游新勇,崔利華,周亞麗*,李瓊,張進(jìn)
安陽工學(xué)院生物與食品工程學(xué)院(安陽 455000)
藜麥(Chenopodium quinoɑ Willd),藜科藜屬植物,最早種植于南美洲的安第斯山區(qū),具有特征性的高遺傳變異性,為不同地點(diǎn)和氣候條件下的生長提供必要的抵抗力[1-3]。由于藜麥的營養(yǎng)價(jià)值很高,在其他國家也廣泛引種種植。20世紀(jì),我國西北地區(qū)開始引進(jìn)藜麥,隨后在青海、山西、甘肅、內(nèi)蒙古等高海拔地區(qū)廣泛種植。2017年,我國的藜麥種植面積超過9 000 hm2,每年的藜麥產(chǎn)量超過1.76萬 t[4-5]。
與普通谷物不同,藜麥?zhǔn)谴罅繝I養(yǎng)元素的極好來源,特別是含有大量蛋白質(zhì)和必需氨基酸。此外,藜麥還是維生素、礦物質(zhì)等微量營養(yǎng)元素[6-9]和酚類化合物[10-11]的良好來源。這些化合物具有很強(qiáng)的體外抗氧化能力,可預(yù)防癌癥、過敏、炎癥和心血管疾病等疾病發(fā)生[10,12-13]。近年來,由于功能性食品具有降低疾病的風(fēng)險(xiǎn)并發(fā)揮了促進(jìn)健康的作用,人們對(duì)這些新產(chǎn)品的興趣日益增加。藜麥的營養(yǎng)和開發(fā)利用價(jià)值也在最近幾十年得到廣泛認(rèn)識(shí)和重視[14]。
藜麥中含有豐富酚類物質(zhì),如多酚、黃酮、皂苷等,這些化合物具有藥理學(xué)特性,可作為開發(fā)新功能性食品的主要成分[15]。有研究表明,藜麥多酚的含量與抗氧化力有關(guān),而且藜麥中大部分多酚化合物在體外仍具有生物活性[7,16-17]。同時(shí),研究發(fā)現(xiàn),藜麥葉片的提取的酚類物質(zhì),具有很強(qiáng)地抗氧化活性、單體酚還可以抑制癌細(xì)胞的增殖[18-19]。但藜麥種子中多酚物質(zhì)的提取工藝及深入研究還鮮見報(bào)道。
試驗(yàn)采用乙醇作為提取劑提取藜麥多酚,以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品,使用福林肖卡比色法測(cè)定藜麥多酚的得率。采用單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面法優(yōu)化藜麥多酚提取工藝,對(duì)藜麥多酚深入的科學(xué)研究及藜麥產(chǎn)品的開發(fā)利用提供理論依據(jù)。
青海藜麥(2018年購于山東老鄉(xiāng)生態(tài)農(nóng)業(yè)有限公司,4 ℃保存)。
無水乙醇(天津市永大化學(xué)試劑有限公司);沒食子酸(上海麥克林生化試劑有限公司);福林酚試劑(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);無水碳酸鈉(天津市北辰方正試劑廠)。試劑均為分析純。
電熱鼓風(fēng)干燥箱(HDG-9240,上海一恒科學(xué)儀器有限公司);藥材粉碎機(jī)(FW-2,浙江武義屹立工具有限公司);離心機(jī)(H1850,湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司);紫外光可見光分光光度計(jì)(T9,北京普析通用有限公司)。
1.2.1 藜麥提取液的制備
選用新鮮且較飽滿的青海藜麥種子為原料,清洗干凈去除雜質(zhì)、麩皮,干燥后采用粉碎機(jī)制粉。粉碎后用80目篩子篩分后得藜麥粉末,干燥避光保存。
準(zhǔn)確稱取1.00 g研磨好的藜麥粉末放入燒杯,加入提取溶液,設(shè)定超聲波功率,進(jìn)行提取。超聲波提取過后將提取液用蒸餾水定容至50 mL,離心(3 500 r/min,10 min),測(cè)定740 nm吸光度,計(jì)算藜麥粉末中多酚的得率,確定最佳的提取條件。
1.2.2 超聲波提取藜麥多酚的單因素試驗(yàn)
1.2.2.1 提取時(shí)間的確定
準(zhǔn)確稱取6份1.00 g藜麥粉末,設(shè)置時(shí)間梯度范圍10~60 min,每組間隔為10 min,加入體積分?jǐn)?shù)60%乙醇,料液比1︰20(g/mL),提取溫度60 ℃,超聲波功率200 W條件下提取,將提取液定容至50 mL,離心,取上清,測(cè)定740 nm處吸光度,計(jì)算多酚得率。
1.2.2.2 料液比的確定
稱取5份1.00 g藜麥粉末,設(shè)置料液比梯度1︰10,1︰15,1︰20,1︰25和1︰30(g/mL)。加入體積分?jǐn)?shù)60%乙醇,溫度60 ℃,超聲波提取功率200 W,提取30 min。將提取液定容至50 mL,離心,取上清,測(cè)定740 nm處吸光度,計(jì)算多酚得率。
1.2.2.3 乙醇體積分?jǐn)?shù)的確定
取5份1.00 g藜麥粉末,分別用體積分?jǐn)?shù)40%,50%,60%,70%和80%乙醇,料液比1︰20(g/mL),溫度60 ℃,功率200 W,提取30 min。離心,取上清,測(cè)定740 nm處吸光度,計(jì)算多酚得率。
