付 晶,林 桐,陳艾玲,鄧 珊,劉春朋
(1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,哈爾濱 150030;2.仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院動(dòng)物科技學(xué)院,廣州 510225)
內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)為畜禽健康必要條件。隨著畜牧業(yè)集約化、高密度飼養(yǎng)模式的推廣,在養(yǎng)殖過程中,如飼養(yǎng)管理不當(dāng)可造成動(dòng)物應(yīng)激。機(jī)體產(chǎn)生過量自由基、體內(nèi)氧化還原平衡遭到破壞,發(fā)生氧化應(yīng)激損傷,嚴(yán)重影響機(jī)體健康和生產(chǎn)性能[1]。腸道為機(jī)體養(yǎng)分消化吸收、物質(zhì)新陳代謝的主要器官,因其特有的血管解剖結(jié)構(gòu)特點(diǎn)及對(duì)流氧交換機(jī)制決定其應(yīng)激狀態(tài)下更易發(fā)生氧化損傷,誘發(fā)腸道疾病[2]。在畜牧業(yè)轉(zhuǎn)型升級(jí)、畜禽標(biāo)準(zhǔn)化規(guī)?;B(yǎng)殖模式持續(xù)推進(jìn)的大趨勢(shì)下,畜禽腸道問題日益突出,為減輕氧化應(yīng)激對(duì)畜禽腸道健康的影響,研究腸道氧化應(yīng)激機(jī)理并尋找預(yù)防和修復(fù)腸道氧化損傷的方法成為亟待解決的問題之一。
肉鵝是我國(guó)華南地區(qū)主要水禽飼養(yǎng)種類。在生產(chǎn)周期中,腸道易受外界刺激,高飼料轉(zhuǎn)化率、養(yǎng)殖環(huán)境污染和頻繁的免疫程序等不利因素,均可導(dǎo)致肉鵝機(jī)體代謝過程中產(chǎn)生大量自由基,引發(fā)腸道疾病[3]。抗氧化劑可清除自由基、減緩氧化應(yīng)激危害。隨著飼用抗生素的全面禁用,開發(fā)綠色功能性飼料添加劑在畜牧生產(chǎn)中尤為必要。
茶多酚(Tea polyphenols, TP)為一類從茶葉中提取的多酚類化合物總稱,作為天然藥物具有廣泛的藥理作用和生物學(xué)功能,如抗氧化、抗炎癥、抑菌、清除機(jī)體自由基等[4]。TP為迄今為止唯一被列入我國(guó)食品添加劑使用標(biāo)準(zhǔn)的天然抗氧化劑[5]。TP 作為飼料添加劑在家禽生產(chǎn)中已有應(yīng)用,但其發(fā)揮生物學(xué)特性的內(nèi)在機(jī)制有待進(jìn)一步研究。目前,相關(guān)研究主要集中于雞、鴨等生長(zhǎng)性能、繁殖性能、肉品質(zhì)及菌群調(diào)節(jié)等方面[6],關(guān)于TP 在養(yǎng)鵝生產(chǎn)中的應(yīng)用尤其是對(duì)鵝腸道抗氧化功能研究未見報(bào)道。本研究體外分離培養(yǎng)鵝小腸上皮細(xì)胞,使用過氧化氫(H2O2)處理,建立氧化應(yīng)激損傷細(xì)胞模型;采用TP對(duì)細(xì)胞作預(yù)處理,探討TP對(duì)H2O2引發(fā)細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷的保護(hù)作用機(jī)制,為TP 作為功能性飼料添加劑在養(yǎng)鵝生產(chǎn)中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。
25~26胚齡發(fā)育良好的馬崗鵝鵝胚,購(gòu)自廣州文健明種鵝養(yǎng)殖有限公司。茶多酚(純度≥98%),購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司。
