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        支架植入后抑制平滑肌細胞過度增殖的研究進展

        2020-04-20 10:39:21胡枝敏凌望吳美平
        中國醫(yī)藥導報 2020年7期
        關鍵詞:研究進展

        胡枝敏 凌望 吳美平

        [摘要] 支架內再狹窄(ISR)是限制支架植入術效果并嚴重影響患者生活質量的主要并發(fā)癥,血管損傷部位的平滑肌細胞過度增殖是早期ISR形成的主要原因。藥物涂層支架和生物可降解支架的問世雖然減輕了ISR危險程度,但是晚期并發(fā)癥仍處于較高的水平,且生物可降解支架的適用材料還處于探索階段。本文主要從抑制平滑肌細胞過度增殖的方面,總結平滑肌細胞在ISR進程中的相關機制及治療手段,希望為臨床治療及實驗研究提供思路。

        [關鍵詞] 支架內再狹窄;血管平滑肌細胞;研究進展

        [中圖分類號] R654.2? ? ? ? ? [文獻標識碼] A? ? ? ? ? [文章編號] 1673-7210(2020)03(a)-0027-04

        [Abstract] In-stent restenosis (ISR) is a major complication that limits the efficacy of stent implantation and seriously affects patients′ quality of life. The excessive proliferation of smooth muscle cells at the site of vascular injury is the main reason for the formation of early ISR. Although the advent of drug-coated stents and biodegradable stents has reduced the risk of ISR, late complications are still at a high level, and the applicable materials of biodegradable stents are still in the exploration stage. This article mainly summarizes the related mechanisms and treatment methods of smooth muscle cells in the process of ISR from the aspect of inhibiting the excessive proliferation of smooth muscle cells, hoping to provide ideas for clinical treatment and experimental research.

        [Key words] In-stent restenosis; Vascular smooth muscle cells; Research progress

        支架植入術能有效改善血管狹窄性病變,但是支架植入的同時會對血管內皮細胞(VECs)造成損害,植入早期即可發(fā)生支架內再狹窄(ISR)。內皮損傷導致血小板活化并產生黏附,隨之釋放促炎因子,減少組織纖溶酶原激活劑并增加纖維蛋白生成、激活凝血酶,從而促進血管平滑肌細胞(VSMCs)增殖和遷移、細胞外基質形成、內膜增生和富含血小板的血栓形成,最終導致再狹窄[1]。隨著支架材料的發(fā)展,目前已有金屬裸支架(BMS)、藥物涂層支架(DES)以及生物可降解支架(BVS)。BVS理論上可在DES的基礎上,減少后期支架本體對血管內膜的影響,但是該支架的適用材料仍處于探索階段[2]。目前外周血管狹窄時常用BMS進行治療,冠脈狹窄時則使用DES[3]。紫杉醇、雷帕霉素及雷帕霉素衍生物等藥物位于支架藥物涂層,可在使用DES患者體內緩慢持續(xù)地釋放,減少血管平滑肌細胞過度增生或促進內皮重建[4-5]。與BMS比較,DES顯著減少術后早期ISR的發(fā)生率[6],但是在術后晚期,ISR的發(fā)生率仍處于較高水平[7]。VSMCs的過度增殖是ISR發(fā)生早期的主要因素。機械擴張對已受到斑塊影響的血管壁造成進一步的損傷,進而刺激炎性反應、組織重建和修復。該過程的主要表現就是VSMCs過度增殖,侵入血管腔隙導致腔隙變窄[8]。因此,本文主要綜述了VSMCs在ISR進程中的相關機制及調控方法,發(fā)現轉化生長因子-β(TGF-β),血小板衍生生長因子(PDGF)及其衍生物(PDGF-BB)與VSMCs的增殖最為密切,另外剪切應力、血管內皮生長因子(VEGF)和早期生長反應基因-1(Egr-1)等對VSMCs的增殖也有影響。

        1 TGF-β及下游信號通路

        1.1 TGF-β濃度的影響

        周孜孜[9]體外培養(yǎng)人主動脈平滑肌細胞(HA.VSMCs),用不同濃度的重組人TGF-β1進行干預,經細胞活性檢測或細胞遷移試驗觀察細胞增殖及遷移情況。結果顯示,TGF-β1濃度<5 ng/mL時,HA.VSMCs增殖水平隨著TGF-β1濃度增加逐漸升高;而當濃度>5 ng/mL時,細胞增殖水平降低。

