黃子彧,林瑩瑩,宋思家,任發(fā)政,,郭慧媛,,*

(1.中國農業(yè)大學 北京食品營養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,北京 100083;2.中國農業(yè)大學 教育部北京市共建功能乳品重點實驗室,北京 100083)

蠟樣芽孢桿菌是一種條件致病菌,容易引起食源性疾病的爆發(fā)[1],對食品加工的耐受能力強,在多種市售的食品中均有檢出[2-4]。根據(jù)國家食源性疾病監(jiān)測網(wǎng)對中國食源性疾病爆發(fā)的監(jiān)測資料分析,由蠟樣芽孢桿菌引起的疾病占所有食源性微生物疾病的8.6%,排在第4位[5]。蠟樣芽孢桿菌容易茹附在食品加工設備表面,且具有很高的生物被膜形成能力,在食品設備的清洗中難以被清除,從而成為該菌殘留在終產品中的主要原因之一[6]。

生物被膜是細菌茹附在固體表面并被一種基質(包括胞外多糖)包裹在內的微生物聚集體。細胞外基質對其內的菌體具有保護作用,減少殺菌清洗劑的滲透,提高細菌對殺菌劑、紫外線、高溫等不利因素的抗性[7-8]。生物被膜態(tài)細菌比浮游態(tài)微生物更難清除,是原料、產品以及人員的反復污染源[9]。研究證實,與浮游細菌相比形成生物膜的細菌對消毒劑和抗菌素的耐受性提高了1 000多倍[10]。因此,蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除是食品安全控制的一大挑戰(zhàn)。

在食品工業(yè)中,對微生物污染的控制主要依靠加工過程中的就地清洗(clean-in-place,CIP)系統(tǒng),它是在無需拆分加工設備的前提下能夠有效地清洗加工設備內表面的一種設備清洗程序[11]。由于生物被膜態(tài)菌的耐酸堿性增強,工廠中常用的CIP程序可能無法將蠟樣芽孢桿菌徹底清除。有研究報道,標準的CIP程序(先用水洗,然后使用10.0 g/L氫氧化鈉溶液65 ℃沖洗10 min,接著使用10.0 g/L硝酸溶液65 ℃沖洗10 min)對茹附在機械表面的蠟樣芽孢桿菌的清除效果并不顯著,僅能成功降低2 個數(shù)量級[12]。因此,對現(xiàn)有的CIP系統(tǒng)進行優(yōu)化對于能有效清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜非常重要。

由于生物被膜對化學或物理的處理有一定的抗性,所以單純的依靠酸堿沖刷對其的清除達不到理想的效果[13]。有研究表明,將酶、表面活性劑、殺菌劑等復合使用時,對生物被膜的清除效果顯著高于單一成分的作用[14-15]。因此,將CIP中的酸堿清洗劑與其他物質聯(lián)合使用,能更好更快地清除生物被膜,并且更好地適應生產環(huán)節(jié),提高企業(yè)效益。

本實驗對從食品生產線分離出的蠟樣芽孢桿菌的生物被膜形成能力及酸堿耐受性進行評估,挑選出生物被膜形成能力強、酸堿耐受性高的菌株作為研究對象,通過正交試驗探究能徹底清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜的最優(yōu)酸堿CIP條件。并且進一步研究酸堿清洗劑與殺菌劑過氧乙酸聯(lián)合使用對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果,探索最佳清洗條件,為生產過程中的清洗消毒試劑的選用參數(shù)提供科學依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

菌株A1～A4菌均分離自食品工廠生產線管道內,分離方法依照GB 4798.14—2014《食品微生物學檢驗 蠟樣芽孢桿菌檢驗》,經(jīng)過16S rRNA及理化指標鑒定為蠟樣芽孢桿菌,菌種保藏號為CGMCC NO.16908。菌株活化參考Lin Yingying等[16]的方法。

標準菌株蠟樣芽孢桿菌ATCC 14579(產生物被膜陰性對照菌株)、標準菌株蠟樣芽孢桿菌ATCC 10987(產生物被膜陽性對照菌株) 中國科學院微生物所菌種保藏中心;不銹鋼片(食品級304不銹鋼,長寬為1 cm×1 cm) 李通金屬有限公司。

