馬曉娟謝有發(fā)劉文君喬培鐘地長(zhǎng)李詒光余銀芳
(江中藥業(yè)股份有限公司,南昌,330096)
乳酸是乳酸菌發(fā)酵中的主要代謝產(chǎn)物,結(jié)構(gòu)式為CH3CHOHCOOH,由于分子內(nèi)含有一個(gè)不對(duì)稱碳原子,因此具有旋光異構(gòu)現(xiàn)象,可區(qū)分為L(zhǎng)-乳酸和D-乳酸,當(dāng)兩者以等比例混合時(shí),即成為內(nèi)消旋的DL-乳酸。由于人體只含有L-乳酸脫氫酶,從而能分解自體產(chǎn)生的或攝入的L-乳酸,不能代謝D-乳酸[1]。世界衛(wèi)生組織(WHO)明確規(guī)定,人體每天攝取D-乳酸的量限定在100 mg/kg 體重以下,而對(duì)L-乳酸不加限制[2]。目前研究食品與藥品中的L-乳酸、D-乳酸的報(bào)道較多,食品中多為發(fā)酵制品,如白酒[3]、酸奶[4-5]、乳酸飲料[5]、泡菜[6]等,藥品中有醋酸奧曲肽注射劑[7]、左氧氟沙星[8]、乳酸菌素原料制劑[9]等,關(guān)于L-乳酸、D-乳酸的測(cè)定,已經(jīng)建立的分析方法主要有4種:滴定法、旋光法、UV 酶法分析、酶電極法和液相色譜法[10]。
短鏈脂肪酸通常是指碳鏈中碳原子數(shù)少于6 的有機(jī)脂肪酸,主要包括甲酸、乙酸、丙酸、丁酸、異丁酸、戊酸、異戊酸、己酸等[11]。短鏈脂肪酸是乳酸發(fā)酵的代謝物之一,能改善一些金屬離子如鈣、鐵、鎂的代謝和吸收,對(duì)胃黏膜有一定的保護(hù)作用,也能改善乳制品的風(fēng)味[12-13]。短鏈脂肪酸被吸收后,在各種器官中被利用,在調(diào)節(jié)內(nèi)源性代謝方面起重要作用[14]。目前,氣質(zhì)聯(lián)用法用于檢測(cè)短鏈脂肪酸較為廣泛,曾鱗粞[15]用GC-MS 分別對(duì)生物組織、糞便、血液等對(duì)短鏈脂肪酸進(jìn)行了分析,龐錦偉等[16]用GC-MS 對(duì)酵素產(chǎn)品中的5種短鏈脂肪酸進(jìn)行了測(cè)定。乳酸菌素原料是由嗜酸乳桿菌發(fā)酵脫脂奶粉而成的粉末,其中乳酸及短鏈脂肪酸是主要代謝產(chǎn)物?,F(xiàn)行質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)水平較低,質(zhì)量控制方法簡(jiǎn)單,其中總酸量通過酸堿滴定法測(cè)定,沒有較為詳細(xì)的指標(biāo)性成分。本實(shí)驗(yàn)參考白璧煒的檢測(cè)方法[9]及國(guó)標(biāo)方法[17],采用高效液相色譜法對(duì)乳酸菌素原料中的L-乳酸、D-乳酸進(jìn)行分離與測(cè)定,采用氣質(zhì)聯(lián)用法[18-20]對(duì)原料中的7 種短鏈脂肪酸進(jìn)行測(cè)定,用較為先進(jìn)的技術(shù)對(duì)原料進(jìn)行質(zhì)量分析,為選擇原料提供科學(xué)的參考依據(jù)。
乳酸菌素原料,分別由A、B、C 原料廠家提供;L-乳酸對(duì)照品(≥98%)、D-乳酸對(duì)照品(≥90%),德國(guó)默克生命科學(xué)有限公司;乙酸、丙酸、丁酸、異丁酸、戊酸、異戊酸、己酸(均為色譜純),上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司。
Agilent 1200高效液相色譜儀,美國(guó)安捷倫科技有限公司;Agilent 7890A-7000D 氣質(zhì)聯(lián)用儀,美國(guó)安捷倫科技有限公司;sartorius MS204S/01 電子天平,德國(guó)Sartorius 賽多利斯公司;sartorius MS6.6S-CE 電子天平,德國(guó)Sartorius賽多利斯公司;IQ 7000 超純水儀,廈門精益興業(yè)科技有限公司;KQ-1000KDE 超聲清洗儀,昆山市超聲儀器有限公司;GL-20G-II 低溫高速離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠。
2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液的制備
