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        水蛭抗凝血活性物質分析及水蛭素提取純化的研究進展

        2021-01-07 18:00:14王宇維劉錦瑜于佳源趙蔭騰李繼紅
        神經(jīng)藥理學報 2021年5期
        關鍵詞:抗凝血水蛭凝血酶

        孫 雨 王宇維 劉錦瑜 于佳源 趙蔭騰 李繼紅

        1.河北北方學院藥學系,張家口,075000,中國

        2.河北北方學院基礎醫(yī)學院,張家口,075000,中國

        中藥水蛭始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》:“水蛭,味咸平。主逐惡血淤血,月閉,破血瘕積聚,無子,利水道?!闭f明藥用水蛭具有破血、逐瘀等功效,經(jīng)研究表明其具有抗凝血、抗血栓、降脂、抗腫瘤、抗細胞凋亡、抗炎等作用[1],可用于治療和預防各種心腦血管疾病、腫瘤、痛風、腎病等。在水蛭體內(nèi)提取的水蛭素是一種酸性肽類化合物,是迄今世界上發(fā)現(xiàn)的最強的天然凝血酶抑制劑。在臨床方面,水蛭素多用于治療彌漫性血管內(nèi)凝血(diffuse intravascular coagulation,DIC),不穩(wěn)定性心絞痛(unstable angina,USA),急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AM),連續(xù)性腎臟替代治療(continuous renal replacement therapy,CRRT)。國內(nèi)外醫(yī)療行業(yè)正試圖通過各種方式提取天然水蛭素,并將其開發(fā)成新一代高效特異性抗凝血、抗栓、抗腫瘤的藥物。

        水蛭體內(nèi)含有多種抗凝血活性物質,水蛭素是其中的一種。不同種類的水蛭含有不同的抗凝血有效成分,這極大影響了提取方法和條件的選擇。提取分離工作是開發(fā)利用水蛭素有效活性成分的基礎,使用不同方法對實驗結果也會產(chǎn)生不同影響。因此本文綜述了幾種常見水蛭中含有的抗凝血活性物質成分,并且對水蛭素的提取和純化方法進行總結,旨在為高效快速提取水蛭素的方法的深入研究提供參考和借鑒。

        1 不同品種水蛭抗凝血活性物質分析

        1.1 日本醫(yī)蛭(hirudo nipponica whitman)

        日本醫(yī)蛭是吸血水蛭,軀體內(nèi)主要含水蛭素,但日本醫(yī)蛭體型小,水蛭素總含量較少。日本醫(yī)蛭軀體內(nèi)含有和水蛭素結構相似,但是毫無抗凝血活性的偽水蛭素[2]。Markwardt 通過截取日本醫(yī)蛭的頭部或刺激唾液腺的方法提高了水蛭素純度,推測真正的水蛭素可能主要存在于其頭部或唾液腺中[3]。通過比較不同工藝條件對其抗凝血活性的影響,發(fā)現(xiàn)水蛭素受高溫影響會嚴重失活,因此需要嚴格低溫保存[4]。

        1.2 寬體金線蛭(whitmania pigra)

        寬體金線蛭屬于非吸血水蛭,主要以螺、蚌等軟體動物的體液為食。張彬等[5]曾認為此種非吸血水蛭體內(nèi)可能不含水蛭素。近年來,程珊[6]采用 Native-PAGE與Western blot 結合的方法檢測到寬體金線蛭體內(nèi)含有與凝血酶結合的活性多肽,并且這種活性抗凝血多肽能與凝血酶形成不同比例穩(wěn)定結合的蛋白質復合體,此外寬體金線蛭中還含有與凝血因子FⅩa、FⅨa 結合的活性多肽。這說明寬體金線蛭體內(nèi)可能有非水蛭素類的抗凝血活性物質。

        1.3 菲牛蛭(philippine cattle leech)

        菲牛蛭和日本醫(yī)蛭習性類似,主要以吸食人、畜血液為生。在菲牛蛭體內(nèi)除發(fā)現(xiàn)水蛭素外,還發(fā)現(xiàn)另一種抗凝血活性物質—菲牛蛭素[7],肖凌[8]對日本醫(yī)蛭和菲牛蛭的活性成分做了LC-MS 分析,發(fā)現(xiàn)二者結構大致相同,藥理學作用一致,但菲牛蛭素的抗凝血活性顯著高于水蛭素[9]。菲牛蛭體型大,體內(nèi)含有較多的菲牛蛭素[10],且抗凝血活性并不會受人工養(yǎng)殖的影響[5],未來這種水蛭可能是抗凝血活性物質提取的主要原料。