蛋白胨、牛肉膏、氯化鈉、胰蛋白胨、葡萄糖(均為分析純) 北京易秀博谷生物科技有限公司;磷酸氫二鈉、結晶紫、過氧乙酸、苯扎溴銨、次氯酸鈉(均為分析純) 科百奧生物技術公司。

營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基(pH 7.2):蛋白胨10 g、牛肉膏5 g、氯化鈉5 g、蒸餾水1 000 mL,用于平板計數(shù);腦心浸出液培養(yǎng)基(pH 7.4):胰蛋白胨20 g、氯化鈉10 g、磷酸氫二鈉5 g、葡萄糖4 g、牛心浸出粉10 g、蒸餾水1 000 mL,用于菌株的培養(yǎng);0.10%結晶紫:結晶紫乙醇飽和液(結晶紫2 g溶于20 mL 95%乙醇中)20 mL,1%草酸銨溶液80 mL將兩液混勻置24 h后過濾即可;0.01 mol/L磷酸緩沖液溶液:KCl 0.2 g、NaCl 8.5 g、Na2HPO4·12H2O 2.9 g、KH2PO40.27 g、蒸餾水1 000 mL;中和劑:3.0%吐溫-80和0.3%卵磷脂溶于0.01 mol/L磷酸緩沖液。

1.2 儀器與設備

ZWY-C2112培養(yǎng)振蕩器 上海智城分析儀器制造有限公司;SmartspecTM3000分光光度計 美國Bio-Rad公司;SPX-250B-Z生化培養(yǎng)箱 上海博迅實業(yè)有限責任公司醫(yī)療設備廠;LMS 780共聚焦顯微鏡 德國卡爾·蔡司公司。

1.3 方法

1.3.1 蠟樣芽孢桿菌生物被膜的制備

參照Lin Yingying等[16]的方法進行。

1.3.2 生物被膜形成能力評價

采用結晶紫染色法[17]進行評價。

1.3.3 生物被膜態(tài)菌耐酸堿性測定

耐堿性測定:將培養(yǎng)72 h含有菌膜的不銹鋼片置于2.00%的氫氧化鈉溶液中,80 ℃作用15 min。無菌水沖洗后將不銹鋼片放入己滅菌的15 mL離心管中,管內含有0.5 g的玻璃珠(100～150 μm),渦旋振蕩1 min。進行平板計數(shù)。

耐酸性測定:將培養(yǎng)72 h含有菌膜的不銹鋼片置于1.50%的硝酸溶液中,在80 ℃作用15 min。無菌水沖洗后將不銹鋼片放入以滅菌的15 mL離心管中,管內含有0.5 g的玻璃珠(100～150 μm),渦旋振蕩1 min。進行平板計數(shù)。耐受性(D)按下式計算:

式中:A為未處理不銹鋼片上的菌數(shù);B為處理后不銹鋼片的菌數(shù);t為作用時間/min。

1.3.4 不銹鋼片上活菌數(shù)的測定

不銹鋼片經(jīng)過不同的CIP程序處理后,將不銹鋼片置于無菌的15 mL離心管中,內含0.5 g直徑為100 μm的玻璃珠以及3 mL無菌磷酸緩沖液,旋渦振蕩1 min后,在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上進行平板計數(shù)。

1.3.5 生物被膜的微觀結構觀察

生物被膜在黑暗中用碘化丙啶染色15 min,然后在共聚焦顯微鏡下觀察其微觀結構[18]。用氬離子激發(fā)熒光,激發(fā)波長為488 nm,40 倍鏡,圖片面積為220 mm(x軸)×220 mm(y軸),z軸掃描的寬度為0.92 μm。

1.3.6 各因素對蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除效果量效關系的單因素試驗

1.3.6.1 氫氧化鈉質量濃度

當氫氧化鈉作用時間20 min、硝酸質量濃度15 g/L、硝酸作用時間20 min、整個CIP程序溫度85 ℃時,改變氫氧化鈉質量濃度分別為10、15 g/L和20 g/L,采用1.3.4節(jié)方法測定活菌數(shù)。

