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        醬香型白酒機(jī)械化釀造不同輪次堆積發(fā)酵 細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)多樣性分析

        2020-02-10 15:35:14席德州黃永光曹文濤尤小龍程平言
        食品科學(xué) 2020年2期
        關(guān)鍵詞:發(fā)酵酒醬香型負(fù)相關(guān)

        王 歡,席德州,黃永光,,曹文濤,尤小龍,程平言,胡

        (1.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州省發(fā)酵工程與生物制藥重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州 貴陽 550025;2.貴州茅臺酒廠(集團(tuán))習(xí)酒有限責(zé)任公司,貴州 習(xí)水 564622)

        醬香型白酒是中國最傳統(tǒng)、最古老的三大香型白酒之一,也是華夏民族典型的發(fā)酵食品之一,以茅臺酒為代表,其他名優(yōu)酒有習(xí)酒、郎酒等。其酒體風(fēng)格特征為“無色(或微黃)透明,醬香突出,幽雅細(xì)膩,醇厚協(xié)調(diào),回味悠長,空杯留香持久”[1]。其獨(dú)特的釀造工藝可概括為“高溫制曲、高溫堆積、高溫發(fā)酵、高溫餾酒、生產(chǎn)周期長、貯存時(shí)間長、用曲量大、多輪次(發(fā)酵)取酒”[2]。其中,高溫堆積發(fā)酵是醬香型白酒獨(dú)特的生產(chǎn)工序之一,也是其釀造工藝中最難掌控的關(guān)鍵環(huán)節(jié),具有“次制曲”之說[3]。堆積發(fā)酵過程可自然網(wǎng)羅、富集釀造環(huán)境中的微生物,形成獨(dú)特的微生物菌群結(jié)構(gòu),其過程所富集的微生物菌群代謝產(chǎn)生豐富多的發(fā)酵酶類、風(fēng)味物質(zhì)對后期酒體醬香風(fēng)味的形成具有重要作用[1], 同時(shí)也為下一步窖池發(fā)酵提供充足的微生物儲備[4-5]。其過程的菌群結(jié)構(gòu)包括酵母菌、細(xì)菌、放線菌和霉菌等。其中,細(xì)菌是醬香型白酒釀造過程中重要的產(chǎn)香功能微生物,能夠分泌代謝降解蛋白質(zhì)及淀粉的水解酶類,對酒體的風(fēng)味質(zhì)量有著極大貢獻(xiàn)和關(guān)鍵調(diào)控作用[4]。因,系統(tǒng)研究釀造過程的細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)及其演替規(guī)律是科學(xué)認(rèn)識和揭示其釀造品質(zhì)的關(guān)鍵。

        近年,蓬勃發(fā)展的高通量測序及其數(shù)理分析研究[6]為深入探索、解析復(fù)雜發(fā)酵體系的微生物菌群組成和結(jié)構(gòu)提供了有效手段[7-10]。黃蘊(yùn)利等[11]利用高通量測序研究了醬香型白酒傳統(tǒng)釀造過程發(fā)酵酒醅中的微生物菌群結(jié)構(gòu),發(fā)現(xiàn)堆積酒醅中的優(yōu)勢細(xì)菌屬為芽孢桿菌屬、腸球菌屬、乳球菌屬和乳桿菌屬。郭敏等[12]運(yùn)用高通量測序技術(shù)對醬香型白酒傳統(tǒng)釀造過程發(fā)酵酒醅的微生物菌群結(jié)構(gòu)也進(jìn)行了研究,揭示了發(fā)酵過程優(yōu)勢菌屬與產(chǎn)酒之間的機(jī)制。李欣等[13]通過高通量測序技術(shù)對醬香型白酒傳統(tǒng)釀造不同發(fā)酵階段的優(yōu)勢菌屬進(jìn)行研究,揭示了優(yōu)勢菌屬對醬香型白酒生產(chǎn)的功能作用。但上述研究主要集中在于單一輪次或傳統(tǒng)釀造過程中菌群結(jié)構(gòu)的研究,缺乏對整個(gè)輪次堆積發(fā)酵全過程系統(tǒng)性的研究和解析,也缺乏對各輪次微生物結(jié)構(gòu)之間多性、異同性的系統(tǒng)分析。隨著濃香白酒領(lǐng)域的洋河[14]、今世緣的高度機(jī)械化[15],清香型的勁酒機(jī)械化快速發(fā)展[16],在傳統(tǒng)白酒行業(yè)掀起了新的機(jī)械化創(chuàng)新發(fā)展。機(jī)械化釀造不但可降低傳統(tǒng)模式的勞動強(qiáng)度,還可提升釀造質(zhì)量的穩(wěn)定性和可控性。