        2 提取方法

        水蛭素的提取方法主要分為兩類,傳統(tǒng)提取法(水提法、鹽析沉淀法、有機溶劑提取法)和仿生誘導法,另外近些年來超聲法和酶解法也被用于嘗試提取水蛭素。

        2.1 傳統(tǒng)提取方法

        水提法是用0.9%的生理鹽水按四倍水蛭原液體積的比例進行粗提,并用10%~15%的三氯乙酸除去大量雜蛋白[11],這種方法較為簡便,成本低,能夠保證蛋白質的活性,但是提取率很低。

        鹽析沉淀法是利用35%~55%飽和度硫酸銨鹽[12]降低水蛭原液中蛋白質的溶解度使之沉淀,以此達到粗提的目的,盡管蛋白質的提取率不是很高,但水蛭素的活性較高。通過正交實驗進一步研究確定利用40%飽和度硫酸銨將水蛭原液在pH 為5.5 的環(huán)境中靜置20 min后分離[13],可以達到此方法的最高提取效率。

        有機溶劑提取法就是利用醇、丙酮等作為提取溶劑。常用含水15 %的丙酮溶液(-20℃冰箱預冷)浸泡水蛭原液過夜,使得蛋白質分子充分聚集,再通過離心保留聚沉的蛋白質。這種方法具有較高的提取率,但是這種方法很容易導致蛋白失活。

        2.2 仿生誘導法

        仿生誘導法[14]是對水蛭活體進行誘導使其分泌唾液,再對唾液進行分離提純,這種方法避免了傳統(tǒng)方法對水蛭素的一次性掠奪,保護了水蛭的野生資源,又帶動了水蛭養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展。誘導的方法通常分為兩種,一種是利用化學物質進行誘導,能夠刺激鮮活菲牛蛭使其分泌出唾液的化學物質包括無機鹽、有機酸和濃度較低的無機酸,酸溶液濃度為0.1%~3%,PH 在4.5~6.8之間[15]。其中田麗華[16]研究發(fā)現(xiàn)用氯化鈉配合L-精氨酸對水蛭的誘導效果較好。

        另一種是生物誘導方法,即利用豬血、田螺等構成誘導系統(tǒng),對水蛭進行數(shù)天饑餓處理后,在室溫中性環(huán)境下對水蛭活體進行誘導[17]。生物誘導系統(tǒng)由蚯蚓提取液、殼聚糖、黃芪多糖、葡萄糖粉組成,隨后利用硫酸鋅與乙醇的混合液組成的催吐劑進行催吐。

        2.3 超聲提取法

        超聲提取法是將水蛭用組織勻漿機勻漿后,放入生理鹽水稀釋后,用20~25 KHz 的超聲波粉碎,再用三氯乙酸提取蛋白[18]。在傳統(tǒng)的勻漿實驗中發(fā)現(xiàn),大部分細胞還未完全裂解,大量的水蛭素還存留在勻漿液中的水蛭體內(nèi),采用超聲波超微破碎處理迅速破壞細胞,使得提取水蛭素效率大大提高[18]。

        2.4 酶解法

        酶解法[19]是以蛋白質作為原料,再利用合適的蛋白酶對這些蛋白進行水解,把其中的生物活性肽段釋放出來。侯會會在酶解法的基礎上做了創(chuàng)新,用堿性蛋白酶酶解法提取水蛭素,將蛋白類大分子水解成具有一定活性的小分子物質,從而獲得較高的提取效率[19]。由于此方法的高安全性以及蛋白原料的可選擇性,使其在醫(yī)療行業(yè)具有優(yōu)良的研究前景。

        3 純化方法

        水蛭素的純化主要利用陰離子交換層析法、凝膠過濾色譜法、反相高效液相色譜法、超濾法、雙水相萃取法以及近年來興起的酶固定化法和特異性結合的方法等,各種純化方法對水蛭的純化程度也都不一樣。水蛭素的純度直接影響其療效,但是純度的提高必然會使提純的工藝更加繁瑣,因此找到合適的提純工藝至關重要。

        3.1 陰離子交換色譜法

        陰離子交換色譜法是水蛭素分離提純應用最廣的方法。DEAE-C52 纖維柱[20]和Q Sepharose 快速層析柱[21]都可以對水蛭素進行洗脫,收集每個峰的成分,并檢測每個峰的活性。此外馮會藏[22]等基于傳統(tǒng)的陰離子柱層析法做了改進,采用孔徑更大的DEAE-硅膠分離柱,用純鹽溶液作流動相,通過調節(jié)流動相離子濃度進行梯度洗脫提純。這種方法分離特異性好,容易操作,但是需要后期除鹽。

