張一幟,張 媛,李 建,王秀麗,劉元杰,王 楠,徐 磊,辛凌翔,任小俠,劉 博,魏 津,馬 欣,彭小兵,李旭妮,彭國(guó)瑞,李俊平, 羅玉峰
(中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,北京100081)
活菌計(jì)數(shù)是細(xì)菌類活疫苗質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)中重要的檢驗(yàn)參數(shù),與疫苗的保護(hù)效果關(guān)系緊密[1]。 現(xiàn)行獸用細(xì)菌類生物制品檢驗(yàn)中的活菌計(jì)數(shù)方法依照《中國(guó)獸藥典》(2015 年版三部)附錄3405“活菌計(jì)數(shù)法”執(zhí)行[2],但其中有部分內(nèi)容過(guò)于籠統(tǒng),試驗(yàn)成立條件缺乏科學(xué)標(biāo)準(zhǔn),以至于全國(guó)各疫苗生產(chǎn)企業(yè)檢驗(yàn)人員對(duì)方法的要求有理解上的差別,造成企業(yè)間乃至同企業(yè)人員間檢驗(yàn)結(jié)果經(jīng)常出現(xiàn)差異,最終影響細(xì)菌活疫苗質(zhì)量的評(píng)判。 因此,本研究擬參照國(guó)內(nèi)外活菌計(jì)數(shù)相關(guān)規(guī)程,通過(guò)試驗(yàn)比對(duì)研究,對(duì)“活菌計(jì)數(shù)法”進(jìn)行修訂,使該方法要求更明確,普適性更高,從而減少操作誤差,提升“活菌計(jì)數(shù)法”的規(guī)范性、可操作性及檢驗(yàn)結(jié)果可靠性。
目前美國(guó)農(nóng)業(yè)部獸醫(yī)生物制品檢驗(yàn)所依照的美國(guó)聯(lián)邦法規(guī)第九卷(9 CFR)中,對(duì)于活菌計(jì)數(shù)方法有著明確要求[3],并于2015 年完善修訂了標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程(BBSOP0019.04)[4]。 相對(duì)于我國(guó)所用的活菌計(jì)數(shù)方法,主要有兩點(diǎn)不同:①在將稀釋液滴加于平板這一操作中,所使用的儀器量程不同,我國(guó)采用1 mL 量程的吸管滴加0.1 mL 菌液,而美國(guó)采用100 ~200 μL 量程的移液器滴加0.1 mL 菌液;②在滴加菌液后,我們目前所用方法是靠?jī)A斜和轉(zhuǎn)動(dòng)將菌液分散,而美國(guó)使用無(wú)菌涂布器將菌液涂布開(kāi)。 本研究針對(duì)當(dāng)前活菌計(jì)數(shù)法三個(gè)方面關(guān)鍵點(diǎn),參考美國(guó)農(nóng)業(yè)部獸藥生物制品中心公開(kāi)的SOP(BBSOP0019.04)和多位檢驗(yàn)員的操作建議,對(duì)于平板干濕程度、滴加平板儀器、菌液分散方法進(jìn)行單變量比對(duì)試驗(yàn),提出操作更方便、更精準(zhǔn)、容錯(cuò)率更高的“活菌計(jì)數(shù)法”的修訂方案,并進(jìn)一步提出以標(biāo)準(zhǔn)差(s)衡量結(jié)果的有效性及提供參考值。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料 待檢樣品、吸管(1 mL、5 mL、10 mL)、試管(18 mm ×18 cm)、15 mL 離心管、50 mL離心管、培養(yǎng)皿(直徑9 cm)、無(wú)菌涂布器、200 μL移液器和配套吸頭;待檢樣品所需稀釋液及固體培養(yǎng)基(本實(shí)驗(yàn)所用稀釋液及固體培養(yǎng)基均購(gòu)自北京中海生物科技有限公司)參照表1。
表1 不同細(xì)菌產(chǎn)品活菌計(jì)數(shù)用稀釋液及適宜培養(yǎng)基對(duì)應(yīng)表Tab 1 Correspondence table of diluent and suitable medium for different bacterial products plate count