        為揭示機(jī)械化釀造過程中不同輪次堆積發(fā)酵微生物菌群結(jié)構(gòu)的多性、差異性,利用高通量測序及其數(shù)理分析,對醬香型白酒機(jī)械化釀造不同輪次堆積發(fā)酵酒醅中的微生物菌群結(jié)構(gòu)及其多性等進(jìn)行系統(tǒng)研究,為機(jī)械化釀造醬香型白酒的發(fā)展和工藝優(yōu)化提供理論指導(dǎo)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        DNA試劑盒 美國Omega BioTek公司;聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增引物 北京全式金生物技術(shù)有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        臺式高速冷凍離心機(jī) 德國Sigma公司;E002092超凈工作臺 蘇州市金凈凈化設(shè)備科技有限公司;數(shù)顯恒溫水浴鍋 國華電器有限公司;渦旋振蕩器 北京同正生物技術(shù)發(fā)展有限公司;PCR儀 美國伯公司; 電泳儀 北京六一儀器廠;凝膠成像系統(tǒng) 上海培清科技有限公司。

        1.3 方法

        圖 1 堆積酒醅取樣Fig. 1 Sampling points for stacking fermented grains

        1.3.3 PCR擴(kuò)增及凝膠電泳

        細(xì) 菌 P C R 擴(kuò) 增 引 物 : 3 3 8 F(5’-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3’)和806R(5’-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3’);PCR體系:10h Buffer 2 mL,dNTPs 2 μL,正反引物各0.8 μL,rTaq DNA聚合酶0.2 μL,ddH2O 12.2 μL,總計(jì)20 μL反應(yīng)體系。PCR條件:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s,53 ℃退火30 s,72 ℃延伸60 s,29 個(gè)循環(huán);72 ℃再 延伸10 min。

        凝膠電泳: 1 % 瓊脂糖凝膠, 核酸染料(Gengreen),電壓90 V,電泳時(shí)間40 min。

        1.3.4 高通量測序

        采用Illumina高通量測序技術(shù),基于Illumina MiSeq測序平臺,分別對細(xì)菌V4高變區(qū)序列進(jìn)行測序分析(由專業(yè)檢測公司完成)。

        1.3.5 理化指標(biāo)的測定

        水分測定采用135 ℃的烘干法;酸度測定采用酸堿滴定法;淀粉、還原糖檢測采用斐林試劑法。具體參照DB 34/T 2264ü 2014《固態(tài)發(fā)酵酒醅分析方法》[17]。

        1.3.6 機(jī)械化釀造工藝

        本機(jī)械化釀造工藝流程與傳統(tǒng)釀造工藝流程相同,主要是在釀造過程采用機(jī)械化代替人工操作,具體概述如下:應(yīng)用潤糧設(shè)備代替人工潤糧,采取三段式潤糧,控制每段的潤糧時(shí)間、水分和溫度;蒸糧蒸酒采用機(jī)械設(shè)備自動上甄,上甄下料采用垂直式下料、紅外感應(yīng)見汽下料,做到疏、松、勻、薄、輕、平等要求;攤涼、下曲、拌勻、運(yùn)醅均為一體式機(jī)械設(shè)備,在線風(fēng)冷攤涼、自動計(jì)量下曲、絞龍拌勻、傳送帶運(yùn)醅,按工藝參數(shù)控制過程工藝參數(shù),嚴(yán)格模擬傳統(tǒng)釀造工藝要求;堆積采用垂直式、轉(zhuǎn)盤設(shè)備下醅、堆積,地面堆積,參數(shù)控制按傳統(tǒng)工藝執(zhí)行;下窖、起窖采用傳統(tǒng)釀造的行車、抱斗,工藝操作和控制嚴(yán)格執(zhí)行傳統(tǒng)工藝要求。