        杜明昭[10]從抑制TGF-β的促進細胞外基質分泌功能的角度對ISR的治療進行探索,構建了一種由硫酸魚精蛋白和兩種功能基因質粒DNA組成的聚電解質多層膜。負載的人肝細胞生長因子(HGF)基因促進HGF分泌和VECs增殖,負載的人TGF-β1基因短發(fā)夾RNA(TGF-β1-shRNA)基因可以抑制TGF-β1分泌,從而抑制細胞外基質分泌,達到同時促進VECs增殖與抑制細胞外基質分泌的治療效果,實現抑制ISR目的。

        1.2 ERK相關信號通路

        ERK是將信號刺激由表面受體轉導至細胞核內的關鍵物質,Ras同源基因-Rho相關螺旋卷曲蛋白激酶(Rho-ROCK)信號通路是TGF-β的主要下游效應物[11],兩者在VSMCs增殖和表型變化中均發(fā)揮作用。孫嵐等[12]研究發(fā)現,非對稱性二甲基精氨酸(ADMA)通過Rho/ROCK信號通路和ERK1/2信號交聯誘導VSMCs遷移和表型轉化,該作用可以被L-精氨酸抑制。另外,Luo等[13]研究發(fā)現,ERK1/2信號通路及下游還受血管緊張素受體AT1相關受體蛋白和其配體調控,參與調控VSMCs增殖、遷移、收縮和松弛。

        1.3 TGF-β/Smad信號通路

        TGF-β及其下游Smad信號通路的活化促進VSMCs向收縮型轉換,并上調VSMCs分化標志物SMa-actin、SM22a[14]。蔡松志[15]研究發(fā)現,TGF-β通過Smad2/3通路調控micro RNA-206及其靶點鋅指核轉錄因子(ZFP580),而過表達microRNA-206可以降低細胞的SMa-actin、SM22a表達水平,抑制ZFP580表達和聯接蛋白43(CX43)的激活,從而抑制VSMCs的分化和增殖。

        2 PDGF及其衍生物PDGF-BB

        綜合各項在PDGF誘導VSMCs增殖的細胞模型基礎上的研究,發(fā)現PDGF及衍生物PDGF-BB對ISR的促進主要與ERK、磷脂酰肌醇3-激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt)、以及絲裂原活化蛋白激酶(MAPKs)等信號通路相關。

        2.1 ERK相關信號通路

        Dong等[16]使用PDGF-BB誘導VSMCs增殖,發(fā)現黃芩苷可減少增殖細胞核抗原(PCNA)表達,抑制細胞周期調控因子激活,增加G0/G1期細胞周期阻斷因子p27的水平,通過抑制PDGF受體β(PDGFRβ)-ERK1/2信號通路抑制VSMCs增殖,并且在動物頸動脈球囊損傷模型中,黃芩苷具有顯著抑制內膜增生的效果。

        2.2 PI3K/AKT相關信號通路

        PI3K/Akt信號通路的活化對VSMCs的增殖和遷移也有促進作用[17]。Sun等[18]發(fā)現PI3K/AKT下游哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)可被剪切應力及其下游腺苷單磷酸激活蛋白激酶(AMPK)抑制,從而抑制VSMCs收縮基因的表達。而在藥物中,雷帕霉素或是當歸黃芪聯合用藥均可以通過抑制PI3K/AKT抑制VSMCs的過度增殖,后者還具有減少細胞外基質沉積的功效[19-20]。

        2.3 MAPKs相關信號通路

        Doronzo等[21]研究發(fā)現,MAPKs可以被一氧化氮(NO)-環(huán)磷酸鳥苷依賴性蛋白激酶信號通路激活,促進轉錄調節(jié)因子GATA-6和平滑肌肌球蛋白重鏈表達,進而參與維持血管平滑肌細胞分化表型。隨后,Yang等[22]設計了穩(wěn)定釋放NO支架涂層,這種涂層能夠抑制平滑肌細胞的增殖和遷移,減少血小板活化。同時促進內皮黏附,有助于血管再內皮化。

        3 VEGF相關信號通路

        一般來說,VEGF介導的血管內皮化有利于減輕ISR的嚴重程度,但是其對VSMCs的促增殖作用將加重ISR[23]。為了探究VEGF是否可以在特定條件下同時介導內皮化、抑制VSMCs過度增殖,Gareri等[24]將轉染了VEGF基因并穩(wěn)定表達的VECs與VSMCs共培養(yǎng),發(fā)現過表達VEGF可以介導血管內皮化,同時抑制VSMCs的增殖。

