劉洋,張娜娜,竇同海,俞漪,徐瓊,曲勤鳳,趙渝,楊捷琳,朱春梅
(1. 上海市質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)技術(shù)研究院國家食品質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)中心(上海),上海200233;2.上海昂樸生物科技有限公司,上海201114;3.上海師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,上海200234;4.上海海關(guān)動(dòng)植物與食品檢驗(yàn)檢疫技術(shù)中心,上海200135;5.杜邦營養(yǎng)與生物科技丹尼斯克(中國)投資有限公司,上海200335)
嗜酸乳桿菌作為重要的益生菌被廣泛用于食品中。Kumar[1-4]等人發(fā)現(xiàn)嗜酸乳桿菌對大腸桿菌、腹瀉致病菌等均有抑制作用;降低血漿中膽固醇含量[5];對乳糖不耐癥有一定的療效[4,6],對機(jī)體健康有促進(jìn)作用等[5,7]。嗜酸乳桿菌能在發(fā)酵過程中產(chǎn)生乳酸,并通過氨基酸代謝增加風(fēng)味[8]。在我國,飲料中添加益生菌特別是嗜酸乳桿菌成為新的發(fā)展趨勢[8]。
微滴式數(shù)字PCR 技術(shù)(droplet digital polymerase chain reaction,ddPCR)是近年來新發(fā)展起來的定性定量分子檢測新方法[9],用于轉(zhuǎn)基因成分、食品中致病菌、摻假產(chǎn)品等的檢測,以及在臨床上用于腫瘤細(xì)胞的檢測[10-16]。1992 年,Sykes[17]等就首次提出了ddPCR的構(gòu)想,是一項(xiàng)基于單分子目標(biāo)基因PCR 擴(kuò)增的絕對定量技術(shù),主要原理是將含有DNA 模板的PCR 反應(yīng)體系分布到大量的獨(dú)立反應(yīng)室,單分子間通過大量稀釋后分離,使得每個(gè)獨(dú)立反應(yīng)室中含有小于或等于一個(gè)拷貝,然后使這些反應(yīng)室在相同條件下獨(dú)自進(jìn)行PCR 擴(kuò)增[18-19]。含有DNA 分子的微反應(yīng)室能夠發(fā)生PCR 反應(yīng),即產(chǎn)生陽性信號;而不含DNA 的微反應(yīng)室則產(chǎn)生陰性信號[18,20],再利用泊松分布,逐一對陽性信號的微反應(yīng)室計(jì)數(shù),從而計(jì)算出樣品中初始的DNA 模板量[21]。
ddPCR 技術(shù)以其準(zhǔn)確性好、靈敏度高、無需任何校準(zhǔn)物質(zhì)、可進(jìn)行絕對定量等優(yōu)勢,已經(jīng)在臨床診斷、基因表達(dá)、環(huán)境微生物檢測等方面得到了廣泛的研究和應(yīng)用。本研究主要基于嗜酸乳桿菌SPIDR 序列,結(jié)合ddPCR 方法定量檢測飲料中的嗜酸乳桿菌,為該類產(chǎn)品的品質(zhì)檢測提供技術(shù)手段。
本研究根據(jù)國家衛(wèi)生健康委員會(huì)發(fā)布的《可用于食品的菌種名單》,結(jié)合市場上飲料中常見的乳酸菌菌株,選擇4 個(gè)嗜酸乳桿菌,19 個(gè)其他菌株進(jìn)行特異性檢測(表1)。
上述菌株購買后均由上海市質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)技術(shù)研究院自行保存。 Lactobacillus acidophilus NCFM(HOWARU?Dophilus)、Lactobacillus acidophilus La-14、HN001 HOWARU?Rhamnosus、Lactobacillus casei Lc-11、Lactobacillus paracasei Lpc-115、Lactobacillus paracasei Lpc-37、Lactobacillus salivarius Ls-33 由丹尼斯克(中國)投資有限公司惠贈(zèng)。
T100 微滴式數(shù)字 PCR 擴(kuò)增儀、QX200 微滴讀取儀、PX1 板封口機(jī)、QX200 微滴生成儀,美國BIO-RAD;Vortex Genie2 漩渦振蕩器,美國 SI;移液槍,美國GILSON;SW-CJ-2D 超凈工作臺,蘇州凈化;ESCO LA2-4A1生物安全柜,新加坡藝思高。
ddPCR Supermix for probes、微滴生成專用油、96孔板、微滴生成卡,美國BIO-RAD。
引物與探針見表2,由英濰捷基(上海)貿(mào)易有限公司合成。
2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)菌株核酸提取方法