精密稱取L-乳酸對(duì)照品26.540 mg,D-乳酸對(duì)照品25.060 mg,加流動(dòng)相溶解并定容到25 mL,經(jīng)稀釋并折算制成系列濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液,L-乳酸的對(duì)照品濃度分別為0.212、0.425、0.637、0.849、1.062 mg/mL,D-乳酸對(duì)照品濃度分別為 0.200、0.401、0.601、0.802、1.002 mg/mL。
2.1.2 供試品溶液的制備
精密稱取乳酸菌素原料粉末約0.6 g,精密稱定,置于100 mL 容量瓶中,加入少量流動(dòng)相溶解,超聲處理15 min, 放冷,加溶液稀釋至刻度,搖勻,用微孔濾膜過濾,即得。
2.1.3 色譜條件
色譜柱:手性柱Chirex 3126 (D)-penicillamine(4.6 mm×250 mm,5 μm);柱溫:35 ℃ ;流動(dòng)相:2 mmol/L 硫酸銅溶液(溶劑為5%異丙醇);流速:1.000 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng):254 nm;進(jìn)樣量:10 μL。
2.1.4 定性與定量
將相同色譜條件下的樣品色譜圖與乳酸標(biāo)準(zhǔn)液色譜圖進(jìn)行對(duì)照,根據(jù)保留時(shí)間對(duì)樣品中的L-乳酸、D-乳酸進(jìn)行定性。用外標(biāo)法定量,計(jì)算出樣品中L-乳酸和D-乳酸的含量。
2.2.1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液的制備
先配制高濃度混標(biāo),逐級(jí)稀釋成9.5、8、2、1、0.5、0.3、0.2、0.1、0.05、0.02、0.005 μg/mL,然后加入內(nèi)標(biāo)。
2.2.2 供試品溶液的制備
(1)稱取樣本 20 mg 于 2 mL EP 管中,加入 1 mL磷酸(0.5% v/v)溶液渦旋10 min混勻,超聲5 min。
(2)取0.1 mL 上述樣品勻液加入到1.5 mL 離心管中,加入0.5 mL MTBE(含內(nèi)標(biāo))溶液,渦旋3 min,超聲5 min;
(3)12 000 r/min、4℃條件下離心10 min,離心后吸取上層清液0.2 mL于進(jìn)樣瓶,待GC-MS/MS分析;
2.2.3 色譜條件
色譜柱:DB-FFAP (30m×0.25mm×0.25 μm);進(jìn)樣量:3 μL;載氣:氦氣;柱流速:1.2mL/min;分流模式:2∶1;升溫程序:95 ℃保持1min,以25 ℃/min 的速度升至 100 ℃ ,以 17 ℃/min 的速度升至 130 ℃ ,保持0.4 min,以 25 ℃/min 的速度升至 200 ℃ ,保持0.5 min;掃描模式:MRM;四級(jí)桿溫度:150° C;前進(jìn)樣口溫度:200 °C;傳輸線溫度:230 °C;離子源溫度:230 °C;電離電壓:70eV。
3.1.1 線性與范圍
取“2.1.1”項(xiàng)下不同濃度的L-乳酸對(duì)照品溶液、D-乳酸對(duì)照品溶液,分別精密量取10 μL 注入液相色譜儀峰面積,以對(duì)照品峰面積為橫坐標(biāo)(X),進(jìn)樣濃度為縱坐標(biāo)(Y)進(jìn)行線性回歸,得到回歸方程。
L-乳酸:y=0.0146x+0.0135(R2=0.9998);線性范圍0.2123~1.0616 mg/mL
D-乳酸:y=0.0147x-0.0036(R2=0.9997);線性范圍0.2005~1.0024 mg/mL
3.1.2 重復(fù)性試驗(yàn)
精密稱取乳酸菌素原料的同一批樣品6 份,每份約0.6 g,按“2.1.2”項(xiàng)下制備供試品方法平行制備,通過進(jìn)樣檢測(cè),根據(jù)峰面積與回歸方程計(jì)算含量。
L-乳酸的平均含量為44.2359 mg/g,RSD 值為1.48;D-乳酸的平均含量為 35.5082 mg/g,RSD 值為0.73。
圖1 L-乳酸、D-乳酸的重復(fù)性色譜圖
3.1.3 穩(wěn)定性試驗(yàn)
精密吸取乳酸菌素原料的同一供試品溶液,分別于配制后0、2、4、6、12、16、24 h 進(jìn)樣檢測(cè),根據(jù)峰面積考察樣品穩(wěn)定性。L-乳酸的RSD 值為1.32%,D-乳酸的RSD 值為1.21%。表明供試品溶液在24 h 內(nèi)穩(wěn)定性良好。
圖2 L-乳酸、D-乳酸的穩(wěn)定性色譜圖
3.1.4 加樣回收試驗(yàn)