1.3.6.2 氫氧化鈉作用時間

當氫氧化鈉質量濃度20 g/L、硝酸質量濃度15 g/L、硝酸作用時間20 min、整個CIP程序溫度85 ℃時,改變氫氧化鈉作用時間分別為10、15 min和20 min,采用1.3.4節(jié)方法測定活菌數(shù)。

1.3.6.3 硝酸質量濃度

當氫氧化鈉質量濃度20 g/L、氫氧化鈉作用時間20 min、硝酸作用時間20 min、整個CIP程序溫度85 ℃時,改變硝酸質量濃度分別為5、10、15 g/L,采用1.3.4節(jié)方法測定活菌數(shù)。

1.3.6.4 硝酸作用時間

當氫氧化鈉質量濃度20 g/L、氫氧化鈉作用時間20 min、硝酸質量濃度15 g/L、整個CIP程序溫度85 ℃時,改變硝酸作用時間分別為10、15 min和20 min,采用1.3.4節(jié)方法測定活菌數(shù)。

1.3.7 正交試驗設計

根據(jù)單因素試驗結果,擬定4因素3水平正交試驗,因素與水平設計見表1。

表1 正交試驗因素與水平Table 1 Factors and their coded levels used in orthogonal array design

1.3.8 酸堿清洗劑與過氧乙酸聯(lián)合使用對蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除效果的量效關系

采用目前食品加工廠普遍使用的CIP程序,該CIP程序為氫氧化鈉質量濃度15 g/L、氫氧化鈉作用時間10 min、硝酸質量濃度10 g/L、硝酸作用時間10 min、整個CIP程序溫度85 ℃基礎上,在酸洗步驟后加入過氧乙酸清洗的步驟,過氧乙酸的質量濃度分別為1、2 g/L和3 g/L。采用1.3.4節(jié)方法測定活菌數(shù)。

1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

2 結果與分析

2.1 蠟樣芽孢桿菌的生物被膜形成能力及酸堿耐受性

圖1 蠟樣芽孢桿菌在不銹鋼片上的生物被膜形成能力Fig. 1 Biofilm formation ability of B. cereus on stainless steel sheets

表2 蠟樣芽孢桿菌對15 g/L氫氧化鈉和10 g/L硝酸在85 ℃的耐受性Table 2 Tolerance of the biofilm of B. cereus to 15 g/L NaOH and 10 g/L HNO3 at 85 ℃

由圖1可知,不同菌株的生物被膜形成能力存在差異,4 株菌株的生物被膜形成能力均低于陽性對照菌株ATCC 10987,均高于陰性對照菌株ATCC 14579,且在這4 株菌株中,菌株A1的生物被膜形成能力最強。從表2可知,4 株菌株對酸堿都存在耐受性,且對酸堿耐受性均高于生物被膜形成能力最低的菌株ATCC 14579,說明生物被膜的形成有利于提高菌株的酸堿耐受性,對菌體起保護作用。菌株A1對氫氧化鈉的耐受性最高,菌株A3對硝酸的耐受性最高。在4 株菌中,菌株A1的生物被膜形成能力最強,對氫氧化鈉的耐受性最高,對硝酸也有較高的耐受性,在經(jīng)受CIP程序清洗之后容易殘存于管道中形成生物被膜最終污染產品,所以菌株A1作為以下清除實驗中的研究對象。

2.2 單因素試驗結果

2.2.1 氫氧化鈉質量濃度

圖2 氫氧化鈉質量濃度對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果Fig. 2 Removal efficiency of different concentrations of NaOH on B. cereus biofilm

由圖2可知,蠟樣芽孢桿菌的清除效果隨氫氧化鈉質量濃度的增加而增加。當氫氧化鈉質量濃度為10 g/L時,大多數(shù)的生物被膜己經(jīng)被清除,不銹鋼片上殘留的菌數(shù)為2.08(lg(CFU/cm2)),減少了5.5(lg(CFU/cm2)),清除率為72.5%。隨著氫氧化鈉質量濃度的增加,生物被膜的清除率進一步提高,達到93.5%。當質量濃度增加到20 g/L時,蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果最好,不銹鋼片上未有蠟樣芽孢桿菌檢出。因此,氫氧化鈉質量濃度范圍選定15～20 g/L。