        3.2 凝膠過濾色譜法

        凝膠過濾色譜法是利用蛋白質分子量的大小進行分離純化,一般先用Sephadex G-75 凝膠過濾柱對水蛭素粗品洗脫分離,接著用Sephadex G-25 層析柱完成脫鹽處理[20]。這種方法可用于蛋白分離和脫鹽,但收集到的抗凝血活性物質比較少,并且洗脫后的樣品會被大量稀釋,降低了最終活性物質的純度,因此用這種方法純化后需要濃縮處理。

        3.3 反向高效液相色譜法

        反向高效液相色譜是由非極性固定相十八烷基鍵合硅膠和甲醇、乙腈等極性流動相所組成的色譜體系,與高效液相色譜體系組成相反,能更好地調整分離效果,可用于水蛭素的進一步純化和含量測定。段超[14]等用經(jīng)Sephadex G-25 凝膠過濾后的提純液,采用含有0.1%三氟乙酸的乙腈水溶液洗脫提純,收集活性峰所在處的成分,得到更高純度的水蛭素。

        3.4 超濾提純法

        超濾提純就是利用聚砜膜濾過技術,對水蛭素進行分離,通常利用聚砜PS1(截留分子量10 000)和PS2(截留分子量5 000),段超用此方法在0.20MPa 的氮氣壓下超濾[14],這種分離蛋白的方法效率較高,容易操作,但是后續(xù)的膜清洗比較困難,若清洗不干凈會影響后續(xù)物質的分離。

        3.5 雙水相萃取法

        雙水相萃?。?3]是將化學結構不同的親水性聚合物形成互不相溶的上、下兩相,利用目的物在兩相的分配差異而進行萃取的技術。方富永[24]用雙水相萃取-凝膠色譜聯(lián)用的方法純化水蛭素粗提液得到純度較高的產(chǎn)品。此方法分離條件溫和、成本低、具有良好的研究前景。

        3.6 酶固定化法

        酶的固定化是用固體材料將酶固定在一定區(qū)域內(nèi),使其進行可重復性催化反應。苗艷麗等人采用絲素固定化凝血酶法[25]以脫膠家蠶絲素為載體,以戊二醛為交聯(lián)劑分離純化菲牛蛭中的水蛭素,迅速分離出高純的水蛭素。這種方法在工業(yè)生產(chǎn)中具有優(yōu)良前景。

        3.7 特異性結合法

        特異性結合法基于生物親和的方法,是近年來用于快速篩選和鑒定復雜物質中的特定目標的新方法。原理是生物分子之間的可逆相互作用,在配體和蛋白質之間發(fā)生親和相互作用后,THR 和配體被解離和洗脫,而未與目標結合的化合物將被丟棄。QY Huang 等人用此原理從水蛭中發(fā)現(xiàn)一種新型凝血酶抑制肽[26],此后QY Huang 以凝血酶為靶向物質,用親和超濾和UPLC-HR-Orbitrap-MS 的方法從菲牛蛭體內(nèi)篩選出了具有抗凝血活性的凝血酶靶向小分子[27]。這種方法可以篩選具有可逆性的組件與靶蛋白的結合效應,對目標具有親和力的化合物將被獲取并進一步分析。

        4 小結與展望

        水蛭素作為目前所發(fā)現(xiàn)的最強的天然抗凝血酶活性物質,其開發(fā)及利用受到醫(yī)療行業(yè)的重視。通過比較分析三種常見的水蛭,其中菲牛蛭體內(nèi)的菲牛蛭素與水蛭素藥理作用相同,結構相似,此外菲牛蛭素的抗凝血活性優(yōu)于水蛭素,同時菲牛蛭體型大、生存能力較強,可節(jié)約原料成本,極具研究前景。仿生誘導水蛭素的方法簡便可行,與其他傳統(tǒng)方法相比,此方法為水蛭素的持續(xù)利用提供了道路,既保護了水蛭的資源,也為水蛭素的產(chǎn)業(yè)化提供了便利。在水蛭素純化階段可以看出,分離純化步驟越多,產(chǎn)品的損耗也就越大。在工業(yè)生產(chǎn)上,人們應向著分離純化有合理的成本和效率等方面發(fā)展,同時要保留水蛭素的結構完整性及其生物的活性。

        國內(nèi)外通過基因工程技術獲得與天然水蛭素極其相似的重組水蛭素,并且注射和口服均可發(fā)揮藥效,可它在63 位酪氨酸殘基處未磺酸化,這使得重組水蛭素對凝血酶的抑制效果較天然水蛭素大幅度降低,臨床效果也低于天然水蛭素[28]。因此,對于開發(fā)新的重組水蛭及其他水蛭肽類衍生物也還有很遠的路程。

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