        1.4 數(shù)據(jù)及圖像處理

        采用Microsoft Office Excel 2016進(jìn)行數(shù)據(jù)計(jì)和分析?;贗llumina MiSeq測序平臺,群落組成圖、Heatmap圖、冗余分析圖利用R語言工具,物種相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)運(yùn)用Cytoscape軟件,豐度圖利用Origin軟件進(jìn)行繪制。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)多性

        圖 2 酒醅樣品中的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)(門水平)Fig. 2 Bacterial community structure of fermented grain samples at phylum level

        圖 3 酒醅樣品中的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)(屬水平)Fig. 3 Bacterial community structure of fermented grain samples at genus level

        如圖3所示,在屬水平上,不同輪次機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵酒醅中的細(xì)菌菌群在數(shù)量及結(jié)構(gòu)分布上多性特征明顯,但菌群的屬類種別基本一致,1輪次共檢測出130 個(gè)屬,2輪次126 個(gè)屬,3輪次129 個(gè)屬,4輪次119 個(gè)屬,5輪次125 個(gè)屬,6輪次164 個(gè)屬,7輪次136 個(gè)屬。1輪次的菌屬分布較均勻,相對豐度大于1%的有10 個(gè)屬,包括Acinetobacter、Lactobacillus、Bacillus、Lentibacillus、Kroppenstedtia、Oceanobacillus、Pediococcus、Sphingomonas、Thermoactinomyces和Weissella,其中以前5 種為主(總相對豐度為84.74%)。從2輪次開始,Acinetobacter的相對豐度均大于50%,成為主導(dǎo)菌屬。其中,2輪次的菌群多性有所降低,共6 個(gè)屬的相對豐度大于1%,包括Acinetobacter、Bacillus、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus和Thermoactinomyces。3、4、5輪次的產(chǎn)酒酒質(zhì)最好,出酒率也高,被稱為“大回酒”[19],且4、5輪次香氣特征較為相似,圖3 表明其菌群結(jié)構(gòu)也較相似。其中,3輪次有9 個(gè)屬相對豐度大于1%,主要是Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Oceanobacillus、Sphingomonas和Thermoactinomyces。4輪次有9 個(gè)屬相對豐度大于1%,以Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Rhodococcus、Sphingomonas和Thermoactinomyces為主。5輪次相對豐度大于1%的有8 個(gè)屬,包括Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Oceanobacillus和Sphingomonas。6、7輪次的菌群結(jié)構(gòu)也相似,6輪次有9 個(gè)屬相對豐度大于1%,包括Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Oceanobacillus、Rhodococcus和Sphingomonas;7輪次共有8 個(gè)相對豐度大于1%的屬,包括Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Oceanobacillus和Sphingomonas。機(jī)械化釀造各個(gè)輪次堆積酒醅中的共有優(yōu)勢菌屬主要為Acinetobacter、Lactobacillus、Bacillus、Lentibacillus和Kroppenstedtia,這些菌屬在部分輪次中的相對豐度都在5%以上。上述結(jié)論表明,在醬香型白酒機(jī)械化釀造的各輪次之間參與堆積發(fā)酵并富集的微生物菌群結(jié)構(gòu)多性特征非常明顯,其各輪次的菌群結(jié)構(gòu)共性特征顯著性大于差異性,說明各輪次釀造的釀酒微生物穩(wěn)定性較好,也表征了醬香型白酒釀造過程存在固有的特征性菌群結(jié)構(gòu)。

        2.2 核心微生物菌群及其功能

        研究表明[20-22],平均相對豐度大于1%且至少出現(xiàn)在一個(gè)品以上的菌屬被定義為核心微生物屬。本研究發(fā)現(xiàn),機(jī)械化釀造不同輪次堆積發(fā)酵酒醅中的細(xì)菌平均豐度大于1%且至少出現(xiàn)在1 個(gè)品以上的屬有12 個(gè),分別是Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Oceanobacillus、Pediococcus、Rhodococcus、Sphingomonas、Thermoactinomyces和Weissella。如圖4所示,該12 個(gè)菌屬1~7輪次總相對豐度分別為97.98%、97.82%、97.20%、98.28%、97.52%、95.57%、95.51%,說明這12 個(gè)菌屬一直穩(wěn)定存在于醬香型白酒機(jī)械化釀造的堆積發(fā)酵過程,而且成為主導(dǎo)性菌群結(jié)構(gòu),可將其認(rèn)為是機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵過程的核心微生物結(jié)構(gòu)菌群。其中,Acinetobacter、Lactobacillus、Bacillus、Lentibacillus和Kroppenstedtia在7 個(gè)輪次中的相對豐度均大于1%,且后4 種(Lactobacillus、Bacillus、Lentibacillus和Kroppenstedtia)為傳統(tǒng)釀造酒醅中的優(yōu)勢菌群和功能菌群,對酒體醬香風(fēng)味的形成具有重要貢獻(xiàn)[23]。