2.2.2 硝酸質量濃度

圖3 硝酸質量濃度對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果Fig. 3 Removal efficiency of different concentrations of HNO3 on B. cereus biofilm

由圖3可知,蠟樣芽孢桿菌的清除效果隨硝酸質量濃度的增加而增加。當硝酸質量濃度為5 g/L時,大多數(shù)的生物被膜己經(jīng)被清除,不銹鋼片上殘留的菌數(shù)為1.64(lg(CFU/cm2)),減少了5.94(lg(CFU/cm2)),清除率為78.3%。隨著硝酸質量濃度的增加,生物被膜的清除率進一步提高,達到85.4%。當硝酸質量濃度為15 g/L時,蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果最好,不銹鋼片上未有蠟樣芽孢桿菌檢出。因此,硝酸質量濃度范圍選定10～15 g/L。

2.2.3 氫氧化鈉作用時間

圖4 氫氧化鈉作用時間對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果Fig. 4 Effect of NaOH treatment time on removal of B. cereus biofilm

由圖4可知,蠟樣芽孢桿菌的清除效果隨氫氧化鈉作用時間的延長而增加。當氫氧化鈉作用時間為10 min時,大多數(shù)的生物被膜己經(jīng)被清除,不銹鋼片上殘留的菌數(shù)為0.84(lg(CFU/cm2)),減少了6.74(lg(CFU/cm2)),清除率為88.9%。隨著氫氧化鈉作用時間的延長,生物被膜的清除率進一步提高,達到92.7%。當作用時間延長到20 min時,蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果最好,不銹鋼片上未有蠟樣芽孢桿菌檢出。因此,氫氧化鈉作用時間范圍選定10～20 min。

2.2.4 硝酸作用時間

圖5 硝酸處理時間對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果Fig. 5 Effect of HNO3 treatment time on removal of B. cereus biofilm

由圖5可知,蠟樣芽孢桿菌的清除效果隨硝酸作用時間的延長而增加。當硝酸作用時間為10 min時,大多數(shù)的生物被膜己經(jīng)被清除,不銹鋼片上殘留的菌數(shù)為1.06(lg(CFU/cm2)),減少了6.52(lg(CFU/cm2)),清除率為86.0%。隨著硝酸作用時間的延長,生物被膜的清除率進一步提高,達到94.6%。當作用時間延長到20 min時,蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果最好,不銹鋼片上未有蠟樣芽孢桿菌檢出。因此,氫氧化鈉作用時間范圍選定10～20 min。

2.3 優(yōu)化CIP程序的正交試驗結果

由表3可知,4 個因素對蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除效果的影響依次為硝酸質量濃度＞氫氧化鈉質量濃度＞硝酸作用時間＞氫氧化鈉作用時間。由于正交表各列均被因素排滿,表中未留下空列,故做重復實驗,估算試驗誤差,進行方差分析,以確定各因素的顯著性水平,方差分析結果見表4。通過F檢驗表明:4 個因素對蠟樣芽孢桿菌的清除率都有顯著的影響。綜上,CIP程序清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜的最優(yōu)條件為A2B3C3D3,即先使用17.5 g/L氫氧化鈉溶液85 ℃沖洗20 min,然后使用純水沖洗,接著使用15 g/L硝酸溶液在85 ℃沖洗20 min,最后使用純水沖洗。按照以上條件做3 次平行實驗,在不銹鋼片上未檢測出蠟樣芽孢桿菌。該條件下蠟樣芽孢桿菌的清除率達到100%,優(yōu)于表3中任一組合的試驗結果,此條件為最佳結果。

表3 不同CIP處理條件對蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除效果的正交試驗設計及結果Table 3 Orthogonal array design with experimental results for the optimization of CIP conditions

表4 正交試驗方差分析Table 4 Analysis of variance for the effect of CIP conditions on removal of B. cereus biofilm as per orthogonal array design

2.4 酸堿清洗劑與殺菌劑聯(lián)合使用對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果

僅使用CIP程序中的酸堿清洗劑清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜,存在著酸堿濃度高,作用時間長的問題。為了減少酸堿清洗劑的使用量和清洗強度,本研究擬將酸堿清洗劑與殺菌劑聯(lián)合使用的方法,從而使食品設備的清洗更高效、更環(huán)保。