表1 菌株名稱及其編號
表2 本研究用到的引物與探針
(1)菌株富集:吸取1 mL 培養(yǎng)液,加入2 mL 無菌離心管中,13 000 rpm,離心5 min,去除上清,重復(fù)上述步驟1次,即共吸取培養(yǎng)液2 mL取沉淀。
(2)菌株裂解:富集后的沉淀中加入400 μL 10 mg/mL溶菌酶,37 ℃,水浴 2 h;加入 400 μL CTAB 裂解液,3 0 μL 蛋白酶K,混勻,56 ℃,2 h。而后進(jìn)行核酸提取[22]。
2.1.2 實(shí)驗(yàn)樣品核酸提取方法
樣品進(jìn)行前處理:取飲料25 mL 加入到225 mL 的無菌蒸餾水中,混勻,取5 mL 的樣品加入15 mL 離心管中,9 000 g 離心 5 min,去上清;沉淀中加入 5 mL 無菌蒸餾水,渦旋振蕩混勻,混勻液放在沸水中加熱,直至蛋白質(zhì)絮狀物出現(xiàn),9 000 g 離心5 min,去上清,沉淀中加入5 mL 無菌蒸餾水溶解,渦旋振蕩器上混勻,再次在沸水中加熱10 min,9 000 g 離心10 min,去上清。沉淀加400 μL 濃度為10 mg/mL 的溶菌酶,在渦旋振蕩器上將沉淀混勻,37 ℃孵育2 h,加入400 μL的CTAB 裂解液,56 ℃水浴 2 h。而后提取核酸[22]。粗提取核酸進(jìn)行過柱純化,用于后續(xù)PCR 擴(kuò)增。
ddPCR 擴(kuò)增體系如下配制:2×ddPCR Master Mix 各 10 μL,NCFM P F(10 μmol/L)、NCFM P R(10 μmol/L)各 1.8 μL,NCFM P 探針(10 μmol/L)0.5 μL,DNA 模板 4 μL,無菌蒸餾水補(bǔ)足至 20 μL。配制好的反應(yīng)體系移至微滴生成卡中,加70 μL 微滴生成專用油,在微滴生成器中將微滴生成卡中的樣品生成微滴。取40 μL 生成的樣品微滴至96 孔板中,封膜。在PCR 儀中進(jìn)行擴(kuò)增。擴(kuò)增程序?yàn)椋侯A(yù)變性10 min,96 ℃ ;94 ℃ 30s 變性,60 ℃ 1 min 退火加延伸,40 個(gè)循環(huán);98 ℃ 10 min 熱失活;4 ℃ 保存。升溫速度2 ℃/s。擴(kuò)增結(jié)束,將96 孔板放置在微滴讀取儀中讀數(shù)。
2.3.1擴(kuò)增條件優(yōu)化
2.3.1.1 擴(kuò)增溫度優(yōu)化
以嗜酸乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株核酸為模板,優(yōu)化擴(kuò)增溫度。退火溫度設(shè)置為 60、59.2、58、56.1、53.8、51.9、50.7、50.0 ℃共8個(gè)溫度梯度。
2.3.1.2 擴(kuò)增模板優(yōu)化
以嗜酸乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株核酸為模板,分別對10 ng/μL、5 ng/μL、3 ng/μL、2 ng/μL、1 ng/μL、200 pg/μL、100 pg/μL、10 pg/μL 等幾個(gè)核酸濃度進(jìn)行檢測。根據(jù)擴(kuò)增顯示的陽性微滴數(shù)選擇最適的模板濃度。
2.4.1 特異性檢測
特異性測試采用4 株嗜酸乳桿菌菌株,14 株其他乳桿菌,1 株嗜熱鏈球菌以及4 株致病菌的核酸為模板,采用建立的ddPCR 擴(kuò)增體系進(jìn)行檢測。
2.4.2 重復(fù)性試驗(yàn)
選取嗜酸乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株的核酸,選擇1、0.1、0.01、0.001 ng/μL 等 4 個(gè)質(zhì)量濃度的核酸稀釋液進(jìn)行擴(kuò)增。根據(jù)陽性微滴數(shù)計(jì)算CV 值。
2.4.3 靈敏度試驗(yàn)
以嗜酸乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株核酸為模板,對核酸濃度分別為 3 ng/μL、2 ng/μL、1 ng/μL、200 pg/μL、100 pg/μL、10 pg/μL、1 pg/μL、0.5 pg/μL、0.25 pg/μL、0.05 pg/μL 進(jìn)行檢測。根據(jù)ddPCR 擴(kuò)增顯示的陽性微滴數(shù)選擇最適的核酸濃度。
2.4.4 抗干擾試驗(yàn)
本研究選擇質(zhì)量濃度為 2 ng/μL、1 ng/μL、100 pg/μL、50 pg/μL、10 pg/μL、1 pg/μL 的嗜酸乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株核酸,分別 1∶1 添加 1 ng/μL 與 50 pg/μL 的德式保加利亞乳桿菌,進(jìn)行PCR 擴(kuò)增。對比實(shí)驗(yàn)組與對照組陽性微滴數(shù)之間的差異,判斷該方法抗其他菌種干擾的能力。