精密稱取乳酸菌素原料的同一批樣品6 份,每份稱約0.10 g,至于25 mL 容量瓶中,同時(shí)各移取10 mL同一濃度的對(duì)照品溶液(L-乳酸0.8043 mg/mL、D-乳酸0.7172 mg/mL)至容量瓶中,按“2.1.2”項(xiàng)下供試品制備方法平行制備,通過進(jìn)樣檢測(cè),根據(jù)峰面積與回歸方程計(jì)算其含量。
L-乳酸的平均回收率為98.90%,D-乳酸的平均回收率為100.26%,RSD 值分別為1.89、1.44。
按“2.1.2”項(xiàng)下供試品制備方法平行制備,對(duì)3 個(gè)不同廠家乳酸菌素原料中L-乳酸、D-乳酸的含量進(jìn)行檢測(cè)。
表1 不同廠家乳酸菌素原料中L-乳酸、D-乳酸的含量 mg/g
由表中結(jié)果可知,不同廠家的乳酸菌素原料中,L-乳酸與D-乳酸的含量有明顯差別,兩者比值均大于1。其中廠家C 的L-乳酸含量最高,廠家B 的居中,而廠家A 的含量最低,就L-乳酸含量進(jìn)行排序?yàn)镃>B>A。
3.3.1 短鏈脂肪酸混標(biāo)總離子流圖
7 種短鏈脂肪酸混合標(biāo)液GC-MS 總離子流色譜如圖3。
表2 7種短鏈脂肪酸的出峰時(shí)間及線性關(guān)系結(jié)果
圖3 7種短鏈脂肪酸混合標(biāo)液GC-MS總離子流色譜圖
3.3.2 短鏈脂肪酸線性關(guān)系
7種短鏈脂肪酸線性關(guān)系如表2。
按“2.2.2”項(xiàng)下供試品制備方法制備樣品,對(duì)3 個(gè)不同廠家乳酸菌素原料中7 種短鏈脂肪酸的含量進(jìn)行檢測(cè)。
表3 不同廠家乳酸菌素原料中短鏈脂肪酸的含量 μg/g
采用SPSS 21.0 軟件,將三個(gè)廠家乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸、異戊酸、戊酸、己酸、7 種短鏈脂肪酸總量等8 個(gè)指標(biāo)轉(zhuǎn)換成2 個(gè)主成分,這2 個(gè)主成分提供了100%的信息,且是綜合的,相互獨(dú)立的指標(biāo),因此可用這2 個(gè)主成分對(duì)各樣品進(jìn)行綜合評(píng)價(jià),結(jié)果如表4 所示,前2 個(gè)主成分的累積貢獻(xiàn)率為達(dá)100%,因此選定前2個(gè)主成分來概括樣品信息。
表4 特征值、方差貢獻(xiàn)及累積貢獻(xiàn)率
表5 是描述各因素對(duì)主成分貢獻(xiàn)的主成分系數(shù)向量,對(duì)主成分1 貢獻(xiàn)最大的是異戊酸、丙酸、戊酸、異丁酸、丁酸,對(duì)主成分2 貢獻(xiàn)最大的是7 種有機(jī)酸總量、乙酸、己酸、丁酸、異丁酸。
以 2 個(gè)主成分 F1、F2與其貢獻(xiàn)率構(gòu)建出三個(gè)廠家短鏈脂肪酸的綜合評(píng)價(jià)模型 F,F(xiàn) 是主成分 F1、F2的線性組合,即:F=72.047F1+27.953F2。
利用數(shù)學(xué)模型對(duì)三個(gè)廠家短鏈脂肪酸進(jìn)行綜合評(píng)價(jià),結(jié)果見表6。排名為C>B>A。
本研究參考高效液相色譜法[9、12]及氣質(zhì)聯(lián)用法[13-15]分別對(duì)乳酸菌素原料中的L-乳酸與D-乳酸及乙酸、丙酸、異丁酸、丁酸、異戊酸、戊酸、己酸等7 種短鏈脂肪酸進(jìn)行了含量測(cè)定,并對(duì)短鏈脂肪酸結(jié)果進(jìn)行了主成分分析。最終結(jié)合L-乳酸、7 種短鏈脂肪酸含量,判定三個(gè)廠家乳酸菌素原料質(zhì)量為C>B>A。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,本研究所用方法準(zhǔn)確、可靠,可作為乳酸菌素原料質(zhì)量控制的方法之一。
表5 主成分系數(shù)向量
表6 3個(gè)廠家樣品的主成分得分值排序結(jié)果
不同廠家9 種有機(jī)酸的含量不同,可能是由脫脂奶粉的發(fā)酵工藝不同造成的,如發(fā)酵菌劑的活力、發(fā)酵時(shí)間或發(fā)酵溫度的差異等。在此基礎(chǔ)上,嘗試建立乳酸菌素原料品質(zhì)更全面更科學(xué)的評(píng)價(jià)體系,加入有機(jī)酸含量和比例的控制,可為進(jìn)一步提高原料的品質(zhì)、改善發(fā)酵工藝提供科學(xué)依據(jù)。