武 江，楊 陽，楊 冉，郭愛華，張 超

（山西省農業(yè)科學院園藝研究所，山西太原030031）

耬斗菜（Aquilegia vulgaris L.）為毛茛科耬斗菜屬多年生草本宿根植物，耐寒，根肥大，圓柱形，外皮黑褐色，有少數(shù)分枝，原產于歐洲和北美洲[1]。我國有豐富而珍貴的耬斗菜野生資源，分布于青海東部、甘肅、寧夏、陜西、山東、河北、山西、內蒙古、遼寧、吉林、黑龍江等地[2]。耬斗菜具有較高的觀賞價值，此外其嫩莖、葉營養(yǎng)豐富可食用，根含糖，可制作飴糖或釀酒，全草或根可做婦科用藥，有免疫活性、抗腫瘤活性、肝保護作用，具有較高的經濟價值[3]。近年來，隨著對植物多糖研究的不斷深入，發(fā)現(xiàn)多糖對腫瘤、肝炎、心血管病等疾病的預防和治療[4]，以及調節(jié)糖代謝和抗衰老等方面具有獨特的生物活性[5]。因其毒副作用小、安全性強、功能多等特點而被越來越多的人關注，相關的研究也日益受到重視[6]。對華北耬斗菜的化學成分分離后鑒定出13 種化合物[7]。另有研究表明，耬斗菜提取物對黑腹果蠅具有抗衰老作用[8]。在植物多糖的提取方法中，多采用熱提法[9]、回流法和超聲波法[10]，回流波法與超聲波法曾應用在提取蒙藥耬斗菜多糖中，但是目前采用響應面法分析優(yōu)化耬斗菜多糖的最佳提取工藝還鮮有報道。

本研究以大花耬斗菜為試材驗料，通過微波方法提取根系多糖，在單因素試驗的基礎上，利用Box-Behnken 對耬斗菜多糖的提取工藝進行響應面法（RSM）分析優(yōu)化，考察關鍵工藝參數(shù)對耬斗菜根系多糖提取率的影響，旨在為進一步探究耬斗菜多糖的生物學活性提供依據(jù)。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

供試材料為大花耬斗菜（Aquilegia glandulosa Fisch.ex Link.），2019 年6 月定植于山西農業(yè)大學園藝站。

1.2 試劑與儀器

丙酮、葡萄糖、苯酚、濃硫酸、無水乙醚、無水乙醇，均為分析純。

可見分光光度計VIS-723N（北京瑞利分析儀器有限公司）、萬能破碎機FW80（天津泰斯特儀器有限公司）、電熱鼓風干燥箱GZX-9146MBE（上海博訊有限公司醫(yī)療設備廠）、冷藏冷凍冰箱BCD-252KSA（青島海爾股份有限公司）。

1.3 試驗方法

1.3.1 耬斗菜根系粗多糖的提取 挖取大花耬斗菜根系，烘干并研磨成粉末，過0.177 mm 篩。準確稱取耬斗菜根系粉末0.2 g，倒入燒杯中，按照一定的料液比與蒸餾水混合，后置于微波爐中進行輔助提取。將輔助提取后的提取液于80 ℃熱水浸提1 h，離心20 min（3 500 r/min），取上清液，加入3 倍體積的無水乙醇，在4 ℃冰箱中放置過夜，后離心20 min（3 500 r/min）得沉淀，再依次用無水乙醇、丙酮、無水乙醚清洗，通風干燥，得粗多糖。

1.3.2 耬斗菜根系多糖含量的測定 采用苯酚-硫酸法測量粗多糖含量[11-15]，并于490 nm 的波長處測定吸光值?；貧w方程為：a＝1.186x-0.007 8（R2＝0.994），其中，x 為490 nm 的吸光值，a 為還原糖質量濃度（mg/mL）。

式中，a 為回歸方程計算所得多糖質量濃度（mg/mL）；b 為稀釋倍數(shù)；c 為耬斗菜根系多糖相對于葡萄糖的換算因子1.272；M 為耬斗菜粉末質量。

1.3.3 單因素試驗 在1.3.2 試驗基礎上，使用微波輔助提取法，設置不同的微波時間（20、30、40、50、60 s）、微波功率（20、40、60、80、100 W）、料液比（1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30（g/mL）），進行單因素試驗，檢測所得到的耬斗菜根系多糖粗提液中多糖含量，并計算粗多糖提取率。

1.3.4 Box-Behnken 試驗設計及響應面分析 使用Design Expert 8.0.6 軟件中的中心組合試驗設計原理，在單因素試驗的基礎上，以微波時間（X1）、微波功率（X2）、料液比（X3）為自變量，以多糖提取率（Y）為響應值，進行3 因素3 水平響應面法分析試驗。將各因素以1、0、-1 編碼，其中，0 為最佳條件，-1 為較低水平，1 為較高水平（表1）。通過對試驗結果的回歸方差分析，優(yōu)化耬斗菜根系多糖的提取工藝條件。

表1 Box-Behnken 試驗設計因素和水平

2 結果與分析

2.1 微波工藝單因素試驗結果分析

2.1.1 微波時間對耬斗菜根系多糖提取率的影響由圖1 可知，在微波功率60 W、料液比1∶20（g/mL）的條件下，耬斗菜根系多糖提取率隨著微波時間的延長緩慢增大，當微波時間超過50 s 后，多糖提取率呈快速下降趨勢。這是因為隨著微波時間的增加，提取溫度升高，多糖降解率也增加，從而導致提取率下降。因此，考慮50 s 為微波法中耬斗菜根系多糖提取的適宜微波時間。

