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        酶解法制備殼寡糖的工藝探索

        2020-10-26 04:20:28黃蘭蘭鄔思輝
        關(guān)鍵詞:醋酸鈉鹽酸鹽寡糖

        蔣 瑤 黃蘭蘭 鄔思輝

        (廣東省食品藥品職業(yè)技術(shù)學(xué)校,廣東 廣州 510663)

        殼寡糖(COS)來源廣泛、安全無毒、水溶性好,具有降低血脂、抗氧化、抑菌、抗癌腫瘤、提高免疫力等多種生物活性[1-2]。由甲殼素脫乙?;频玫臍ぞ厶欠肿恿看?,其應(yīng)用受到很大限制,而酶法降解殼聚糖反應(yīng)條件溫和且易控制、安全性高、環(huán)境污染少[3-5]。因此,在前人研究基礎(chǔ)之上,本研究采用纖維素酶代替成本昂貴的專一性酶降解殼聚糖,通過正交實(shí)驗(yàn),得最佳降解工藝條件,為殼寡糖的制備提供新思路。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)材料

        殼聚糖(批號(hào):181211A,脫乙酰度>95%),某生物科技有限公司;纖維素酶DE-52(產(chǎn)品編號(hào):C8350-100,F(xiàn)rom Whatman 4057-200),北京索萊寶科技有限公司;D-氨基葡萄糖鹽酸鹽(批號(hào):HL180930Y),山東萊州市海力生物制品有限公司;再生纖維素透析膜(貨號(hào):QABO-SP132592-1m截留分子量1 000),上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司;冰乙酸,無水乙酸鈉,氫氧化鈉,無水乙醇,3,5-二硝基水楊酸,焦亞硫酸鈉,酒石酸鉀鈉,苯酚。

        1.2 儀器設(shè)備

        電子天平,電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,紫外分光光度計(jì),pH計(jì),旋轉(zhuǎn)粘度計(jì)。

        1.3 實(shí)驗(yàn)方法

        溶液的配制。0.2 mol/L醋酸配制:吸取11.3 mL冰醋酸溶液于1L容量瓶中,加蒸餾水定容,配制成0.2 mol/L的醋酸溶液。0.2 mol/L的醋酸鈉的配制:準(zhǔn)確稱量16.2 g無水醋酸鈉溶于蒸餾水中,移液至1L的容量瓶中定容,配成0.2 mol/L的醋酸鈉溶液。pH 5.2醋酸-醋酸鈉緩沖溶液配制:吸取0.2 mol/L的醋酸溶液和0.2 mol/L的醋酸鈉溶液混合配制緩沖溶液,用pH計(jì)測量pH在5.2。殼聚糖溶液的配制:準(zhǔn)確稱取1.0 g殼聚糖原料溶于100 mL醋酸-醋酸鈉緩沖溶液中,配制成pH 5.2的1.0%的殼聚糖溶液。酶液的配制:準(zhǔn)確稱取0.4 g纖維素酶溶于100 mL的醋酸-醋酸鈉緩沖溶液中,配制成pH 5.2的4 g/L的酶液。DNS試劑的配制:準(zhǔn)確稱取7.5 g 3,5-二硝基水楊酸(DNS試劑)和14.0 g氫氧化鈉充分溶解于1 000 mL水中,加入216.0 g酒石酸鉀鈉、5.6 mL預(yù)先在50℃水中溶化的苯酚和6.0 g焦亞硫酸鈉,充分溶解后,盛于棕色瓶中,放置5 d穩(wěn)定后,即可使用。此試劑有效期為1 m。氨基葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液的配制:準(zhǔn)確稱取0.1 g氨基葡萄糖鹽酸鹽溶于100 mL蒸餾水中,配制成1 mg/mL的氨基葡萄糖鹽酸鹽溶液。氫氧化鈉溶液的配制:準(zhǔn)確稱取0.5 g氫氧化固體溶于蒸餾水,移液至100 mL容量瓶,定容,配制成0.5%的氫氧化鈉溶液。