1.2 儀器設(shè)備 微波爐、恒溫水浴箱、生物安全柜、37 ℃恒溫培養(yǎng)箱、渦旋振蕩儀、電動(dòng)移液器、廢棄液體及吸管存放用容器。
1.3 試驗(yàn)方法
1.3.1 培養(yǎng)平板制備 根據(jù)待檢樣品種類選取相應(yīng)瓊脂培養(yǎng)基加熱融化,冷卻至50 ~60 ℃后于生物安全柜中加入相應(yīng)營(yíng)養(yǎng)成分(37 ℃預(yù)熱)后制備平板,每付培養(yǎng)皿加入瓊脂15 ~20 mL。 待平板凝固后進(jìn)行預(yù)培養(yǎng)或裝入塑封袋4 ℃保存。
1.3.2 稀釋菌液 按待檢產(chǎn)品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)所規(guī)定的每頭(羽)份樣品應(yīng)至少含有的活菌數(shù)或科研實(shí)驗(yàn)要求確定樣品的稀釋倍數(shù)。 先進(jìn)行放大稀釋,再進(jìn)行10 倍系列稀釋,稀釋過(guò)程中通過(guò)使用渦旋振蕩器或上下顛倒混勻保證菌液稀釋液充分混勻,最終稀釋度選擇每付培養(yǎng)皿上生長(zhǎng)的菌落數(shù)40 ~200 CFU 為宜。
1.3.3 滴平板 用1 mL 吸管或200 μL 移液器分別從最終稀釋管中吸取菌液,滴于3 個(gè)平板上,100 μL/平板。 之后轉(zhuǎn)動(dòng)平板或用無(wú)菌涂布器將菌液涂均勻(3 個(gè)平板用同一個(gè)涂布器的同一邊進(jìn)行涂布,涂布時(shí)注意不要將菌液涂布到平板邊緣)。之后蓋上平板蓋正置于培養(yǎng)箱中,30 min 后將平板倒置,培養(yǎng)至適宜時(shí)間。
1.3.4 計(jì)算菌數(shù) 肉眼觀察并計(jì)數(shù)平板中的菌落,算出3 個(gè)平板的平均菌落數(shù),再乘以總體稀釋度(包括放大稀釋和連續(xù)稀釋)倍數(shù),再乘以10(每付平板滴加菌液0.l mL),即為每1.0 mL 原樣品中所含的菌數(shù),再除以疫苗的頭(羽)份數(shù),即為每頭(羽)份疫苗中所含有的活菌數(shù)。
1. 3. 5 數(shù) 據(jù)統(tǒng)計(jì) 使用GraphPad Prism 6. 0(GraphPad, La Jolla, CA, USA) 軟件以及SPSS 16.0軟件對(duì)于實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,其中以平均值±標(biāo)準(zhǔn)平均誤差() 表示。 數(shù)據(jù)分析采用t檢驗(yàn)法來(lái)比較各組間差異。 其中ns (P>0.05),即no significant,表示無(wú)顯著差異,?(P<0.05)表示有顯著差異,??(P<0.01) 表示差異十分顯著。
2.1 活菌計(jì)數(shù)法相關(guān)步驟的優(yōu)化
2.1.1 平板干濕程度 《中國(guó)獸藥典》(2015 年版三部)附錄3405 收錄的“活菌計(jì)數(shù)法”對(duì)于平板干濕程度沒(méi)有提出明確要求。 檢驗(yàn)員們的多年操作經(jīng)驗(yàn)均認(rèn)為平板干濕程度對(duì)于活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn)至關(guān)重要。 為確定平板干濕程度,考慮到操作方法的普適性和易操作性,本研究采取將制備平板完成后(平板凝固)進(jìn)行預(yù)培養(yǎng),以預(yù)培養(yǎng)時(shí)間量化平板干濕程度。 本次試驗(yàn)使用仔豬副傷寒沙門(mén)氏菌活疫苗參考品進(jìn)行活菌計(jì)數(shù),馬丁瓊脂平板在制備完成凝固后(倒板后30 min),轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)箱進(jìn)行預(yù)培養(yǎng)0.5 ~48 h 不等(圖1)。 分別取出預(yù)培養(yǎng)不同時(shí)間的馬丁瓊脂平板進(jìn)行活菌計(jì)數(shù),將適宜濃度的菌液滴加至平板上,轉(zhuǎn)動(dòng)傾斜引導(dǎo)菌液在平板上均勻分散之后放入培養(yǎng)箱中,在不開(kāi)蓋的情況下正置30 min后倒置培養(yǎng)24 h,觀察各個(gè)平板中菌落是否出現(xiàn)堆疊、是否在邊緣生長(zhǎng)并記錄計(jì)數(shù)結(jié)果。