DMEM/F12 培養(yǎng)基(11320033)、0.05% Trypsin-EDTA(2530062),購(gòu)于Gibco 公司;表皮生長(zhǎng)因子EGF(E4127)、青鏈霉素(V900929)、膠原酶Ⅺ(C7657)、中性蛋白酶Ⅰ(D4818)、L-谷氨酰胺(G8540)、3% H2O2,購(gòu)自Sigma 公司;鼠尾膠原蛋白(C8062)、MTT 試劑盒(M1020)、一抗稀釋液(A1810),購(gòu)自北京索萊寶科技有限公司;優(yōu)級(jí)胎牛血清(11011),購(gòu)自杭州四季青公司;細(xì)胞角蛋白18 單克隆抗體(M01357)、SABC 免疫組化試劑盒(SA1021)、DAB顯色試劑盒(AR1022),購(gòu)自武漢博士德公司;乳酸脫氫酶(LDH)、超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)和丙二醛(MDA)試劑盒均購(gòu)自南京建成生物工程研究所。
超凈工作臺(tái)(VS-1300U),二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermo fisher scientific),低溫高速離心機(jī)(Thermo fisher scientific),倒置顯微鏡(Olympus CX41),電熱恒溫水槽(上海一恒CU-600),酶標(biāo)儀(Thermo fisher scientific 51119300),紫外分光光度計(jì)(Eppendorf)。
1.4.1 鵝小腸上皮細(xì)胞分離、純化及鑒定
1.4.1.1 鵝小腸上皮細(xì)胞分離
取25~26胚齡發(fā)育良好鵝胚,75%酒精棉擦拭外殼,晾干后用滅菌解剖器械在超凈臺(tái)內(nèi)取出小腸組織,暫置于DMEM/F12培養(yǎng)基。隨后在含有雙抗DMEM/F12培養(yǎng)液(不含血清)中,小心剝離腸系膜,使用PBS反復(fù)沖洗腸腔內(nèi)容物,直至上清液澄清。將小腸組織剪成<1 mm3碎塊,使用比例為9∶1膠原酶Ⅺ和中性蛋白酶混合酶,37 ℃消化25 min后,4 ℃離心10 min棄上清,即獲得鵝小腸上皮細(xì)胞沉淀。
1.4.1.2 鵝小腸上皮細(xì)胞純化
根據(jù)上皮細(xì)胞較成纖維細(xì)胞貼壁慢的特點(diǎn),選用“相差貼壁法”使兩類細(xì)胞分離以達(dá)到純化目的。即:先將1.4.1.1中分離得到的細(xì)胞沉淀用含有雙抗和10%血清的DMEM/F12 培養(yǎng)基吹勻,隨后將懸液接種至第1個(gè)培養(yǎng)瓶中,置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)90 min;然后輕輕吸取全部培養(yǎng)液(含未貼壁上皮細(xì)胞),接種到第2 個(gè)培養(yǎng)瓶中,置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,更換新鮮細(xì)胞培養(yǎng)液,即獲得純化的鵝小腸上皮細(xì)胞。
1.4.1.3 鵝小腸上皮細(xì)胞鑒定
取純化后傳至第二代的小腸上皮細(xì)胞,將其以每孔1×104密度接種到24 孔板上,培養(yǎng)3~4 d。吸去培養(yǎng)液,使用PBS洗滌細(xì)胞2~3次。然后按照博士德SABC免疫組化染色試劑盒說明書操作,細(xì)胞固定、滅活、封閉、一抗孵育、二抗孵育、SABC 染色和DAB 顯色。顯微鏡下觀察顯色情況,待10~15 min顯色完成后,蒸餾水充分洗滌以終止顯色反應(yīng)。
1.4.2 茶多酚干預(yù)鵝小腸上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型建立
1.4.2.1 H2O2誘導(dǎo)鵝小腸上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型建立
按照每孔0.5~1×104個(gè)細(xì)胞將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期鵝小腸上皮細(xì)胞接種于96 孔培養(yǎng)板,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細(xì)胞生長(zhǎng)至80%時(shí),棄去細(xì)胞培養(yǎng)上清液,加入配制的含有終濃度分別為0(對(duì)照組)、100、200、400、800 和1 600 μmol·L-1的H2O2培養(yǎng)液,每組6個(gè)平行。置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中分別培養(yǎng)2 和4 h后,測(cè)定細(xì)胞存活率。