        2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析

        2.1 氨基葡萄糖鹽酸鹽的標(biāo)準(zhǔn)曲線

        以質(zhì)量為0.4、0.8、1.0、1.6、2.0、2.4 mg的氨基葡萄糖鹽酸鹽與DNS試劑反應(yīng),制作氨基葡萄糖鹽酸鹽標(biāo)準(zhǔn)曲線,見圖1。

        圖1 氨基葡萄糖鹽酸鹽標(biāo)準(zhǔn)曲線

        由圖1可知,氨基葡萄糖鹽酸鹽質(zhì)量在0.4~2.4 mg范圍內(nèi)與DNS試劑反應(yīng),反應(yīng)液吸光度值與氨基葡萄糖鹽酸鹽質(zhì)量之間呈良好的線性關(guān)系,還原糖含量越高,吸光度值越高?;貧w方程y=0.5069x-0.0176,相關(guān)系數(shù)R2=0.9985。

        2.2 酶解條件的優(yōu)化

        2.2.1 底物濃度對(duì)反應(yīng)的影響 殼聚糖不溶于水,溶于稀酸溶液。因此,原料殼聚糖的濃度可直接影響酶解的程度。殼聚糖醋酸-醋酸鈉溶液在纖維素酶催化條件下進(jìn)行降解,反應(yīng)溶液pH 5.2,反應(yīng)4.5 h,反應(yīng)溫度在50℃時(shí),只改變底物濃度進(jìn)行反應(yīng),測定溶液還原糖含量,見圖2。

        圖2 底物濃度的影響

        由圖2可知,還原糖含量隨著濃度升高而升高。在1%時(shí),還原糖含量最高。超過這一濃度時(shí),還原糖含量隨之下降。說明殼聚糖濃度在1%時(shí)反應(yīng)效果最佳。

        2.2.2 溫度對(duì)反應(yīng)的影響 酶對(duì)溫度具有高度的敏感性。反應(yīng)溫度低于最適溫度時(shí),溫度升高使得酶活性增強(qiáng),酶解反應(yīng)加速;當(dāng)溫度超過最適溫度后,酶活性迅速下降直至酶蛋白失去活性。殼聚糖醋酸-醋酸鈉溶液在纖維素酶催化條件下進(jìn)行降解,在反應(yīng)溶液pH為5.2時(shí),反應(yīng)4.5 h,底物濃度在1%時(shí),只改變反應(yīng)溫度進(jìn)行反應(yīng),測定溶液中還原糖含量,見圖3。

        圖3 溫度的影響

        由圖3可知,還原糖含量隨著溫度升高而升高,在55℃時(shí),還原糖含量最高,超過這一溫度時(shí),還原糖含量隨之下降,說明在55℃時(shí)酶活性最高,是反應(yīng)的最佳溫度。

        2.2.3 反應(yīng)時(shí)間對(duì)反應(yīng)的影響 殼聚糖醋酸-醋酸鈉溶液在纖維素酶催化條件下進(jìn)行降解,在反應(yīng)溶液pH為相同的5.2時(shí),于50℃下恒溫反應(yīng)2.5~6.5 h,測量還原糖含量。

        由圖4可以看出,隨著反應(yīng)時(shí)間的延長,還原糖含量不斷增大。反應(yīng)前4.5 h,還原糖含量增長迅速;4.5 h以后,反應(yīng)逐漸降低。隨著酶解反應(yīng)的進(jìn)行,殼聚糖底物量逐漸減少,導(dǎo)致酶解速度減慢,而且,反應(yīng)時(shí)間過長容易對(duì)酶解反應(yīng)產(chǎn)生抑制作用,因此選擇反應(yīng)時(shí)間為4.5 h較為合適。