1.2.2.4 響應(yīng)面法優(yōu)化藜麥多酚的提取工藝
根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,依據(jù)Box-Behnken中心試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理設(shè)計(jì)響應(yīng)面試驗(yàn)[20-21]。藜麥多酚的提取得率為響應(yīng)值,并將提取時(shí)間(A)、料液比(B)、乙醇體積分?jǐn)?shù)(C)作為自變量,優(yōu)化其提取工藝。自變量的試驗(yàn)水平用-1、0、1作為編碼,共設(shè)計(jì)15個(gè)試驗(yàn)點(diǎn),其中12個(gè)作為析因點(diǎn),3個(gè)為區(qū)域的中心零點(diǎn),用來估計(jì)試驗(yàn)誤差[22]。試驗(yàn)因素和水平見表1,試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案見表2。并用Minitab和Design-Expert軟件進(jìn)行對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸方差分析,得出其最優(yōu)提取工藝。
表1 響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平表
1.2.3 藜麥總酚含量的測(cè)定[23]
準(zhǔn)確吸取藜麥粉末提取液1 mL,放入10 mL比色管中,加入0.5 mL福林酚,靜置反應(yīng)1 min,加入1.5 mL 10% Na2CO3,定容到刻度線,搖勻,避光靜置1 h,取出,在740 nm處測(cè)定吸光度。根據(jù)回歸方程計(jì)算藜麥多酚質(zhì)量濃度c,根據(jù)式(1)計(jì)算藜麥多酚得率。
式中:c為多酚質(zhì)量濃度,μg/mL;V為提取液體積,mL;n為稀釋倍數(shù);w為投料量,g。
標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:配置30 μg/mL沒食子酸溶液,分別吸取0.5,1.0,1.5,2.0,2.5和3.0 mL,于10 mL的比色管中,加入0.5 mL福林酚試劑,靜置1 min,加入1.5 mL 10% Na2CO3溶液,定容,搖勻,避光靜置1 h,在740 nm處測(cè)定其吸光度。吸光度作為縱坐標(biāo),溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),繪制回歸方程y=0.094 6x+0.113 3(R2=0.995 9)。
試驗(yàn)所得的數(shù)據(jù)使用Microsoft Office Excel 2007和SPSS 17.0軟件分別進(jìn)行數(shù)據(jù)計(jì)算和顯著性分析(p<0.05),使用Origin 2016軟件繪圖,采用Minitab和Design-Expert軟件進(jìn)行響應(yīng)面分析。所有的數(shù)據(jù)均為3個(gè)重復(fù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤差。
2.1.1 提取時(shí)間對(duì)藜麥多酚得率的影響
由表2和圖1可知,提取時(shí)間在10~30 min范圍內(nèi),藜麥多酚得率逐漸增大;提取時(shí)間到30 min時(shí),藜麥多酚得率最大;隨著提取時(shí)間增加,藜麥多酚得率顯著下降。因此,選擇最佳的提取時(shí)間30 min。
表2 提取時(shí)間對(duì)藜麥多酚的影響
圖1 提取時(shí)間對(duì)藜麥多酚得率的影響
2.1.2 料液比對(duì)藜麥多酚得率的影響
由表3和圖2可知,隨著提取溶劑體積增大,料液比升高,藜麥多酚得率逐漸增大,料液比1︰20(g/mL)時(shí),藜麥多酚得率達(dá)到最大值,顯著高于其他組(p<0.05);但隨著料液比增加,藜麥多酚得率顯著降低。因此,選擇最佳料液比1︰20(g/mL)。
2.1.3 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥多酚得率的影響
乙醇價(jià)格低廉,無毒,選擇性好,極性較高,對(duì)酚類物質(zhì)有較高的溶解度。由表4和圖3可知,在其他提取工藝相同的條件下,乙醇體積分?jǐn)?shù)在40%~60%范圍內(nèi),藜麥多酚得率逐漸增加,并在乙醇體積分?jǐn)?shù)60%時(shí),藜麥中多酚得率達(dá)到最大值;之后隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)增加,藜麥多酚得率顯著下降,這是由于在植物體內(nèi),多酚物質(zhì)以氫鍵結(jié)合蛋白質(zhì)、多糖類物質(zhì)完成傳質(zhì)過程,而高濃度乙醇會(huì)引起植物體內(nèi)蛋白質(zhì)變性,阻止多酚物質(zhì)的傳質(zhì)過程,降低多酚的提取量[24]。因此,選擇最佳的乙醇體積分?jǐn)?shù)60%。