        圖 4 酒醅樣品中的核心細(xì)菌群落豐度圖(屬水平)Fig. 4 Abundance of core bacterial community in fermented grain samples at genus level

        如圖4所示,Acinetobacter在1~7輪次機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵酒醅中均為絕對優(yōu)勢菌屬,但1輪次中的Acinetobacter含量較其余幾個(gè)輪次少,而在4、5輪次發(fā)酵酒醅中的豐度含量最高,可能的原因是1輪次釀造正處于寒冬季節(jié),環(huán)境溫度較低,微生物生長較緩慢,而4、5輪次生產(chǎn)恰逢5、6月份,較高的環(huán)境溫度與空氣濕度為其提供了良好的生長條件。Acinetobacter主要來源于釀酒環(huán)境的空氣[24]和生產(chǎn)用大曲[25],是一種釀造環(huán)境優(yōu)勢細(xì)菌。該菌屬也在傳統(tǒng)釀造堆積發(fā)酵酒醅中檢出,郭敏等[12]發(fā)現(xiàn)其在第7輪次發(fā)酵中的豐度較高(13.26%),在2、3輪次中其豐度則低于1%。該菌屬成為機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵中的絕對優(yōu)勢菌屬,其可能源于機(jī)械攪拌增加了發(fā)酵酒醅的破碎率,再加上機(jī)械化堆積過程酒醅的堆料方式導(dǎo)致酒醅的緊密度過高,致使堆積酒醅間的氧容量降低,進(jìn)而為Acinetobacter提供了良好的生長環(huán)境[26-27],該菌屬的多數(shù)菌在白酒釀造過程主要利用糖類物質(zhì)產(chǎn)酸,改善發(fā)酵環(huán)境的酸度[28]。Bacillus在1~3輪次中豐度較高(圖4),研究表明[4]其也是大曲中的優(yōu)勢菌群,是醬香白酒醬香風(fēng)味物質(zhì)形成的主要代謝貢獻(xiàn)菌群,能產(chǎn)生蛋白酶與淀粉酶等水解酶類,其水解原料形成豐富的發(fā)酵前體物質(zhì),有利于風(fēng)味物質(zhì)的形成。Pediococcus、Lactobacillus與Weissella屬于乳酸菌菌系,乳酸菌大多是兼性厭氧或厭氧菌[29],在發(fā)酵過程具有重要的生物學(xué)結(jié)構(gòu)調(diào)控功能[30]。在中國白酒釀造發(fā)酵體系中,乳酸菌主要代謝產(chǎn)乳酸,乳酸可與發(fā)酵體系中的其他代謝產(chǎn)物發(fā)生生化反應(yīng)合成多種呈香、呈味物質(zhì),如乳酸乙酯等[31]。同時(shí),乳酸菌還可促進(jìn)發(fā)酵過程的美拉德反應(yīng),增加酒體中的呈香物質(zhì);乳酸菌代謝產(chǎn)生的各種有機(jī)酸還可維持酸性發(fā)酵環(huán)境,調(diào)控發(fā)酵體系中微生物結(jié)構(gòu)間的平衡關(guān)系。乳酸桿菌也可利用霉菌等微生物代謝生成的朊、胨和多肽類物質(zhì)形成氨基酸[32],氨基酸進(jìn)一步代謝產(chǎn)生酒體中的風(fēng)味物質(zhì),對醬香風(fēng)格的形成有重要貢獻(xiàn)。