李 嬌,李 江,付 鵬,彭 霜,阮志國,侯安國,柯 瑾
(云南中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院,云南昆明 650500)
柴胡來源于傘形科植物柴胡(Bupleurum chinense,DC.) 或 狹 葉 柴 胡 (Bupleurum scorzonerifolium Willd.) 的干燥根,為常用中藥品種,具有疏散退熱、疏肝解郁、升舉陽氣之功,臨床主要用于治療感冒發(fā)熱、寒熱往來、肝郁氣滯、胸脅脹痛、月經(jīng)不調(diào)、子宮脫垂、脫肛[1],現(xiàn)代藥理學(xué)研究證明柴胡皂苷具有鎮(zhèn)靜、鎮(zhèn)痛、抗炎、解熱、抗腫瘤、增強免疫、保肝利膽、降血脂等作用[2]。柴胡主含皂苷、黃酮、多糖、揮發(fā)油等化學(xué)成分,其中皂苷類成分是其主要活性物質(zhì)[3],現(xiàn)行版《中國藥典》將柴胡皂苷a、d 的總量作為質(zhì)控指標(biāo)。
目前柴胡皂苷的提取主要采用醇提法和水提法,醇提提取率相對較高,但成本也高,且后續(xù)操作繁瑣,水提操作簡單,但提取率低[4]。表面活性劑對于物質(zhì)的溶出有一定的增溶作用,其在人參皂苷、苦瓜皂苷、無患子果皮皂苷、薯蕷皂苷[5-9]等成分的提取中已有報道,但未見使用表面活性劑輔助提取柴胡皂苷的文獻研究,故本文采用表面活性劑強化提取柴胡中的柴胡皂苷,在單因素試驗基礎(chǔ)上,通過響應(yīng)曲面法優(yōu)化提取工藝,旨在提高以水作溶劑時柴胡皂苷的提取率。
柴胡皂苷a 對照品(批號:110777-201711),柴胡皂苷d 對照品(批號:110778-201711) 均購自中國食品藥品檢定研究院;柴胡,云南昆明百草園藥材經(jīng)營部;乙腈,色譜純;十二烷基硫酸鈉、泊洛沙姆188、吐溫-80℃、甲醇、95%乙醇、正丁醇,均為分析純。
Agilent 1260 高效液相色譜儀,美國Agilent 公司;BT25S 電子分析天平(d=0.000 01 g),上海精密儀器儀表有限公司;CP124C 電子天平(d=0.000 1 g),奧豪斯儀器(常州) 有限公司;SHZ-D(Ⅲ) 循環(huán)水式真空泵,鞏義市英峪予華儀器廠;DFY-500 搖擺式高速中藥粉碎機,溫嶺市林大機械有限公司;HDM-3000 恒溫電熱套,常州國華電器有限公司。
1.2.1 色譜條件[10]色譜柱Agilent Zorbax C18 柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相:水-乙腈,洗脫梯度見表1;流速為1.0 mL/min;檢測波長為210 nm;柱溫為30℃;進樣量10 μL。對照品及樣品色譜圖見圖1。
1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制取柴胡皂苷a、d 對照品適量,精密稱定,加甲醇溶解制成每mL 含柴胡皂苷a 0.56 mg,柴胡皂苷d 0.54 mg 的混合對照品溶液。分別精密吸取柴胡皂苷a、d 混合對照品溶液適量用甲醇稀釋成不同濃度的溶液,其中柴胡皂苷a 濃度為0.11 mg/mL、0.17 mg/mL、0.28 mg/mL、0.56 mg/mL、0.84 mg/mL、1.13 mg/mL,柴胡皂d濃 度 為0.11 mg/mL、0.16 mg/mL、0.27 mg/mL、0.54 mg/mL、0.80 mg/mL、1.07 mg/mL。按“1.3.1”項下色譜條件分別進樣,測定峰面積,以峰面積值(Y) 為縱坐標(biāo),柴胡皂苷a、d 濃度(X) 為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,并計算回歸方程,柴胡皂苷a 的回歸方程為Y=1 737.5X-1.084 5(r=0.999 9),柴胡皂苷d 的回歸方程為Y=2 354.8X-9.794 8(r=0.999 9),表明柴胡皂苷a 在1.125~11.25 μg范圍內(nèi),柴胡皂苷d 在1.07~10.7 μg 范圍與峰面積間有良好的線性關(guān)系。