        4 Egr-1相關信號通路

        Egr-1是炎癥啟動的關鍵因子,受腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、內皮素-1、PDGF-BB、游離血紅素、ERK-1/2等調控,調節(jié)白細胞介素-6(IL-6)和其他炎性反應相關基因表達,參與機體炎癥和免疫反應[25-26]。例如血管損傷后釋放的血紅素能夠通過活性氧(ROS)信號通路,上調Egr-1,導致VSMCs增殖遷移[26];在ISR模型中,血管緊張素Ⅱ可通過上調Egr-1促進VSMCs表型轉換并增殖,該作用在一定范圍內與濃度和作用時間呈正相關[27]。

        5 小結

        綜上所述,血管損傷后VSMCs受多種細胞因子和信號通路調控,采取不同的調控方式抑制VSMCs過度增殖。但是僅通過調控VSMCs不能很好地抑制ISR的發(fā)生發(fā)展,后期如何促進血管再內皮化也是解決問題的關鍵。損傷的VECs恢復和再生主要通過內皮剝脫區(qū)附近的VECs和骨髓源性內皮祖細胞(EPCs)增殖實現。EPCs可分化為成熟的、功能性的VECs,受動員后能修復VECs受損的部位[28]。促血管生成因子等藥物促使EPCs進入血液循環(huán)[29]。另外,外源性干細胞的定向分化和相關細胞因子的分泌也可以促進內皮修復[30]。

        目前實驗研究多以一種細胞為實驗基礎,能夠在抑制VSMCs增殖的條件下促進血管再內皮化的實驗較少。例如文中提到的構建同時負載HGF和TGF-β1-shRNA支架涂層的方法;構建穩(wěn)定釋放NO支架涂層的方法;過表達VEGF的方法。解決問題的關鍵在于平衡VECs和VSMCs的分化、增殖和遷移。因此,需要更多的實驗研究驗證上述方案,或提出更合適的方案抑制ISR的發(fā)生發(fā)展。

        [參考文獻]

        [1]? Tesfamariam B. Endothelial Repair and Regeneration Following Intimal Injury [J]. J Cardiovasc Transl Res,2016,9(2):91-101.

        [2]? Ke L,Huang Y,Liu L,et al. Bioresorbable Vascular Scaffold:A Focused Review on Development and Preclinical Studies [J]. Zhongguo Yi Liao Qi Xie Za Zhi,2018,42(2):115-118.

        [3]? 趙琪,冉峰.藥物涂層支架的研究進展[J].中國血管外科雜志:電子版,2017,9(2):156-160.

        [4]? Tomaniak M,Ko?覥towski ?覵,Pietrasik A,et al. A serial 3- and 9-year optical coherence tomography assessment of vascular healing response to sirolimus- and paclitaxel-eluting stents [J]. Int J Cardiovasc Imaging,2019,35(1):9-21.

        [5]? Harari E,Guo L,Smith SL,et al. Direct Targeting of the mTOR(Mammalian Target of Rapamycin)Kinase Improves Endothelial Permeability in Drug-Eluting Stents [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol,2018,38(9):2217-2224.

        [6]? Ma X,Jiang C,Li Y,et al. Inhibition effect of tacrolimus and platelet-derived growth factor-BB on restenosis after vascular intimal injury [J]. Biomed Pharmacother,2017, 93:180-189.

        [7]? 杜長春.藥物洗脫支架與金屬支架置入后再狹窄及其生物相容性比較[J].中國組織工程研究與臨床康復,2009, 13(39):7735-7738.

        [8]? Indolfi C,Iaconetti C,Gareri C,et al. Non-coding RNAs in vascular remodeling and restenosis [J]. Vascul Pharmacol,2019,114:49-63.

        [9]? 周孜孜.轉化生長因子-β_1誘導人主動脈平滑肌細胞表型轉化的作用及機制研究[D].廣州:南方醫(yī)科大學,2016.

        [10]? 杜明昭.載人HGF與TGF-β1-shRNA功能基因涂層血管內支架的實驗研究[D].長春:吉林大學,2014.

        [11]? Tao J,Barnett JV,Watanabe M,et al. Hypoxia Supports Epicardial Cell Differentiation in Vascular Smooth Muscle Cells through the Activation of the TGFβ Pathway [J]. J Cardiovasc Dev Dis,2018,5(2):19.

        [12]? 孫嵐,辛文妤,于昕,等.非對稱性二甲基精氨酸通過Rho/ROCK信號通路介導大鼠血管平滑肌細胞遷移[J].中國分子心臟病學雜志,2012,12(1):37-42.

        [13]? Luo X,Liu J,Zhou H,et al. Apelin/APJ system:A critical regulator of vascular smooth muscle cell [J]. J Cell Physiol,2018,233(7):5180-5188.