圖1 不同預(yù)培養(yǎng)時(shí)間平板進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)結(jié)果(0.5 ~48 h)Fig 1 Bacterial plate count results on plates with different pre-culture time (0.5 ~48 h)
結(jié)果顯示平板預(yù)培養(yǎng)12 ~24 h 后進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn)?zāi)軌蝽樌?jì)數(shù),菌落分布無(wú)異常情況。 而預(yù)培養(yǎng)小于12 h 的平板會(huì)因過(guò)濕而導(dǎo)致菌落堆疊、菌落貼邊生長(zhǎng),最終無(wú)法計(jì)數(shù)。 預(yù)培養(yǎng)48 h 由于平板過(guò)干,菌液無(wú)法充分分散,部分菌落出現(xiàn)重疊情況,從而影響計(jì)數(shù)結(jié)果。 因此平板最好預(yù)培養(yǎng)12 ~24 h后再進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn)。
2.1.2 滴加菌液 將稀釋液滴加于平板這一操作步驟,目前采用1 mL 量程的吸管滴加0.1 mL 菌液的方法,而美國(guó)與歐洲使用100 ~200 μL 量程的移液器滴加0.1 mL 菌液。 在正確合規(guī)的操作下,引用誤差越小,準(zhǔn)確度越高,而引用誤差是絕對(duì)誤差的最大值與儀表量程的比值,即與儀器量程負(fù)相關(guān)[5]。 從儀器規(guī)格來(lái)看,選用量程更符合使用體積的儀器更為精確。
為驗(yàn)證兩種滴加菌液方法對(duì)于活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn)的影響,本研究分別使用兩種方法進(jìn)行多次活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn),所用樣品及其他步驟完全相同,將所得結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。 結(jié)果說(shuō)明使用移液器滴加菌液方法與傳統(tǒng)方法無(wú)顯著性差異,可以互相替代,而且移液器滴加菌液方法的標(biāo)準(zhǔn)差和標(biāo)準(zhǔn)誤均小于傳統(tǒng)方法,說(shuō)明移液器方法的離散程度更低,隨機(jī)誤差更小(表2 和圖2)。
表2 不同儀器滴加菌液活菌計(jì)數(shù)結(jié)果統(tǒng)計(jì)表Tab 2 Bacterial plate count statistics with different instruments
圖2 不同儀器滴加菌液活菌計(jì)數(shù)結(jié)果Fig 2 Bacterial plate count results with different instruments