2.4.1 3 種殺菌劑對蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除效果

圖6 不同殺菌劑對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果Fig. 6 Removal efficiency of different disinfectants on B. cereus biofilm

苯扎溴銨、次氯酸鈉、過氧乙酸均是食品工廠中經(jīng)常使用的殺菌劑。由圖6可知,菌株A1不同殺菌劑的耐受性不同。在3 種殺菌劑中,蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除效果最好的是過氧乙酸,接著是苯扎溴銨,效果最差是次氯酸鈉,它們對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除率依次為64.6%、56.9%、54.4%。因此,選用過氧乙酸與CIP酸堿清洗劑聯(lián)合使用。

2.4.2 CIP清洗與過氧乙酸聯(lián)合使用清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜

圖7 CIP與過氧乙酸聯(lián)合使用對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果Fig. 7 Removal efficiency of CIP regime combined with peracetic acid on B. cereus biofilm

由圖7可知,蠟樣芽孢桿菌的清除效果隨過氧乙酸質量濃度的增加而增加。當過氧乙酸質量濃度為1 g/L時,大多數(shù)的生物被膜己經(jīng)被清除,不銹鋼片上殘留的菌數(shù)為2.36(lg(CFU/cm2)),減少了5.09(lg(CFU/cm2)),清除率為68.3%。隨著過氧乙酸質量濃度的增加,生物被膜的清除率進一步提高,達到87.2%。當質量濃度增加到3 g/L時,蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果最好,不銹鋼片上未有蠟樣芽孢桿菌檢出。因此,CIP清洗與過氧乙酸聯(lián)合使用的程序為先使用15 g/L氫氧化鈉溶液85 ℃沖洗10 min,然后使用純水沖洗,接著使用10 g/L硝酸溶液85 ℃沖洗10 min,然后使用3 g/L過氧乙酸溶液25 ℃沖洗10 min,最后使用中和劑沖洗。

2.4.3 CIP清洗與過氧乙酸聯(lián)合使用前后蠟樣芽孢桿菌生物被膜的微觀結構

圖8 經(jīng)過CIP與過氧乙酸聯(lián)合處理后的蠟樣芽孢桿菌在共聚焦顯微鏡下的微觀結構Fig. 8 Confocal laser scanning microscopic images of B. cereus biofilms treated with CIP combined with peracetic acid

如圖8所示,蠟樣芽孢桿菌生物被膜是非均勻的,由菌體纏繞聚合成的網(wǎng)狀結構。未經(jīng)過處理的生物被膜的厚度大約為30 μm,結構致密。經(jīng)過CIP清洗處理后的生物被膜結構被破壞,僅余下單層的細菌,厚度約為10 μm。經(jīng)過CIP清洗與過氧乙酸聯(lián)合處理后的生物被膜幾乎被完全清除,僅留下幾個單獨的菌體殘留在不銹鋼片上。從該結果看,CIP程序清洗與過氧乙酸聯(lián)合使用能有效進一步地清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜,該結果也與活菌計數(shù)的結果相符合。