        [14]? 李羅成,王志維,胡知朋,等.Fibulin-2調控的TGF-β/Smad信號通路在VSMCs凋亡中的作用[J].武漢大學學報:醫(yī)學版,2018,39(3):380-384.

        [15]? 蔡松志.miR-206靶向ZFP580調控平滑肌細胞表型轉換研究[D].石家莊:河北醫(yī)科大學,2015.

        [16]? Dong LH,Wen JK,Miao SB,et al. Baicalin inhibits PDGF-BB-stimulated vascular smooth muscle cell proliferation through suppressing PDGFRβ-ERK signaling and increase in p27 accumulation and prevents injury-induced neointimal hyperplasia [J]. Cell Res,2010,20(11):1252-1262.

        [17]? Zhang Q,Chen L,Zhao Z,et al. HMGA1 Mediated High-Glucose-Induced Vascular Smooth Muscle Cell Proliferation in Diabetes Mellitus:Association Between PI3K/Akt Signaling and HMGA1 Expression [J]. DNA Cell Biol,2018,37(4):389-397.

        [18]? Sun L,Zhao M,Liu A,et al. Shear Stress Induces Phenotypic Modulation of Vascular Smooth Muscle Cells via AMPK/mTOR/ULK1-Mediated Autophagy [J]. Cell Mol Neurobiol,2018,38(2):541-548.

        [19]? Tan P,Wang YJ,Li S,et al. The PI3K/Akt/mTOR pathway regulates the replicative senescence of human VSMCs [J]. Mol Cell Biochem,2016,422(1/2):1-10.

        [20]? Yan H,Peng X,Xu H,et al. Inhibition of Aortic Intimal Hyperplasia and Vascular Smooth Muscle Proliferation and Extracellular Matrix Protein Expressions by Astragalus-Angelica Combination [J]. Evid Based Complement Alternat Med,2018,2018:1-15.

        [21]? Doronzo G,Viretto M,Russo I,et al. Nitric oxide activates PI3-K and MAPK signalling pathways in human and rat vascular smooth muscle cells:influence of insulin resistance and oxidative stress [J]. Atherosclerosis,2011, 216(1):44-53.

        [22]? Yang Z,Yang Y,Zhang L,et al. Mussel-inspired catalytic selenocystamine-dopamine coatings for long-term generation of therapeutic gas on cardiovascular stents [J]. Biomaterials,2018,178:1-10.

        [23]? Liao XH,Xiang Y,Li H,et al. VEGF-A Stimulates STAT3 Activity via Nitrosylation of Myocardin to Regulate the Expression of Vascular Smooth Muscle Cell Differentiation Markers [J]. Sci Rep,2017,7(1):2660.

        [24]? Gareri C,Iaconetti C,Sorrentino S,et al. miR-125a-5p Modulates Phenotypic Switch of Vascular Smooth Muscle Cells by Targeting ETS-1 [J]. J Mol Biol,2017,429(12):1817-1828.

        [25]? Kadam AA,Gersch RP,Rosengart TK,et al. Inflammatory monocyte response due to altered wall shear stress in an isolated femoral artery model [J]. J Biol Methods,2019,6(1):e109.

        [26]? Hasan RN,Schafer AI. Hemin upregulates Egr-1 expression in vascular smooth muscle cells via reactive oxygen species ERK-1/2-Elk-1 and NF-kappaB [J]. Circ Res,2008,102(1):42-50.

        [27]? Simo-Cheyou ER,Tan JJ,Grygorczyk R,et al. STIM-1 and ORAI-1 channel mediate angiotensin-Ⅱ-induced expression of Egr-1 in vascular smooth muscle cells [J]. J Cell Physiol,2017,232(12):3496-3509.

        [28]? Chen W,Xiao L,Bai J,et al. The promotion of tissue engineering blood vessel patency by CGS21680 through regulating pro-inflammatory activities of endothelial progenitor cell [J]. J Biomed Mater Res A,2018,106(10):2634-2642.

        [29]? Zhang Y,You B,Liu X,et al. High-Mobility Group Box 1(HMGB1)Induces Migration of Endothelial Progenitor Cell via Receptor for Advanced Glycation End-Products (RAGE)-Dependent PI3K/Akt/eNOS Signaling Pathway [J]. Med Sci Monit,2019,25:6462-6473.

        [30]? Chang HK,Kim PH,Kim DW,et al. Coronary stents with inducible VEGF/HGF-secreting UCB-MSCs reduced restenosis and increased re-endothelialization in a swine model [J]. Exp Mol Med,2018,50(9):114.

        (收稿日期:2019-11-05? 本文編輯:王曉曄)

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