表1 流動相洗脫梯度Tab.1 Mobile phase elution gradients
圖1 對照品、樣品HPLC 圖Fig.1 HPLC of reference substances and samples
1.2.3 供試品溶液的制備及柴胡皂苷提取率的測定將柴胡粉碎過40 目篩后精密稱取粉末20 g,按一定比例加入表面活性劑水溶液,加熱回流提取一定時間,放冷,離心,取上清液轉(zhuǎn)移至250 mL 容量瓶中,用純水定容至刻度,搖勻,備用。精密吸取柴胡提取液10 mL 用水飽和的正丁醇萃取5 次,每次10 mL,合并萃取液,回收溶劑,殘渣用甲醇溶解并定容至5 mL,搖勻,過0.45 μm微孔濾膜,進樣,測定,計算柴胡皂苷a、d 總量。
1.2.4 單因素試驗按照“1.2.3”項下方法,加熱回流提取,其他條件固定不變,分別考察表面活性劑種類、提取時間、加液量、表面活性劑質(zhì)量分?jǐn)?shù)、提取次數(shù)對柴胡皂苷提取率的影響,分別確定各因素的最佳水平。
1.2.5 響應(yīng)面法優(yōu)化柴胡皂苷提取工藝在單因素的基礎(chǔ)上,選取SDS 濃度(A)、提取時間(B)、加液量(C)、提取次數(shù)(D) 為變量,以柴胡皂苷a、d 總含量(Y) 為響應(yīng)值,通過Box-Behnken 原理,采用四因素三水平響應(yīng)面分析法優(yōu)化柴胡皂苷提取工藝。因素與水平見表3,實驗設(shè)計及結(jié)果見表4。
2.1.1 表面活性劑種類對柴胡皂苷提取率的影響[11]稱取柴胡粉末20 g,分別加入10 倍量質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的不同表面活性劑水溶液,回流提取30 min。選取的表面活性劑為Tween 80、Poloxamer 188、SDS[12],以純水介質(zhì)中的柴胡皂苷提取率為對照,實驗結(jié)果見表2。
由表2 可知,三種表面活性劑對柴胡皂苷提取均有強化作用,其中強化效果最好的表面活性劑是SDS,在此條件下,柴胡皂苷提取率高達8.34 mg/g,為純水提取率的6.2 倍,因此確定表面活性劑種類為SDS。
表2 表面活性劑對柴胡皂苷提取率的影響Tab.2 Effects of different surfactants on the extraction yield of saikosaponins
2.1.2 提取時間對柴胡皂苷提取率的影響稱取柴胡粉末20 g,加入10 倍量質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的SDS水溶液,加熱回流提取條件下,考察不同提取時間對柴胡皂苷提取率的影響,見圖2。
由圖2 可知,柴胡皂苷提取率呈現(xiàn)先升后降的趨勢,當(dāng)提取時間為50 min 時,柴胡皂苷提取率最高,達到9.30 mg/g,60 min 時含量下降,可能與柴胡皂苷開始水解有關(guān)。故選擇提取時間為50 min。
圖2 提取時間對提取率的影響Fig.2 The effect of extraction time on extraction rate
2.1.3 加液量對柴胡皂苷提取率的影響稱取柴胡粉末20 g,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的SDS 水溶液,加熱回流提取50 min,考察不同加液量對柴胡皂苷提取率的影響,結(jié)果見圖3。由圖3 可知,在加液量為4~10 倍范圍內(nèi)時,柴胡皂苷提取率逐漸升高,繼續(xù)增加溶劑用量,提取率增加很少,因此選擇加液量為10 倍。