3 討 論

蠟樣芽孢桿菌在食品加工機械的表面上表現(xiàn)出較強的生物被膜形成能力,而生物被膜能夠對其內的菌體起保護作用,降低清洗劑、殺菌劑對菌體的危害[19],生物被膜態(tài)細菌比浮游態(tài)細菌更難清除。生物被膜態(tài)細菌抗逆性的提高,使蠟樣芽孢桿菌的清除成為食品加工中一個重大的挑戰(zhàn)。CIP程序是在加工生產中控制與清除微生物一項基本且關鍵的措施。有報道蠟樣芽孢桿菌生物被膜經(jīng)CIP程序為先使用純水沖洗,再使用5 g/L氫氧化鈉溶液65 ℃沖洗10 min后,再使用純水沖洗,僅能降低1 個數(shù)量級[20];經(jīng)過程序為先使用15 g/L氫氧化鈉溶液65 ℃沖洗30 min,再使用純水沖洗洗,然后使用10 g/L硝酸溶液65 ℃沖洗10 min,最后用純水沖洗處理后,菌數(shù)降低約5 個數(shù)量級[21]。因為菌體酸堿耐受性提高,它容易在CIP過程中存活下來,殘留在機械表面上最后導致產品的污染。因此,探究能將蠟樣芽孢桿菌徹底清除的CIP工藝對于食品加工過程是一項至關重要的任務。本研究中,通過正交試驗探究清除蠟樣芽孢桿菌的最佳CIP清洗程序,該程序為采用17.5 g/L氫氧化鈉溶液85 ℃沖洗20 min,使用純水沖洗,然后使用15 g/L硝酸溶液85 ℃沖洗20 min,最后使用純水沖洗,能徹底清除不銹鋼片上的蠟樣芽孢桿菌,菌落數(shù)約降低7 個數(shù)量級,與其他優(yōu)化方法相比,多降低2 個數(shù)量級[22-23],清除效率更高。

對于食品企業(yè)來說,降低清洗劑的濃度、縮短清洗的時間有利于企業(yè)利益。次氯酸鈉為弱堿性氧化型殺菌劑,通過水解釋放次氯酸氧化細胞內含巰基的酶,并損害細胞膜[24]。過氧乙酸為弱酸性氧化型殺菌劑,通過水解釋放初生態(tài)氧使菌體蛋白變性,抑制細胞內酶的活性,而達到殺菌的目的[25-26]。苯扎溴銨為非氧化型殺菌劑,帶正電荷,能夠吸附在帶負電荷細胞表面,其長鏈烷基能夠刺破細胞膜,使菌體內容物外泄而達到殺菌目的[27]。過氧乙酸是食品工廠中常見的殺菌劑,具有廣譜的抗菌作用[25]。過氧乙酸對清除生物被膜有顯著的效果,金黃色葡萄球菌生物被膜再經(jīng)0.3%過氧乙酸溶液處理15 s后,幾乎100%的菌體細胞失活[28]。銅綠假單胞菌生物被膜經(jīng)過1.61%過氧乙酸溶液處理15 min后,清除率可以達到100%[26]。有研究報道,在過氧乙酸、苯扎溴銨、過氧化氫、碘消靈和次氯酸鈉中,對蠟樣芽孢桿菌生物被膜清除作用最好的是過氧乙酸,最差為次氯酸鈉[29-30],這與本實驗結果一致。鑒于其清潔低毒特性與其對蠟樣芽孢桿菌的清除效果高于其他殺菌劑,本實驗進一步研究了CIP清洗劑與殺菌劑過氧乙酸聯(lián)合使用對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果。當3 g/L的過氧乙酸與CIP聯(lián)合使用后,能夠達到徹底清除不銹鋼片上蠟樣芽孢桿菌生物被膜的效果,而且與從正交試驗優(yōu)化CIP清洗程序相比,降低酸堿清洗劑的使用濃度,縮短了整個CIP清洗程序的時間。

4 結 論

本實驗從工廠生產線上分離出的蠟樣芽孢桿菌的生物被膜形成能力及酸堿耐受性,并挑選出生物被膜形成能力最強、酸堿耐受性高的菌株A1作為正交試驗的研究對象。從正交試驗的結果發(fā)現(xiàn),采用氫氧化鈉質量濃度17.5 g/L、氫氧化鈉作用時間20 min、硝酸質量濃度15 g/L、硝酸作用時間20 min清洗條件,可以徹底清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜。進而研究酸堿清洗劑與過氧乙酸聯(lián)合使用對蠟樣芽孢桿菌生物被膜的清除效果,得到的最佳清洗程序為先使用15 g/L氫氧化鈉溶液85 ℃沖洗10 min,然后使用純水沖洗,接著使用10 g/L硝酸溶液85 ℃沖洗10 min,然后使用3 g/L過氧乙酸溶液25 ℃沖洗10 min,最后使用中和劑沖洗。該程序在徹底清除蠟樣芽孢桿菌生物被膜的同時,降低了酸堿清洗液的濃度、縮短了程序的清洗時間,為食品加工設備的清洗提供了一種更高效、更環(huán)保的方法。