1.4.2.2 TP對(duì)鵝小腸上皮細(xì)胞增殖的影響
按照每孔0.5~1×104個(gè)細(xì)胞取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,待細(xì)胞生長(zhǎng)至80%時(shí),棄去細(xì)胞培養(yǎng)上清液,加入配制的含有終濃度分別為0(對(duì)照組)、12.5、25、50、100 和200 μg·mL-1TP 培養(yǎng)液,每組6個(gè)平行。置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12 h后,測(cè)定細(xì)胞存活率。
1.4.2.3 TP預(yù)處理鵝小腸上皮細(xì)胞損傷模型建立
試驗(yàn)分為4 組:對(duì)照組、TP 處理組、H2O2處理組、TP和H2O2聯(lián)合組(TP預(yù)處理組)。其中:①對(duì)照組:用DMEM/F12 培養(yǎng)基培養(yǎng)小腸上皮細(xì)胞12 h;②TP 處理組:用含有100 μg·mL-1TP 的DMEM/F12培養(yǎng)基培養(yǎng)小腸上皮細(xì)胞12 h;③H2O2處理組:先用DMEM/F12培養(yǎng)基培養(yǎng)小腸上皮細(xì)胞10 h,再用含有400 μmol·L-1H2O2的DMEM/F12 培養(yǎng)基培養(yǎng)小腸上皮細(xì)胞2 h;④TP+H2O2聯(lián)合組:先用含有100 μg·mL-1TP的DMEM/F12培養(yǎng)基培養(yǎng)小腸上皮細(xì)胞10 h,再加入終濃度為400 μmol·L-1H2O2,共培養(yǎng)2 h,測(cè)定相關(guān)指標(biāo)。
1.4.3 鵝小腸上皮細(xì)胞活力檢測(cè)
按1.4.2 分組及藥物處理后,小心吸去原培養(yǎng)基,每孔加入90 μL新鮮DMEM/F12培養(yǎng)基和10 μL MTT 溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h;然后吸去培養(yǎng)基,再向每孔加入110 μL Formazan溶解液后,置于搖床上低速震蕩10 min,使結(jié)晶充分溶解。在酶標(biāo)儀490 nm波長(zhǎng)處測(cè)量各孔吸光值。設(shè)定對(duì)照組細(xì)胞存活率為100%,根據(jù)下列公式計(jì)算各組細(xì)胞存活率。
細(xì)胞存活率(%)=(處理組OD 平均值/對(duì)照組OD平均值)×100%
1.4.4 與氧化應(yīng)激相關(guān)指標(biāo)MDA、LDH、SOD 和GSH-Px測(cè)定
將鵝小腸上皮細(xì)胞以每孔2×105個(gè)細(xì)胞接種于6孔板中,按1.4.2.3分組及藥物處理后,收集細(xì)胞培養(yǎng)液,12 000 r·min-1離心10 min,取上清液用于測(cè)定LDH 活性。取細(xì)胞,用0.05%胰蛋白酶-EDTA 消化細(xì)胞,收集細(xì)胞懸浮液,1 000 r·min-1離心10 min,棄上清后加入PBS配制細(xì)胞懸液,細(xì)胞破碎儀破碎細(xì)胞,測(cè)定MDA 含量及SOD 和GSH-Px 活性。MDA、LDH、SOD 和GSH-Px 測(cè)定依據(jù)南京建成生物工程研究所提供試劑盒說明書操作。采用微板法測(cè)定LDH 活性、TBA 法測(cè)定MDA 含量、黃嘌呤氧化酶法測(cè)定SOD 活性、比色法測(cè)定GSH-Px活性。