表3 料液比對(duì)藜麥多酚的影響
圖2 料液比對(duì)藜麥多酚提取得率的影響
表4 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥多酚的影響
圖3 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥多酚提取得率的影響
2.2.1 響應(yīng)面優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果
通過Design-Expert分析軟件對(duì)藜麥提取條件進(jìn)行優(yōu)化試驗(yàn)設(shè)計(jì)及分析,響應(yīng)面分析見表5,方差分析結(jié)果見表6。
通過多遠(yuǎn)回歸分析,得到二次多項(xiàng)式擬合方程為Y=0.23-3.250×10-3A+2.0×10-2B-5.5×10-3C+2.5×10-4AB-7.5×10-4AC-5.25×10-3BC-0.015A2-0.019B2-0.011C2,其中,Y為藜麥多酚得率,A為提取時(shí)間(min),B為料液比(g/mL),C為乙醇體積分?jǐn)?shù)(%)。方程中,各項(xiàng)系數(shù)絕對(duì)值的大小和正負(fù),分別反映各單因素對(duì)響應(yīng)值的影響程度和影響方向[25]。
方差分析結(jié)果,如表6所示,多元二次模型p<0.000 1,表明該回歸模型極顯著;失擬項(xiàng)p=0.039 2<0.05,說明回歸模型顯著;相關(guān)系數(shù)R2=0.987 9,說明該方程擬合度較好,可用該模型預(yù)測(cè)藜麥多酚得率。顯著性檢驗(yàn)結(jié)果表明,A、C、A2、B2、C2極顯著影響藜麥多酚得率(p<0.01),三因素兩兩交互中BC項(xiàng)p<0.01,說明料液比和乙醇體積分?jǐn)?shù)兩因素的交互作用對(duì)藜麥多酚得率的影響極顯著;而B、AB、AC項(xiàng)對(duì)藜麥多酚得率影響不顯著(p>0.05)。各因素對(duì)藜麥多酚得率的影響次序依次為乙醇體積分?jǐn)?shù)(C)>提取時(shí)間(A)>料液比(B),即乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥多酚得率的影響程度最大。
表5 響應(yīng)面分析試驗(yàn)結(jié)果
表6 方差分析結(jié)果
根據(jù)回歸方程,繪制響應(yīng)面。由圖4(a)可知,乙醇體積分?jǐn)?shù)處于0水平時(shí),提取時(shí)間與料液比的交互作用較弱。比較圖4(a)和圖4(c)可知,說明乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥多酚得率的影響比提取時(shí)間大;由圖4(b)和圖4(c)可知,提取時(shí)間對(duì)藜麥多酚得率的影響比料液比大,這與方差分析的結(jié)果一致。
圖4 兩因素交互作用對(duì)多酚得率的響應(yīng)面圖
2.2.2 最佳提取工藝條件的確定
根據(jù)回歸方程計(jì)算,最佳的提取工藝參數(shù)為:提取時(shí)間31 min,料液比1︰20.45(g/mL),乙醇體積分?jǐn)?shù)57.2%。如表7所示,在此工藝條件下,藜麥多酚的最大提取得率百分比為0.227%。為了方便試驗(yàn)的進(jìn)行,最終確定最佳提取工藝條件為:乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,料液比1︰20(g/mL),提取時(shí)間30 min,并在這個(gè)條件下進(jìn)行3次相互平行試驗(yàn),結(jié)果表明,藜麥多酚的提取得率為0.227%,試驗(yàn)結(jié)果與Minitab和Design-Expert軟件設(shè)計(jì)最優(yōu)的設(shè)計(jì)模型預(yù)測(cè)值相近,說明試驗(yàn)設(shè)計(jì)的模型,預(yù)測(cè)的試驗(yàn)參數(shù)比較精準(zhǔn),證明結(jié)果合理可靠。
表7 藜麥多酚的最優(yōu)提取工藝
通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面法優(yōu)化提取工藝,確定提取時(shí)間30 min、料液比1︰20(g/mL)、乙醇體積分?jǐn)?shù)60%為最佳工藝條件,該條件下藜麥多酚得率最大為0.227%,與預(yù)測(cè)值誤差在1%內(nèi),得到的回歸方程合理可靠,具有一定可行性。試驗(yàn)結(jié)果優(yōu)化藜麥多酚的提取工藝,對(duì)藜麥功能性食品研發(fā)具有指導(dǎo)意義。