Kroppenstedtia和Lentibacillus均被發(fā)現(xiàn)存在于大曲中,其在白酒生產(chǎn)中的具體作用尚不明確。Kroppenstedtia是1輪次中的優(yōu)勢菌屬(圖4),姚粟等[33]發(fā)現(xiàn)其也是高溫大曲中細(xì)菌Firmicutes的第2優(yōu)勢菌屬,且是一種嗜熱菌屬。Thermoactinomyces也是大曲中的優(yōu)勢菌屬[33],其在1~7輪次機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵酒醅中的豐度含量隨著輪次的增加而減少(圖4),在5~7輪次中豐度低于1%,李豆南等[34]發(fā)現(xiàn),該菌屬可產(chǎn)生吡嗪和芳香類物質(zhì),對醬香型白酒的風(fēng)味具有重要的作用。劉洋等[35]發(fā)現(xiàn)該菌屬發(fā)酵代謝產(chǎn)堿性磷酸酶、酯酶、脂質(zhì)酯酶和萘酚AS-BI磷酸水解酶,還具有糖化力、液化力和較高的蛋白質(zhì)分解力,可降解釀酒原料中的淀粉、蛋白等生成香味物質(zhì)。圖4表明,Sphingomonas在機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵過程隨發(fā)酵輪次遞增,豐度呈現(xiàn)一致的增加趨勢。同時(shí),該菌屬能夠降解芳香類化合物和產(chǎn)生多糖類物質(zhì)[36],還具有較強(qiáng)的產(chǎn)輔酶Q能力[29],該菌屬也存在于傳統(tǒng)釀造堆積發(fā)酵的部分輪次中[37]。在機(jī)械化釀造中還檢測到大量的Caulobacter,該菌屬在1、2輪次中豐度含量較低,6、7輪次中含量最高,其在傳統(tǒng)釀造堆積發(fā)酵酒醅中鮮見報(bào)道,是機(jī)械化釀造過程中的特有菌屬,可能來源于機(jī)械設(shè)備和環(huán)境,在白酒發(fā)酵過程中的作用還有待進(jìn)一步研究。Rhodococcus在整個(gè)群落結(jié)構(gòu)中所占比例很小(圖4),是一類可以從土壤等環(huán)境中分離獲得的革蘭氏陽性菌,屬于Actinobacteria,可分泌大量的活性酶,能夠充分利用有機(jī)化合物作為能源和碳源,對石油烴、有機(jī)腈和霉菌毒等具有降解 作用[38],且具有降解白酒釀造廢水的功能[39]。華茍 根等[40]等發(fā)現(xiàn)Rhodococcus屬的fascians可降解檸檬苦,增加苦味果汁的香氣。該菌屬在傳統(tǒng)釀造堆積發(fā)酵酒醅中鮮見報(bào)道,在白酒中的功能還有待進(jìn)一步研究。上述結(jié)論表明,在機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵過程其核心菌群結(jié)構(gòu)相對性穩(wěn)定程度高,對堆積發(fā)酵整體菌群結(jié)構(gòu)的變化調(diào)控功能明顯,這也是醬香型白酒釀造過程需要堆積發(fā)酵的必要,為下一步窖池發(fā)酵的微生物多性和穩(wěn)定的菌群結(jié)構(gòu)研究提供參考依據(jù),實(shí)現(xiàn)高產(chǎn)和優(yōu)質(zhì)的前提條件。