使用GraphPad Prism 5.0軟件統(tǒng)計(jì)學(xué)分析試驗(yàn)數(shù)據(jù)并作圖。通過單向ANOVA評(píng)估比較平均值,采用Tukey檢驗(yàn)組間多重比較。數(shù)據(jù)均用“mean±SD”表示。不同字母代表組間差異顯著(P<0.05)。
成功建立鵝小腸上皮細(xì)胞體外培養(yǎng)方法,用混合酶(0.01 mg·mL-1膠原酶XI+0.1 mg·mL-1中性蛋白酶)消化法分離得到鵝小腸上皮細(xì)胞(見圖1a 和1b)。用相差貼壁法分離純化腸上皮細(xì)胞(見圖1c和1d),并以每孔0.5~2×104個(gè)細(xì)胞作為后續(xù)試驗(yàn)中細(xì)胞接種濃度。細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果顯示(見圖1e和1f),分離得到細(xì)胞呈卵圓形或多角形,單層貼壁生長(zhǎng),邊緣清晰緊密相連;且獲得較多具有增殖活性的腸隱窩集團(tuán)。此外,試驗(yàn)選用上皮組織中特異性抗原(細(xì)胞角蛋白18 單克隆抗體)對(duì)傳至第二代細(xì)胞免疫組化染色,發(fā)現(xiàn)90%以上細(xì)胞染色結(jié)果呈陽性(見圖1h),說明獲得的細(xì)胞為腸上皮細(xì)胞,可用于后續(xù)試驗(yàn)。
2.2.1 H2O2對(duì)鵝小腸上皮細(xì)胞存活率的影響
由表1可見,與對(duì)照組相比,H2O2處理組細(xì)胞存活率隨著H2O2濃度增加而顯著降低(P<0.05)。100 μmol·L-1組存活率均在80%左右,細(xì)胞損傷較??;400 μmol·L-1組處理細(xì)胞4 h 后,細(xì)胞存活率低于50%,而2 h組細(xì)胞存活率相對(duì)于對(duì)照組顯著降低至71.46%(P<0.05),符合建立氧化應(yīng)激模型條件;800 和1 600 μmol·L-1組存活率進(jìn)一步降至40%以下,細(xì)胞存活率較低。
2.2.2 H2O2作用2 h對(duì)鵝小腸上皮細(xì)胞形態(tài)的影響
由圖2可見,不同濃度H2O2處理鵝小腸上皮細(xì)胞2 h 后,對(duì)照組細(xì)胞形態(tài)正常,貼壁情況良好,細(xì)胞連接緊密無明顯間隙;100 μmol·L-1組細(xì)胞形態(tài)無明顯變化;200 μmol·L-1組僅少量細(xì)胞脫落;400 μmol·L-1組細(xì)胞體積縮小、脫落,局部出現(xiàn)細(xì)胞間隙變大,少量細(xì)胞變圓死亡;800 和1 600 μmol·L-1組細(xì)胞體積縮小變圓,細(xì)胞脫落嚴(yán)重且出現(xiàn)大面積空隙,細(xì)胞核突出,產(chǎn)生DNA損傷。
表1 H2O2對(duì)鵝小腸上皮細(xì)胞存活率的影響(n=6)Table 1 Effect of H2O2on the survival rate of small intestinal epithelial cells in goose embryo(n=6)
2.2.3 TP對(duì)鵝小腸上皮細(xì)胞存活率的影響
為確定TP 作用于腸上皮細(xì)胞安全劑量范圍,將不同濃度TP加入腸上皮細(xì)胞培養(yǎng)基中,檢測(cè)TP對(duì)腸上皮細(xì)胞存活率的影響。結(jié)果如圖3a 所示,與空白對(duì)照組相比,12.5~200 μg·mL-1TP處理上皮細(xì)胞后,在12 h 內(nèi),隨TP 濃度增大,細(xì)胞存活率上升且差異顯著(P<0.05)。研究表明,TP可提高正常腸上皮細(xì)胞存活率,且具有一定劑量效應(yīng)。但100 和200 μg·mL-1濃度TP 對(duì)細(xì)胞存活率的影響差異不顯著(P>0.05),因此本研究選取100 μg·mL-1濃度TP 用于后續(xù)試驗(yàn)。圖3b 顯示,與對(duì)照組相比,腸上皮細(xì)胞經(jīng)H2O2處理后存活率(74.8%)顯著下降(P<0.05),而經(jīng)TP 預(yù)處理10 h 后腸上皮細(xì)胞經(jīng)H2O2處理后存活率為117.94%。研究表明,TP對(duì)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷具有保護(hù)作用,可逆轉(zhuǎn)H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷。
