 周齡,體質(zhì)量(20±2)g;SPF 級雌性ICR 小鼠100 只(未產(chǎn)),3 周齡,體質(zhì)量(19±2)g;SPF 級雄性ICR 小鼠50 只,3 周齡,體質(zhì)量(20±2)g,均由江蘇集萃藥康生物科技有限公司提供,動物生產(chǎn)許可證號SCXK(蘇)2018?0008,室內(nèi)恒定溫度23~26 ℃,相對濕度40%~45%,在安徽中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院的動物實驗中心進行清潔級標準飼養(yǎng),自由進食飲水,適應性飼養(yǎng)1 周后無異常后開始實驗。

        1.2 藥物 補腎安胎合劑,購自安徽中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院(處方組成菟絲子、桑寄生、川斷、熟地等,皖藥制字BZ20080017);羥基脲,購自齊魯制藥有限公司(國藥準字H37021289);米非司酮片,購自安徽中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院(國藥準字H20033551)。

        1.3 試劑 DMEM/F?12 培養(yǎng)基、Phsphate Buffered Saline(1×)、MEM/EBSS、改良型RPMI?1640 培養(yǎng)基,購自美國Hyclone 公司;胎牛血清(FBS),購自德國Sera&Pro 公司;胰酶Trypsin、DMSO,購自美國Amresco公司;小鼠SDF?1α、CXCR4 ELISA 試劑盒,購自上海科順生物科技有限公司。

        1.4 儀器 CO2恒溫培養(yǎng)箱,購自日本Sanyo 公司;潔凈工作臺,購自蘇州安泰空氣技術有限公司;生物倒置顯微鏡,購自重慶光電儀器有限公司;倒置熒光顯微鏡,購自日本Nikon 公司;離心機,購自上海力康生物醫(yī)療科技控股有限公司;流式細胞儀,購自美國Beckman 公司;酶標儀,購自美國Bio?Rad 公司;水浴鍋,購自上海一恒科技有限公司;移液器、排槍,購自德國Eppendorf公司。

        2 方法

        2.1 模型建立

        2.1.1 骨髓移植模型 參考文獻[7] 報道。

        2.1.1.1 GFP 轉基因小鼠骨髓單個核細胞的提取、分離、凍存 取6 周左右供體GFP 小鼠,脫臼處死,70%乙醇浸泡5 min,無菌分離供體鼠的股骨和脛骨,PBS 緩沖液沖洗數(shù)次,置于低糖的DMEM中剪碎,反復吹打沖出骨髓,過濾除去組織碎片,離心去上清,加入含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基,調(diào)整細胞濃度后接種于培養(yǎng)瓶里。48 h 后換液除去懸浮細胞,每3 d 進行1 次,凍存液將細胞懸浮起來,分裝到凍存管,置于液氮罐中保存?zhèn)溆谩?/p>

        2.1.1.2 野生型受體小鼠骨髓移植 采用X 線加速器放射源,對100 只雌性野生型ICR 小鼠全身進行均勻照射,總劑量8.0 Gy,劑量率0.53 Gy/min,放射后2 h 內(nèi)每只受體鼠尾靜脈注射0.1 mL“2.1.1.1”項下單個核細胞懸液。小鼠骨髓重建4周后斷尾取血,保存于肝素鈉采血管中,EDTA 抗凝,樣品在4 ℃冰箱中保存,24 h 內(nèi)用流式細胞儀測定骨髓中GFP 陽性細胞比例,以判斷造模成功與否。

        2.1.2 腎虛流產(chǎn)模型 參考文獻[8?9] 報道。將“2.1.1.2”項下造模成功的雌性小鼠與同種雄性小鼠合籠交配,建立正常妊娠模型,以檢出陰栓者或雌性小鼠陰道內(nèi)見精子者為妊娠第0 天。在妊娠第1~9 天,雌性小鼠灌胃給予450 mg/kg 羥基脲進行造模,在妊娠第10 天上午灌胃給予4.0 mg/kg米非司酮,以復制腎虛流產(chǎn)模型。