市場上購買含有嗜酸乳桿菌的飲料共11 份,不含嗜酸乳桿菌的飲料1 份。提取樣品核酸進(jìn)行擴(kuò)增,根據(jù)陽性微滴數(shù)計(jì)算樣品中嗜酸乳桿菌含量。
對引物和探針的溫度優(yōu)化擴(kuò)增結(jié)果顯示,不同溫度梯度對于檢測的結(jié)果影響較小。60 ℃時(shí)陽性微滴較多,選擇60 ℃作為擴(kuò)增的退火溫度。
擴(kuò)增濃度優(yōu)化的結(jié)果圖如圖1 所示,可以看出,核酸濃度為10 ng/μL、5 ng/μL、3 ng/μL 時(shí),無陰性微滴出現(xiàn),提示核酸濃度過高;核酸濃度為2 ng/μL、1 ng/μL、200 pg/μL 和100 pg/μL 時(shí),陽性微滴與陰性微滴之間有明顯的界限,但核酸濃度為2 ng/μL 時(shí)拖尾較為嚴(yán)重。后續(xù)實(shí)驗(yàn)選擇1 ng/μL 的核酸濃度作為實(shí)驗(yàn)濃度。
圖1 模板濃度優(yōu)化結(jié)果
特異性檢測結(jié)果如圖2 所示,嗜酸乳桿菌擴(kuò)增出現(xiàn)陽性微滴,其他菌株均未出現(xiàn)陽性微滴,說明引物及探針的特異性好,方法適用于嗜酸乳桿菌的特異性檢測。
不同濃度核酸重復(fù)性檢測結(jié)果如表3 所示,檢測結(jié)果的CV 值在2.34%~6.1%之間,小于7%,在可接受范圍內(nèi),證明該方法的重復(fù)性好。
圖2 特異性檢測結(jié)果
表3 ddPCR重復(fù)性驗(yàn)證
核酸水平靈敏度檢測結(jié)果表4 所示,核酸濃度為3 ng/μL 時(shí),陽性微滴與陰性微滴不能區(qū)分;核酸濃度在 2 ng/μL~0.25 pg/μL 之間陽性微滴與陰性微滴可明顯區(qū)分,0.1 pg/μL 時(shí)無陽性微滴出現(xiàn),說明在核酸水平ddPCR 的檢測下限為0.25 pg/μL。
表4 添加不同濃度菌株擴(kuò)增微滴數(shù)
抗干擾試驗(yàn)結(jié)果如圖3 所示,兩者的擴(kuò)增結(jié)果與對照組比較,兩者在數(shù)值上無明顯差異,證明該方法具有良好的抗干擾能力。
對市售的11 份樣品進(jìn)行數(shù)字PCR 定量檢測,結(jié)果顯示標(biāo)簽標(biāo)示添加嗜酸乳桿菌的樣品全部擴(kuò)增出陽性微滴(表5)。除10 號樣品外,樣品中菌的含量為1.6×103~2.3×106copies/g,與標(biāo)簽信息基本相符。結(jié)果表明,本研究建立的數(shù)字PCR 檢測方法可用于實(shí)際樣品中嗜酸乳桿菌的定量檢測。
圖3 添加干擾菌擴(kuò)增的結(jié)果圖
隨著社會(huì)和民眾對健康的重視,益生菌在食品中的應(yīng)用越來越廣泛,其中嗜酸乳桿菌作為一類功效顯著的益生菌,在飲料、發(fā)酵乳、嬰幼兒配方乳粉中應(yīng)用較多。因益生菌原料成本較高,且為生物活性物質(zhì),其添加種類和添加量需要特別關(guān)注。我國食品安全國家 標(biāo)準(zhǔn)要求飲料中添加菌種的活菌數(shù)必須≥106CFU/mL。但目前,對于飲料中益生菌的菌種檢測主要依賴傳統(tǒng)的培養(yǎng)法,耗時(shí)耗力,結(jié)果受影響因素較多,難以滿足市場精確鑒定和定量的要求,急需快速、準(zhǔn)確、特異性高的檢測方法。
目前,基于微滴式數(shù)字PCR 的分子檢測方法在食品微生物檢測中得到較大的關(guān)注和探索。蔡一村[23-25]等借助數(shù)字PCR 檢測肉制品中摻假,并得出肉質(zhì)量與陽性微滴數(shù)之間的關(guān)系式;趙新等[26-29]借助數(shù)字PCR 檢測食品中的致病菌;Collier R 等[30]研究了數(shù)字PCR 在轉(zhuǎn)基因植物檢測方面的應(yīng)用[31-32];周巍[33-34]等開發(fā)了數(shù)字PCR 在乳制品中致病菌檢測方面的方法。這些研究表明數(shù)字PCR 具有快速、準(zhǔn)確、通量高等優(yōu)點(diǎn),是食品微生物定量的重要技術(shù)。目前,國內(nèi)外對嗜酸乳桿菌的精確定量檢測研究報(bào)道較少。
本研究利用菌種特異性引物建立了嗜酸乳桿菌數(shù)字PCR 檢測方法并在飲料中應(yīng)用。方法特異性高,靈敏度達(dá)到0.25 pg/μL,且重復(fù)性好。實(shí)際樣品檢驗(yàn)結(jié)果表明方法定性定量準(zhǔn)確,與標(biāo)簽宣稱基本相符。該方法可用于飲料中嗜酸乳桿菌的定量檢測。