MDA 為脂質(zhì)過氧化物重要降解產(chǎn)物之一,由圖4a可知,與對(duì)照組相比,H2O2組細(xì)胞MDA 含量顯著增加(P<0.05)。與H2O2組相比,TP 與H2O2聯(lián)合處理(即用TP 預(yù)處理細(xì)胞10 h)可顯著降低H2O2導(dǎo)致的鵝小腸上皮細(xì)胞MDA 產(chǎn)生。當(dāng)脂質(zhì)過氧化物大量增加時(shí)可導(dǎo)致細(xì)胞膜損傷,而LDH 漏出率可反映細(xì)胞膜完整程度。圖4b 可知,與對(duì)照組相比,H2O2組細(xì)胞LDH 含量顯著增加(P<0.05),而TP 組細(xì)胞LDH 含量明顯下降(P<0.05)。與H2O2組相比,TP 與H2O2聯(lián)合處理可顯著降低H2O2導(dǎo)致的鵝小腸上皮細(xì)胞中LDH 產(chǎn)生。研究結(jié)果表明,在鵝腸上皮細(xì)胞中,TP 可抑制H2O2引起的細(xì)胞脂質(zhì)過氧化發(fā)生和細(xì)胞膜通透性提高。
由圖5可知,在鵝小腸上皮細(xì)胞中,與對(duì)照組相比,H2O2可顯著降低細(xì)胞SOD 和GSH-Px 活性(P<0.05),TP組可顯著增加細(xì)胞SOD和GSH-Px活性(P<0.05)。與H2O2模型組細(xì)胞相比,TP 預(yù)處理組也可顯著增加細(xì)胞SOD 和GSH-Px 活性(P<0.05)。以上結(jié)果提示TP通過提高抗氧化酶系活性減輕H2O2所致的氧化應(yīng)激損傷。
小腸上皮細(xì)胞為機(jī)體更新速度最快的一類細(xì)胞,其結(jié)構(gòu)和功能完整性對(duì)動(dòng)物健康具有重要作用。因此,體外培養(yǎng)小腸上皮細(xì)胞可進(jìn)一步了解和模擬腸道生物學(xué)功能。本研究成功分離得到原代鵝小腸上皮細(xì)胞,為進(jìn)一步研究腸道功能提供有效的細(xì)胞模型。
鵝是以草食為主的水禽,可充分利用纖維含量較高的青綠飼料和粗飼料,其小腸液微堿性環(huán)境及小腸內(nèi)纖維素酶有助于對(duì)粗纖維的消化。因此,維持小腸正常生理功能對(duì)鵝的健康尤為必要[7]。本研究通過體外建立鵝小腸氧化應(yīng)激損傷模型,研究鵝腸道發(fā)生氧化損傷機(jī)制。H2O2為一種重要的活性氧物質(zhì),可穿透細(xì)胞膜與細(xì)胞內(nèi)鐵離子反應(yīng),生成具有高活性自由基,因其理化性質(zhì)穩(wěn)定容易獲得,現(xiàn)已成為建立細(xì)胞氧化損傷模型的重要工具[8]??琢盥?lián)等采用200 μmol·L-1濃度H2O2作用奶牛小腸上皮細(xì)胞2 h,成功建立奶牛小腸上皮細(xì)胞氧化損傷模型[9]。本試驗(yàn)研究結(jié)果表明,選用濃度為400 μmol·L-1H2O2作用鵝小腸上皮細(xì)胞2 h,細(xì)胞存活率顯著降至71.4%,且此時(shí)細(xì)胞形態(tài)發(fā)生改變,說明細(xì)胞產(chǎn)生一定程度的氧化損傷,但不會(huì)直接造成細(xì)胞死亡,適宜的抗氧化劑干預(yù),可能恢復(fù)損傷。因此,此濃度和作用時(shí)間可作為建立鵝小腸上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型的適宜濃度,與孔令聯(lián)等研究不同,可能為細(xì)胞結(jié)構(gòu)和耐受性不同所致[9]。