        2.2 分組與給藥 將40 只“2.1.1.2”項下造模成功、GFP 標記的骨髓移植雌性小鼠隨機分為4組,分別為模型組及中藥低、中、高劑量組,每組10 只,另取10 只GFP 標記的骨髓移植正常小鼠作為空白組,依據(jù)體表面積計算法、補腎安胎合劑臨床應用劑量換算成小鼠給藥劑量。模型組及中藥低、中、高劑量組小鼠分別灌胃給予生理鹽水及3.0、6.0、12.0 g/kg 補腎安胎合劑,而空白組小鼠灌胃給予生理鹽水,各組均連續(xù)給藥4 周。

        2.3 小鼠胚胎丟失率檢測 剖視小鼠子宮,觀察胚胎丟失情況,計算胚胎丟失率,公式為丟失率=[丟失胚胎數(shù)/(丟失胚胎數(shù)+存活胚胎數(shù))]×100%。

        2.4 EPCs 數(shù)量檢測 處死小鼠,浸泡于75%乙醇中消毒,在超凈臺上無菌分離雙側股骨和脛骨,浸泡于PBS 緩沖液中,反復沖洗骨髓腔,制備骨髓單個核細胞懸液,采用流式細胞術檢測。采集經(jīng)肝素鈉抗凝的外周血,直接采用流式細胞術檢測。蛻膜組織用PBS 緩沖液沖洗數(shù)次,制備單細胞懸液后,經(jīng)流式細胞儀檢測GFP、Flk?1、Sca?1 陽性細胞占單核細胞的比例,通過Cell Quest 軟件分析單個核細胞中GFP+/Flk?1+/Sca?1+的EPCs 占比。

        2.5 外周血SDF?1α 水平及蛻膜組織CXCR?4 表達檢測 小鼠外周血離心后取上清液,采用ELISA法檢測SDF?1α 水平。將蛻膜組織制成混懸液后,采用ELISA 法檢測蛻膜組織CXCR?4 表達。

        2.6 統(tǒng)計學分析 通過SPSS 21.0 軟件進行處理,計量資料以()表示,所有數(shù)據(jù)均先進行正態(tài)性檢驗,2 組間比較采取獨立樣本t檢驗,3 組及3組以上之間比較采取方差分析。P<0.05 表示差異具有統(tǒng)計學意義。

        3 結果

        3.1 GFP 骨髓嵌合率檢測 如圖1 所示,小鼠骨髓單個核細胞的GFP 陽性率為94.2%。骨髓移植后,小鼠死亡6 只,采用流式細胞儀測定其骨髓中GFP 陽性細胞比例,發(fā)現(xiàn)44 只造模失敗,50 只造模成功,成功率為53.2%。

        圖1 骨髓移植小鼠GFP 陽性率Fig.1 GFP positive rates in bone marrow transplantation mice

        3.2 小鼠胚胎丟失率 如表1 所示,空白組小鼠胚胎丟失率低于模型組、中藥低劑量組(P<0.01);模型組小鼠胚胎丟失率高于中藥各劑量組(P<0.05,P<0.01);與中藥高劑量組比較,中藥低劑量組小鼠胚胎丟失率升高(P<0.05);與中藥低劑量組比較,中藥中劑量組小鼠胚胎丟失率降低(P<0.05)。

        表1 各組小鼠流產(chǎn)率及胚胎丟失率比較(, n=10)Tab.1 Comparison of abortion rates and embryo loss rates of mice among various groups(, n =10)

        表1 各組小鼠流產(chǎn)率及胚胎丟失率比較(, n=10)Tab.1 Comparison of abortion rates and embryo loss rates of mice among various groups(, n =10)

        注:與空白組比較,■■P<0.01;與模型組比較,▲P<0.05,▲▲P<0.01;與中藥高劑量組比較,●P <0.05;與中藥低劑量組比較,★P<0.05。

        3.3 小鼠骨髓EPCs 數(shù)量 如表2、圖2 所示,與空白組比較,模型組、中藥各劑量組小鼠骨髓EPCs 數(shù)量降低(P<0.01);與模型組比較,中藥高劑量組小鼠骨髓EPCs 數(shù)量升高(P<0.01);與中藥高劑量組比較,中藥中、低劑量組小鼠骨髓EPCs 數(shù)量降低(P<0.01)。