        2.2.4 酶量對(duì)反應(yīng)的影響 保持殼聚糖含量不變,改變加入的酶量,在50℃,pH為5.2下,殼聚糖與纖維素酶反應(yīng)4.5 h,測定溶液中還原糖含量。

        圖4 反應(yīng)時(shí)間的影響

        結(jié)果見圖5。隨著酶的增加,反應(yīng)速度也加快,當(dāng)酶加入量增加到12.8 mg時(shí),繼續(xù)加酶,反應(yīng)速度并不增大。在酶質(zhì)量很低時(shí),只有一部分底物能與酶結(jié)合,溶液中還有多余的底物沒有與酶結(jié)合。因此隨著酶質(zhì)量的增加,也就有更多的酶與底物結(jié)合,產(chǎn)物生成的速度也加快,整個(gè)酶反應(yīng)速度增加,故增加酶質(zhì)量可以增加反應(yīng)速度。當(dāng)酶質(zhì)量比較多時(shí),溶液中的酶全部與底物結(jié)合,溶液中沒有多余底物,雖然增加酶質(zhì)量也不會(huì)增加反應(yīng)速度,此時(shí),反應(yīng)達(dá)到最大反應(yīng)速度。所以酶質(zhì)量為12.8 mg時(shí),即酶底質(zhì)量比要達(dá)到0.24,才能達(dá)到最大反應(yīng)速度。

        圖5 酶質(zhì)量的影響

        2.2.5 正交實(shí)驗(yàn) 在pH值為5.2的條件下,研究溫度,反應(yīng)時(shí)間,酶質(zhì)量對(duì)酶解反應(yīng)的影響。根據(jù)極差R極的大小可以判斷各因素對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響大小,極差越大,所對(duì)應(yīng)的因素對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響越大(表1)。

        正交試驗(yàn)中得出的最優(yōu)條件為,酶底質(zhì)量比為0.192,反應(yīng)溫度為55℃,反應(yīng)時(shí)間為4.5 h。3.3殼寡糖的產(chǎn)率。按照冷凍干燥機(jī)的操作步驟,將透析分離好的滲透液進(jìn)行冷凍干燥。得到的干燥產(chǎn)品及其產(chǎn)率如表2所示。

        表1 正交試驗(yàn)

        表2 殼寡糖產(chǎn)量

        物料預(yù)凍后,進(jìn)行升華干燥。整個(gè)冷凍過程用時(shí)平均48 h,得到殼寡糖產(chǎn)品平均稱重為76.30 mg,即得產(chǎn)率為30.52%。

        2.3 殼寡糖產(chǎn)品的定性鑒別

        采用數(shù)字式旋轉(zhuǎn)粘度計(jì)測出酶解液的粘度,分別測產(chǎn)品,1 000 Da分子量殼寡糖及原料殼聚糖的表觀粘度。

        由表3可知,而截留分子量為1 000 Da的纖維素膜透析得到的酶解液的產(chǎn)品粘度平均粘度為1.11/mPa.s,其遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于原料物殼聚糖粘度,說明殼聚糖可以酶解成低分子量殼聚糖;而1 000 Da分子量的殼寡糖平均粘度為1.13/mPa.s。由此可知,酶解有殼寡糖生成,分子量在1 000 Da左右。

        表3 各物料的粘度

        3 結(jié)論

        纖維素酶降解殼聚糖反應(yīng)的最適條件為:在pH為5.2時(shí),溫度55℃,反應(yīng)時(shí)間4.5 h,酶質(zhì)量為11.2 mg;采用冷凍干燥法進(jìn)行干燥后,用粘度計(jì)對(duì)產(chǎn)品定性鑒別,得到的分子量為1 000 Da左右的殼寡糖,算出殼寡糖的產(chǎn)率達(dá)30%以上。纖維素酶冷凍干燥法制備殼寡糖方法比較簡單,殼寡糖產(chǎn)品性狀較好,產(chǎn)率也較高。

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