2.1.2 微波功率對耬斗菜根系多糖提取率的影響由圖2 可知，在微波時間30 s、料液比1∶20（g/mL）條件下，隨著微波功率的增加，耬斗菜根系多糖提取率增加，微波功率為40 W 時，耬斗菜根系多糖提取率達到最大，繼續(xù)提高微波功率，則多糖提取率下降。這可能是因為微波功率增大造成提取液溫度升高，部分多糖分解造成提取率降低。

2.1.3 料液比對耬斗菜根系多糖提取率的影響 由圖3 可知，在微波時間30 s、微波功率60 W 的條件下，隨著料液比的增加，多糖提取率逐漸增大，當料液比為1∶20（g/mL）時，耬斗菜根系多糖提取率達到最大。但若繼續(xù)增大料液比，多糖溶出量反而降低。這是因為料液比達到一定比值時，根系中的多糖基本全部溶出，擴散達平衡，繼續(xù)增大溶劑量也不會促進多糖的提取，反而會加重后續(xù)濃縮負擔[16]。

2.2 微波法多糖提取工藝的響應面分析

2.2.1 響應面法優(yōu)化試驗結果 采用Box-Behnken設計原理對耬斗菜根系多糖提取條件進行3 因素3 水平的響應面分析試驗，結果如表2 所示。

表2 微波法響應面試驗設計及結果

以耬斗菜根系多糖提取率（Y）為響應值，得到提取率對微波時間（X1）、微波功率（X2）、料液比（X3）的回歸方程為Y＝-32.434 726＋7.716 296X1＋3.139 657X2-0.019 000X3-0.058 190X1X2＋5.890 070X1X3＋0.001 008X2X3-0.001 488X12-0.025 040X22＋0.002 029X32。對模型方程進行顯著性檢驗，由表3 可知，回歸模型極顯著（P＜0.000 1），失擬項不顯著（P＝0.110 6），實際試驗值與預測具有高度相關性。表明模型與試驗值擬合良好，試驗方法可信度高，該模型可以對耬斗菜根系多糖的提取率進行準確預測和分析。從表3 還可以看出，微波時間、料液比對耬斗菜根系多糖提取率有極顯著影響，微波功率對耬斗菜根系多糖提取率的影響不顯著。

表3 微波法回歸模型

2.2.2 響應面直觀分析 依據(jù)回歸方程，可以獲得耬斗菜根系多糖提取的微波時間、微波功率和料液比兩兩因素交互作用的響應曲面和等高線，如圖4、5、6 所示。

從圖4、5、6 可以看出，任何2 個交互因素的響應面都存在最高點，微波時間和微波功率的交互作用、微波時間和料液比的交互作用以及料液比和微波功率的交互作用對多糖提取率的影響均為顯著（等高線為橢圓形）。同一料液比水平下，隨微波時間和微波功率的增加，多糖提取率逐漸增加，到達最高點后下降。即多糖得率在合適的微波時間和微波功率下具有極大值，該極大值存在于響應面的頂部，也就是等高線最小橢圓的中心點[17]。同理可得，微波時間和料液比、微波功率和料液比這2 對交互因素之間也具有極大值。通過軟件分析得到，提取耬斗菜根系多糖的最優(yōu)條件為：提取時間44.57 s、提取功率56.47 W、料液比1∶20.82（g/mL）。

2.3 試驗驗證

為了檢驗模型的準確性，根據(jù)試驗條件調整的最佳提取條件為：提取時間44 s、提取功率60 W、料液比1∶21（g/mL）。在此條件下進行試驗驗證和重復性考察，得到真實最佳得率為17.64%，與理論得率18.21%僅相差0.57 百分點。進一步表明，所得模型可以較好地預測耬斗菜根系多糖的提取情況。

3 結論與討論

本研究選擇微波時間、微波功率和料液比3 個對耬斗菜根系多糖提取率影響較大的因素設計試驗，在單因素試驗的基礎上，通過Box-Behnken 設計，建立相應的二次回歸方程。通過方差分析和響應曲面分析發(fā)現(xiàn)，微波時間和料液比為耬斗菜根系多糖提取過程中的顯著因素，并且它們的二次項對多糖提取率的響應面曲線有非常顯著的影響。同時，料液比分別與微波時間、微波功率之間的交互作用顯著。

利用響應面法得到耬斗菜根系多糖的微波法提取過程優(yōu)化的工藝條件為：提取時間44 s、提取功率60 W、料液比1∶21（g/mL）；在此條件下，多糖提取率為17.64%，與理論值接近，模型方程高度顯著，擬合度良好，可以較好地預測耬斗菜多糖的提取得率。

目前，植物藥物中粗多糖的制備主要用常規(guī)的水提醇沉法[17]。本研究對大花耬斗菜多糖的提取方法進行了優(yōu)化，通過響應曲面優(yōu)化微波法中各提取條件，得到了較為理想的大花耬斗菜根系多糖的提取工藝，為進一步研究耬斗菜屬其他植物藥效物質基礎提供理論依據(jù)。