        圖2 小鼠骨髓流式細胞檢測Fig.2 Detection of bone marrow of mice by flow cytometry

        表2 各組小鼠骨髓EPCs 數(shù)量比較(, n=10)Tab.2 Comparison of EPCs counts in bone marrow of mice among various groups(, n=10)

        表2 各組小鼠骨髓EPCs 數(shù)量比較(, n=10)Tab.2 Comparison of EPCs counts in bone marrow of mice among various groups(, n=10)

        注:與空白組比較,■■P<0.01;與模型組比較,▲▲P<0.01;與中藥高劑量組比較,●●P<0.01。

        3.4 小鼠外周血EPCs 數(shù)量 如表3 所示,與空白組比較,模型組、中藥各劑量組小鼠外周血EPCs 數(shù)量降低(P<0.05,P<0.01);與模型組比較,中藥各劑量組小鼠外周血EPCs 數(shù)量升高(P<0.01)。

        表3 各組小鼠外周血EPCs 數(shù)量比較(, n=10)Tab.3 Comparison of EPCs counts in peripheral blood of mice among various groups(, n=10)

        表3 各組小鼠外周血EPCs 數(shù)量比較(, n=10)Tab.3 Comparison of EPCs counts in peripheral blood of mice among various groups(, n=10)

        注:與空白組比較,■P <0.05,■■P <0.01;與模型組比較,▲▲P<0.01。

        3.5 小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量 如表4 所示,與空白組比較,模型組、中藥各劑量組小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量降低(P<0.01);與模型組比較,中藥各劑量組小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量升高(P<0.05,P<0.01);與中藥高劑量組比較,中藥低、中劑量組小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量降低(P<0.05,P<0.01);與中藥低劑量組比較,中藥中劑量組小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量升高(P<0.05)。

        表4 各組小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量比較(, n=10)Tab.4 Comparison of EPCs counts in decidual tissue of mice among various groups(, n=10)

        表4 各組小鼠蛻膜組織EPCs 數(shù)量比較(, n=10)Tab.4 Comparison of EPCs counts in decidual tissue of mice among various groups(, n=10)

        注:與空白組比較,■■P<0.01;與模型組比較,▲P<0.05,▲▲P<0.01;與中藥高劑量組比較,●P<0.05,●●P<0.01;與中藥低劑量組比較,★P<0.05。

        3.6 小鼠外周血SDF?1α 水平、蛻膜組織CXCR?4表達 如圖3 所示,空白組小鼠外周血SDF?1α 水平高于模型組及中藥低、中劑量組(P<0.05,P<0.01);模型組小鼠外周血SDF?1α 水平低于中藥各劑量組(P<0.01);中藥低劑量組小鼠外周血SDF?1α 水平低于中藥中、高劑量組(P<0.05)。與空白組比較,模型組小鼠蛻膜組織CXCR?4 表達低于中藥各劑量組(P<0.01);與模型組比較,中藥各劑量組小鼠蛻膜組織CXCR?4 表達升高(P<0.05,P<0.01)。

        圖3 各組小鼠外周血SDF?1α 水平、蛻膜組織CXCR?4 表達Fig.3 SDF?1α levels in peripheral blood and CXCR?4 expressions in decidual tissue of mice in various groups