2.1.3 菌液分散 將稀釋液滴加于平板這一操作步驟,我國(guó)目前采用傾斜和轉(zhuǎn)動(dòng)平板將菌液分散,而美國(guó)與歐洲使用無(wú)菌涂布器將菌液涂布開(kāi)。 為驗(yàn)證兩種菌液分散方法對(duì)于活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn)的影響,本研究分別按照傳統(tǒng)旋轉(zhuǎn)傾斜法和涂布法進(jìn)行菌液分散,進(jìn)行多次活菌計(jì)數(shù)試驗(yàn),所用樣品及其他步驟完全相同,將所得結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。 結(jié)果顯示使用涂布器分散菌液方法與傳統(tǒng)方法無(wú)顯著性差異,可以互相替代,而且涂布器分散菌液方法的標(biāo)準(zhǔn)差和標(biāo)準(zhǔn)誤均小于傳統(tǒng)方法,說(shuō)明涂布法的離散程度更低,隨機(jī)誤差更?。ū? 和圖3)。
表3 不同菌液分布方式活菌計(jì)數(shù)結(jié)果統(tǒng)計(jì)表Tab 3 Bacterial plate count statistics in different distribution methods
圖3 不同菌液分布方式活菌計(jì)數(shù)結(jié)果Fig 3 Bacterial plate count results in different distribution methods
2.2 修訂方法與傳統(tǒng)方法比對(duì) 本研究第一部分通過(guò)單變量試驗(yàn)確定了平板適宜預(yù)培養(yǎng)的時(shí)間,之后驗(yàn)證使用移液器滴加菌液和用涂布器分散菌液可以替代原方法,且結(jié)果的離散程度小于原方法。在原方法的基礎(chǔ)上,使用移液器滴加菌液和用涂布器分散菌液,在此我們稱之為“修訂方法”。 第二部分我們使用修訂方法與目前的傳統(tǒng)方法進(jìn)行比對(duì)。將同一樣品分別使用傳統(tǒng)方法和修訂方法進(jìn)行比對(duì)試驗(yàn),結(jié)果顯示兩種方法沒(méi)有顯著性差異,可以互相替代,而且修訂方法的標(biāo)準(zhǔn)差和標(biāo)準(zhǔn)誤均小于傳統(tǒng)方法,說(shuō)明修訂方法的離散程度更低,隨機(jī)誤差更?。ū? 和圖4)。
圖4 活菌計(jì)數(shù)傳統(tǒng)方法與修訂方法比對(duì)結(jié)果Fig 4 Comparison between traditional method and revised method for bacterial plate count
表4 活菌計(jì)數(shù)傳統(tǒng)方法與修訂方法比對(duì)結(jié)果統(tǒng)計(jì)表Tab 4 Comparison between traditional method and revised method for bacterial plate count
2.3 結(jié)果平行性條件優(yōu)化 在《中國(guó)獸藥典》(2015 年版三部)附錄3405 收錄的“活菌計(jì)數(shù)法”中,在重檢要求中對(duì)于結(jié)果平行性方面做出了規(guī)定:“如果有片狀菌落生長(zhǎng),或同一稀釋度平板間菌落相差50%以上時(shí),應(yīng)重檢?!逼渲袑?duì)于活菌計(jì)數(shù)結(jié)果平行性的要求表述過(guò)于籠統(tǒng),(最大值-最小值)/N≥50%則該次檢驗(yàn)不成立,而其中N 并沒(méi)有明確指出是什么值,是否是平均值或其他具體某一個(gè)樣本數(shù)值,以至于該評(píng)判標(biāo)準(zhǔn)在實(shí)際應(yīng)用中會(huì)產(chǎn)生標(biāo)準(zhǔn)不一的問(wèn)題。 “最大值-最小值”在統(tǒng)計(jì)學(xué)中稱為極差,是用來(lái)反映刻畫(huà)一組數(shù)據(jù)的離散程度和變異范圍,但由于極差只指明了測(cè)定值的最大離散范圍而不包括全部測(cè)量值的信息,并且極差易受極端值影響,因此不能反映其間樣本的分部情況。此外,從公式(最大值-最小值)/N 值可以看出,數(shù)值大小與N 的關(guān)系成反比。 在活菌計(jì)數(shù)結(jié)果在規(guī)定范圍(40 ~200)內(nèi)的情況下,N(一般取平均值)越低,(最大值-最小值)/N 值越大,即此種方法對(duì)于數(shù)據(jù)離散性的衡量會(huì)因N 值大小不同產(chǎn)生差異。