圖3 加液量對提取率的影響Fig.3 The effect of liquid addition on extraction rate
2.1.4 SDS 質(zhì)量分?jǐn)?shù)對柴胡皂苷提取率的影響稱取柴胡粉末20 g,分別加入10 倍量不同濃度的SDS 水溶液,加熱回流提取50 min,考察不同濃度的SDS 水溶液對柴胡皂苷提取率的影響,見圖4。由圖4 可以看出,隨著SDS 濃度的增大,柴胡皂苷提取率也隨之增加,當(dāng)濃度達1.25%時,提取效果最好,濃度達1.5%時,提取率反而下降。因此選擇SDS 濃度為1.25%。
圖4 SDS 質(zhì)量分?jǐn)?shù)對提取率的影響Fig.4 The effect of SDS quality fraction on extraction rate
2.1.5 提取次數(shù)對柴胡皂苷提取率的影響稱取柴胡粉末20 g 加入10 倍量質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.25%的SDS 水溶液,加熱回流提取50 min,考察不同提取次數(shù)對柴胡皂苷提取率的影響,結(jié)果見圖5。由圖5 可以看出,隨著提取次數(shù)的增加,柴胡皂苷提取率略有增加,其中提取3 次和提取2 次的提取率接近。因此,從生產(chǎn)實際考慮提取次數(shù)選擇2 次即可。
綜上所述,單因素最佳參數(shù)水平分別為:1.25%SDS、加液量10 倍、提取時間50 min、提取次數(shù)2 次。
圖5 提取次數(shù)對提取率的影響Fig.5 The effect of extraction times on extraction rate
2.2.1 響應(yīng)面設(shè)計在單因素的基礎(chǔ)上,選取SDS濃度(A)、提取時間(B)、加液量(C)、提取次數(shù)(D) 為變量,以柴胡皂苷a、d 總含量(Y) 為響應(yīng)值,通過Design-Expert.V 8.0.6 軟件[13],采用四因素三水平響應(yīng)面法優(yōu)化柴胡皂苷提取工藝因素與水平表見表3,實驗設(shè)計及結(jié)果見表4。
2.2.2 方差分析與顯著性檢驗采用Design-Expert8.0.6 軟件對柴胡提取工藝各因素進行回歸擬合,得回歸方程Y =12.50+0.1A+0.22B+0.31C+1.33D-0.14AB+0.41AC-0.017AD-0.29BC+0.34BD-0.48CD-0.78A2-0.91B2-0.31C2-1.35D2。對該數(shù)學(xué)模型進行方差分析和顯著性檢驗,見表5。由表5 可知,模型的決定系數(shù)R2=0.9125,P<0.000 1 說明模型具有較高的顯著性,且失擬項P=0.903 3,失擬項不顯著,說明回歸方程擬合度良好[13-14]。各因素對柴胡皂苷a、d 總含量的影響為:提取次數(shù)>加液量>提取時間>SDS 濃度,D 因素對響應(yīng)值的影響極顯著[15-16]。二次項A2、B2、D2 對柴胡皂苷a、d 總含量的影響顯著,說明各因素與響應(yīng)值不是簡單的線性關(guān)系。
2.2.3 響應(yīng)面分析采用Design-Expert 8.0.6 軟件,根據(jù)擬合模型繪制柴胡中柴胡皂苷含量響應(yīng)面的響應(yīng)面圖(圖6) 與等高線圖(圖7),可得到各參數(shù)范圍內(nèi)的極值及因素間相互作用對響應(yīng)值的影響。