MDA 為脂質(zhì)過氧化的標(biāo)志性產(chǎn)物,可間接反映細(xì)胞氧化損傷程度[10]。LDH正常情況下存在于機(jī)體組織細(xì)胞胞質(zhì)內(nèi),當(dāng)細(xì)胞發(fā)生氧化損傷時(shí),細(xì)胞膜受損,LDH 由胞質(zhì)內(nèi)泄漏。LDH 在細(xì)胞培養(yǎng)液中含量反映細(xì)胞膜受損程度[11]。SOD被稱為自由基清除劑,為生物體內(nèi)重要的抗氧化酶,可將超氧自由基轉(zhuǎn)化為H2O2,使細(xì)胞免受氧化應(yīng)激損傷[12]。SOD 活力可間接反映機(jī)體清除自由基能力。GSH-Px可使機(jī)體內(nèi)有毒的過氧化物還原為無毒的羥基化合物,同時(shí)促進(jìn)H2O2分解成氧氣和水,保持細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)和功能完整性[13]。王振云研究結(jié)果顯示,奶牛乳腺上皮細(xì)胞在H2O2誘導(dǎo)的氧化損傷下,MDA 和LDH 含量顯著增高,SOD 活性下降[14]。吳建民研究結(jié)果表明,雞小腸上皮細(xì)胞發(fā)生急性氧化應(yīng)激損傷時(shí),細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH 酶活性顯著升高,細(xì)胞抗氧化酶SOD和GSH-Px活力顯著降低[15]。以上研究結(jié)果表明,H2O2可誘導(dǎo)不同動(dòng)物上皮細(xì)胞發(fā)生氧化應(yīng)激損傷。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),當(dāng)H2O2誘導(dǎo)鵝小腸上皮細(xì)胞時(shí),細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH和MDA 含量升高,SOD 和GSH-Px 活性下降。表明鵝小腸上皮細(xì)胞在H2O2作用下發(fā)生氧化應(yīng)激損傷,不僅產(chǎn)生大量脂質(zhì)過氧化物,且細(xì)胞膜通透性發(fā)生改變,即膜質(zhì)內(nèi)LDH 透過細(xì)胞膜釋,細(xì)胞培養(yǎng)液中LDH 水平顯著升高。而抗氧化酶活性下降,表明鵝小腸上皮細(xì)胞抗氧化能力降低。
近年研究表明,天然植物及其主效成分對(duì)畜禽具有抗氧化、增強(qiáng)免疫力、促生長(zhǎng)等作用,已作為功能性飼料添加劑在畜牧業(yè)中廣泛應(yīng)用[16]。TP為茶葉中多羥基酚類化合物總稱,結(jié)構(gòu)中的酚羥基可與機(jī)體自由基結(jié)合,使自由基活性下降,減輕自由基對(duì)機(jī)體損傷[17]。大量體內(nèi)、體外試驗(yàn)表明TP 不僅可提高正常組織細(xì)胞的抗氧化能力,對(duì)氧化應(yīng)激損傷細(xì)胞也具有保護(hù)作用,但對(duì)不同物種及其所處生物時(shí)期作用效果不同,發(fā)揮抗氧化能力有效劑量也不同。孫丹鳳研究表明,茶多酚可顯著降低肉鴨小腸黏膜中MDA 含量,顯著提高小腸黏膜中SOD、GSH-Px、二胺氧化酶(DAO)活性[18]。何夢(mèng)曉等研究發(fā)現(xiàn),TP 可提高感染雞球蟲肉仔雞生長(zhǎng)性能和抗氧化能力,改善盲腸微生物組成[19]。Ma 等研究表明,TP 可通過激活NFE2L2/HMOX1 信號(hào)通路減緩奶牛乳腺上皮細(xì)胞發(fā)生的氧化應(yīng)激損傷[20];Zhao 等研究表明,TP 可通過提高小鼠肝細(xì)胞抗氧化能力緩解酒精誘導(dǎo)的急性肝損傷[21]。Cai 等研究表明,TP 通過提高小鼠腸上皮細(xì)胞增殖率和降低脂質(zhì)過氧化程度保護(hù)小鼠腸道免受高脂飲食導(dǎo)致的氧化應(yīng)激損傷[22]。本試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),TP 不僅可提高正常腸上皮細(xì)胞增殖率和抗氧化能力,還可通過提高腸上皮細(xì)胞對(duì)氧自由基的清除能力,降低脂質(zhì)過氧化反應(yīng),減輕氧自由基對(duì)細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)與功能損傷,實(shí)現(xiàn)對(duì)腸上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激狀態(tài)的保護(hù)作用。