本研究提出使用標(biāo)準(zhǔn)差作為衡量活菌計(jì)數(shù)結(jié)果平行性的指標(biāo)[6]。 為確定既符合現(xiàn)行平行性要求,又符合活菌計(jì)數(shù)結(jié)果實(shí)際情況的標(biāo)準(zhǔn)差值,我們將本研究中進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)的數(shù)據(jù)(表5)以及多位檢驗(yàn)員驗(yàn)證活菌計(jì)數(shù)修訂方法的數(shù)據(jù)(均符合當(dāng)前數(shù)據(jù)平行性規(guī)定)(表6、表7)進(jìn)行整理,計(jì)算每組結(jié)果(3 個(gè)平板為一組)的標(biāo)準(zhǔn)差和傳統(tǒng)方法中提出的“(最大值-最小值)/平均值”。
表5 本研究活菌計(jì)數(shù)結(jié)果平行性指標(biāo)分析-1Tab 5 Analysis of the parallel index of the bacterial plate count in this study-1
表6 本研究活菌計(jì)數(shù)結(jié)果平行性指標(biāo)分析-2Tab 6 Analysis of the parallel index of the bacterial plate count in this study-2
如表5 -表7 所示,各組結(jié)果的極差/平均值均在50%以內(nèi),符合現(xiàn)行結(jié)果平行性要求。 而各組標(biāo)準(zhǔn)差值均小于20,且浮動(dòng)范圍較為集中于15 ~5 之間,占整個(gè)樣本量的74%。 這說(shuō)明即使在操作符合規(guī)定的情況下,每次檢驗(yàn)的3 個(gè)結(jié)果之間還是會(huì)出現(xiàn)差距,這是由試驗(yàn)當(dāng)中的隨機(jī)誤差所引起的,而標(biāo)準(zhǔn)差正是衡量此隨機(jī)誤差的一把尺子,應(yīng)當(dāng)符合隨機(jī)誤差的基本規(guī)律——呈正態(tài)分布。 使用SPSS16.0 軟件對(duì)于標(biāo)準(zhǔn)差數(shù)據(jù)進(jìn)行兩種正態(tài)分布檢驗(yàn)(Shapiro - Wilk 檢驗(yàn)及Kolmogorov - Smirnov檢驗(yàn)),結(jié)果均為顯著(Sig >0. 05 即正態(tài)分布)(圖5 -圖7),這證實(shí)了前文中的觀點(diǎn),說(shuō)明標(biāo)準(zhǔn)差可以作為衡量活菌計(jì)數(shù)結(jié)果平行性的標(biāo)準(zhǔn),并能夠有效地描述隨機(jī)誤差。
圖5 標(biāo)準(zhǔn)差數(shù)據(jù)正態(tài)分布檢驗(yàn)結(jié)果-1Fig 5 Normal distribution test results of Standard Deviation data-1
圖6 標(biāo)準(zhǔn)差數(shù)據(jù)正態(tài)分布檢驗(yàn)結(jié)果-2Fig 6 Normal distribution test results of Standard Deviation data-2
圖7 標(biāo)準(zhǔn)差數(shù)據(jù)正態(tài)分布檢驗(yàn)結(jié)果-3 Fig 7 Normal distribution test results of Standard Deviation data-3
表7 本研究活菌計(jì)數(shù)結(jié)果平行性指標(biāo)分析-3Tab 7 Analysis of the parallel index of the bacterial plate count in this study-3