        4 討論

        自然流產(chǎn)在中醫(yī)角度屬“胎漏”“胎動不安”“滑胎”“墮胎”“小產(chǎn)”范疇。歷代醫(yī)家多認為該病以腎虛為本,加之后天外感六淫,內(nèi)傷七情等病因多造成脾的功能失司。腎氣不足,不能維系胞脈,以致胎失所系;脾氣虧虛,不能充養(yǎng)胞脈,以致胎失所養(yǎng),二者相互影響,導致胎元不固。因此胞胎難以維系在于脾腎不足所致胞脈不系不充之病。胞脈為隸屬于胞宮之血脈,胞絡為絡屬于胞宮的脈絡,胞宮通過胞脈、胞絡與其他臟腑相聯(lián)系,它們將匯聚于沖任二脈的陰血下注與胞宮,并與足少陰腎經(jīng)發(fā)生經(jīng)絡上的聯(lián)系。胞脈是絡脈的組成部分,絡脈將一身氣血灌溉到臟腑組織內(nèi),是維持人體生命活動、保持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定的網(wǎng)絡結構[10]。中醫(yī)的絡脈較西醫(yī)的血管功能更甚,絡脈之血絡的功能與西醫(yī)微血管類似。因此,從血管角度研究中醫(yī)藥防治自然流產(chǎn)成為目前的研究熱點。

        從現(xiàn)代醫(yī)學角度,由血管新生促進的母胎界面血管重鑄是妊娠維持的關鍵[11]。EPCs 在維持母體血管系統(tǒng)功能穩(wěn)定及子宮胎盤形成過程中發(fā)揮重要作用,其可以通過動員、歸巢影響自然流產(chǎn)母胎界面血管重鑄[12]。在生理狀態(tài)下,骨髓EPCs 處于靜息狀態(tài)。當存在各種外源性或內(nèi)源性因素干預骨髓局部的微環(huán)境時,會誘導干細胞穿過竇狀內(nèi)皮離開骨髓進入血流。該動員過程,將EPCs 由骨髓轉移至外周血,增強代償性血管重建。研究表明,外周中SDF?1α表達上調(diào)可誘導EPCs動員[13?14]。當EPCs 動員到外周循環(huán)血中后,血管損傷部位產(chǎn)生釋放趨化因子如VEGF、SDF?1α,分別與EPCs 表面表達的受體VEGFR?2 及CXCR?4 相結合,EPCs順趨化因子梯度濃度趨化到內(nèi)皮損傷部位或組織缺血部位;趨化過程完成后,EPCs 遷移至內(nèi)皮細胞表面,侵襲入內(nèi)皮下基質(zhì)完成內(nèi)皮修復。由此可見,SDF?1a 誘導的EPCs 動員和歸巢可能在母胎界面血管重鑄過程中扮演了重要角色。

        補腎安胎合劑是我院的院內(nèi)制劑,為壽胎丸加減而成,具有補腎健脾、益氣安胎的作用,唯有腎氣足、脾氣充方能使沖任匯聚精血于胞宮、胞脈,使胎元穩(wěn)固,與現(xiàn)代醫(yī)學中,促進母胎界面血管生成有異曲同工之妙。我們既往已有制備腎虛流產(chǎn)模型進行研究,結果顯示流產(chǎn)大鼠母胎界面胰島素樣生長因子?1(IGF?1)與血管內(nèi)皮因子VEGF 表達呈正相關,補腎安胎沖劑可以上調(diào)腎虛流產(chǎn)大鼠蛻膜IGF?1 和VEGF 表達[15]。郝樂樂等[16]通過復制正常妊娠模型、復發(fā)性流產(chǎn)模型后進行分組研究,結果顯示補腎安胎沖劑可通過調(diào)控VHL/HIF?1α 信號通路改善復發(fā)性流產(chǎn)小鼠母胎界面血管生成,從而降低流產(chǎn)率。本實驗在既往研究基礎上,著重對內(nèi)皮祖細胞動員、歸巢的研究,由實驗結果可知:補腎安胎合劑可提高骨髓、外周血、蛻膜組織中EPCs 數(shù)目,其可能的機制與上調(diào)外周血SDF?1α水平與蛻膜組織中CXCR?4 表達有關。即補腎安胎合劑可通過促進骨髓EPCs 的動員、誘導EPCs 歸巢至母胎界面缺血部位,從而起到防治流產(chǎn)的發(fā)生,驗證了中醫(yī)“胞脈系于腎”“腎主骨生髓”、自然流產(chǎn)“從脾腎論治”的科學內(nèi)涵。

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