2.2.4 最佳工藝與驗證試驗通過Design-Expert 8.0.6 軟件預(yù)測分析得到最佳提取工藝條件為:SDS濃度1.28%,提取時間52.09 min,加液量10.16倍,提取2.50 次。為方便操作將最優(yōu)工藝調(diào)整為:SDS 濃度1.28%,提取時間52.09 min,加液量10.16 倍,提取2.0 次。按此條件進行3 次平行試驗驗證,求平均值,所得結(jié)果(12.82 mg/g) 與模擬值(12.87 mg/g) 相差不大(SD=0.05%),說明響應(yīng)面法優(yōu)化柴胡皂苷提取工藝條件準(zhǔn)確可靠。
表3 響應(yīng)面因素水平表Tab.3 The response surface factor levels
表4 響應(yīng)面試驗設(shè)計與結(jié)果Tab.4 The test design and results of response surface
表5 回歸模型的方差分析Tab.5 Analyses of variance of regression models
圖6 各因素交互作用響應(yīng)曲面圖Fig.6 Response surfaces of various factors'interaction
柴胡作為傳統(tǒng)常用中藥,在我國已有2000 余年的應(yīng)用歷史,其主要含有柴胡皂苷、揮發(fā)油、多糖、黃酮、甾醇等成分。柴胡皂苷類作為柴胡的主要活性成分,屬于三萜皂苷類化合物,常用的提取方法為溶劑提取法,目前文獻報道多以乙醇-水、堿性試劑-乙醇-水、水作為提取溶劑,而提取效果差異較大,尤其以水作為提取溶劑,柴胡皂苷的溶出度最低[17-19]。柴胡皂苷a 結(jié)構(gòu)中含有環(huán)氧醚環(huán),該結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定,在提取過程中容易開裂造成結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)化,導(dǎo)致提取液中柴胡皂苷a 的含量降低[20],但堿性溶劑作為提取溶劑時對該過程有抑制作用。然而,在實際生產(chǎn)過程中,柴胡通常是和其他藥材一同提取,采用堿性乙醇作為溶媒,雖然可以提高柴胡皂苷a 提取率,但堿性環(huán)境對其他成分可能造成影響,故多以中性溶劑進行提取,如中性50%乙醇[18]。
表面活性劑含雙親結(jié)構(gòu),能使溶液的表面張力顯著降低,對物料具有界面吸附和分散作用,可以增強溶劑對物料的潤濕性和滲透性,從而增加提取率、降低提取時間及成本,在輔助提取植物的活性成分方面應(yīng)用廣泛[21]。本研究考慮加入表面活性劑,以增加柴胡皂苷的溶出,提高柴胡皂苷的提取率。
Box-Behnken 響應(yīng)曲面分析法相對于正交試驗設(shè)計具有預(yù)測性好、精確度高的特點,本研究在單因素試驗的基礎(chǔ)上用響應(yīng)面法優(yōu)化柴胡的提取工藝,可連續(xù)對整個區(qū)域的各水平進行分析,極大程度優(yōu)化了柴胡的提取工藝。柴胡在中醫(yī)臨床使用的主要形式是湯劑,而水作為提取溶媒,顯示出對柴胡皂苷較低的提取率,加入十二烷基硫酸鈉,同時采用響應(yīng)面法確定了最佳提取工藝,增加了柴胡的提取率,為柴胡皂苷提取提供了一定的參考。
本研究中加入了表面活性劑,雖然增加了柴胡皂苷的提取率,但是在進行含量測定時發(fā)現(xiàn),與未加表面活性劑的相比,表面活性劑會對柴胡皂苷a、d 的分離度造成影響,導(dǎo)致分離度減小,甚至造成分離度無法符合分析要求。因此在供試品制備過程中可采用萃取的方法。但萃取時十二烷基硫酸鈉與正丁醇會造成分層不明顯,所以采用離心法,4 000 r/min 離心10 min,以除去十二烷基硫酸鈉對實驗的干擾。