國(guó)內(nèi)外目前對(duì)活細(xì)菌的計(jì)數(shù)有許多方法,其中滴板計(jì)數(shù)是一種比較常用且簡(jiǎn)便的計(jì)數(shù)方法。 該方法根據(jù)估算對(duì)于液體菌液進(jìn)行2 ~10 倍梯度稀釋,之后將終稀釋液滴加到計(jì)數(shù)板上,在顯微鏡下計(jì)數(shù),之后乘以相應(yīng)的稀釋倍數(shù),能夠快速即時(shí)測(cè)得菌液中的活菌數(shù)量[7]。 Seo EY 等利用熒光顯微技術(shù)對(duì)于大量細(xì)菌進(jìn)行快速計(jì)數(shù)[8]。 Bogomolny E等建立了利用固體激光器使用光學(xué)方法實(shí)時(shí)測(cè)定活細(xì)菌數(shù)量的方法,結(jié)果穩(wěn)定、高效、精確[9]。London R 等開(kāi)發(fā)了自動(dòng)化生長(zhǎng)微生物直接檢測(cè)技術(shù),通過(guò)微生物熒光標(biāo)記和激發(fā)熒光,能夠快速自動(dòng)區(qū)分不同的原核、真核微生物并即時(shí)完成計(jì)數(shù)[10]。 這些先進(jìn)方法或需要使用昂貴的儀器試劑,或需要對(duì)不同細(xì)菌的估算值進(jìn)行更多的數(shù)據(jù)積累。
本研究針對(duì)當(dāng)前活菌計(jì)數(shù)法的三個(gè)方面關(guān)鍵點(diǎn),參考美國(guó)農(nóng)業(yè)部獸藥生物制品中心公開(kāi)的SOP(BBSOP0019.04)和多位檢驗(yàn)員的操作建議,通過(guò)單變量比對(duì)試驗(yàn)改進(jìn)了活菌計(jì)數(shù)平板的干濕度要求,使得檢驗(yàn)用平板干濕程度能夠?qū)崿F(xiàn)均勻分散且不易流邊,同時(shí)排除了之前方法當(dāng)中的生物安全隱患;確定了滴平板儀器,使用量程更適合、精確度更高、操作更方便的儀器進(jìn)行菌液的滴加,減少了系統(tǒng)誤差并且使得操作更為簡(jiǎn)單;選擇涂布器進(jìn)行菌液分散,也使得整個(gè)方法更易操作,菌落分散均勻且不易流邊。
原方法中對(duì)于各平板結(jié)果平行性的要求較為模糊,缺少統(tǒng)計(jì)學(xué)支撐。 本研究提出使用標(biāo)準(zhǔn)差衡量活菌計(jì)數(shù)結(jié)果的平行性,標(biāo)準(zhǔn)差是離均差平方的算數(shù)平均數(shù)的平方根,即方差的算術(shù)平方根,是反映一組數(shù)據(jù)離散程度最常用的一種量化形式,是表示精確度的重要指標(biāo)。 當(dāng)使用活菌計(jì)數(shù)方法進(jìn)行檢測(cè)時(shí),由于檢測(cè)方法總是有誤差的,所以檢測(cè)值并不是其真實(shí)值。 設(shè)定一個(gè)只取決于檢測(cè)值與真實(shí)值之間的差距,而與真實(shí)值大小無(wú)關(guān)的穩(wěn)定性指標(biāo),才是評(píng)價(jià)檢測(cè)方法最有決定性的指標(biāo),從而保證每批檢驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確可靠[11]。 進(jìn)一步通過(guò)實(shí)驗(yàn)統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)證實(shí),活菌計(jì)數(shù)實(shí)驗(yàn)中隨機(jī)誤差所引起的結(jié)果標(biāo)準(zhǔn)差變化,是符合隨機(jī)誤差的基本規(guī)律——呈正態(tài)分布的。
本研究以試驗(yàn)數(shù)據(jù)為基礎(chǔ),比對(duì)分析后對(duì)于相關(guān)規(guī)程制修訂提出了意見(jiàn),希望能夠?qū)?xì)菌類獸用生物制品相關(guān)從業(yè)者在生產(chǎn)研究、制定規(guī)程等方面提供幫助和啟發(fā)。