        2.3 核心微生物的相互作用

        圖 5 酒醅樣品中的核心細(xì)菌群落相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)圖(屬水平)Fig. 5 Network of core bacterial community in fermented grain samples at genus level

        為深入挖掘特定環(huán)境中復(fù)雜微生物群落物種之間相關(guān)性,系統(tǒng)認(rèn)識核心微生物菌群之間的相互關(guān)系及其調(diào)控機(jī)制,將12 個(gè)核心細(xì)菌屬進(jìn)行物種相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)分析。如圖5A所示,12 個(gè)核心細(xì)菌屬之間具有極其復(fù)雜的相互生物學(xué)作用,這些復(fù)雜的共生關(guān)系和拮抗關(guān)系形成了穩(wěn)定的微生物群落結(jié)構(gòu),這也是發(fā)酵過程微生物菌群穩(wěn)定性和演替的內(nèi)在調(diào)控動力和機(jī)制。Bacillus、Lactobacillus、Thermoactinomyces、Lentibacillus、Kroppenstedtia、Weissella、Pediococcus和Oceanobacillus屬于Firmicutes,它們之間絕大部分呈現(xiàn)共生關(guān)系 (圖5B)。其中,Bacillus與Thermoactinomyces極顯著正相關(guān)(P<0.01);Kroppenstedtia與Lentibacillus極顯著正相關(guān)(P<0.01)。Pediococcus與Thermoactinomyces顯著正相關(guān)(P<0.05)。Weissella與Thermoactinomyces、Lentibacillus顯著正相關(guān)(P<0.05)。Acinetobacter、Caulobacter和Sphingomonas屬于Proteobacteria,Rhodococcu屬于Actinobacteria,從圖5C可知,該3 個(gè)菌屬和其他9 個(gè)基本都呈現(xiàn)負(fù)相關(guān)。其中,Acinetobacter與Kroppenstedtia顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05);Caulobacter與Thermoactinomyces和Weissella顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05);Thermoactinomyces與Sphingomonas和Pediococcus極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01),與Bacillus顯著負(fù)相關(guān) (P<0.05);Rhodococcus與Weissella極顯著負(fù)相關(guān) (P<0.01)。Caulobacter與Rhodococcus和Sphingomonas極顯著正相關(guān)(P<0.01)。從核心菌屬之間的相關(guān)性結(jié)果表明,在堆積發(fā)酵的菌群多性復(fù)雜體系中,正是因?yàn)楹诵木褐g形成的共生、拮抗等生物學(xué)關(guān)系,才構(gòu)成了復(fù)雜體系中的協(xié)同共生關(guān)系,維持整個(gè)發(fā)酵體系的正常、穩(wěn)態(tài)發(fā)展,推進(jìn)釀造進(jìn)程沿襲乙醇發(fā)酵和風(fēng)味富集方向發(fā)展。

        2.4 環(huán)境因子對核心細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)的影響

        圖 6 環(huán)境因子對核心細(xì)菌群落的影響Fig. 6 Effects of environmental factors on core bacterial communities

        圖 7 核心細(xì)菌群落與環(huán)境因子的相關(guān)性HeatmapFig. 7 Heatmap for the correlation between core bacterial communities and environmental factors

        核心微生物受環(huán)境因子影響也較大,如圖7 所示,Bacillus、Thermoactinomyces、Pediococcus和Weissella均與淀粉含量顯著正相關(guān)(R分別為0.929、1、0.786、0.786),且Bacillus與淀粉含量極顯著正相關(guān) (P<0.01),Thermoactinomyces與淀粉含量高度顯著正相關(guān)(P<0.001)。這主要因?yàn)锽acillus能產(chǎn)生蛋白酶與淀粉酶等水解酶類,水解原料形成豐富的發(fā)酵前體物質(zhì)[4],而Thermoactinomyces具有糖化力、液化力和較高的蛋白質(zhì)分解力,可降解釀酒原料中的淀粉、蛋白等生成香味物質(zhì)[34]。Caulobacter與淀粉含量顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05,R=0.821)、Sphingomonas與淀粉含量極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01,R=0.929),因?yàn)镾phingomonas降解芳香類化合物;Caulobacter可能來源于機(jī)械設(shè)備或環(huán)境。還原糖含量對核心微生物沒有影響。Caulobacter和Sphingomonas與水分顯著正相關(guān)(R分別為0.857、0.964),其中Sphingomonas高度正相關(guān) (P<0.001),而Bacillus、Thermoactinomyces、Pediococcus與水分顯著負(fù)相關(guān)(R分別為0.857、0.964、0.893),且Thermoactinomyces和Pediococcus極顯著和高度負(fù)相關(guān)(P <0.0 1,P <0.0 0 1)。Sphingomonas與酸度顯著正相關(guān)(P<0.05,R=0.857),而Bacillus、Thermoactinomyces、Pediococcus與酸度顯著負(fù)相關(guān)(R分別為0.857、0.857、0.929),且Pediococcus極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01),這說明酸度高、水分大會抑制大部分微生物的生長,不利于發(fā)酵的進(jìn)行,因在生產(chǎn)上要控制Sphingomonas的生長。上述結(jié)果表明,在機(jī)械化釀造堆積發(fā)酵過程,環(huán)境因子水分、淀粉含量和酸度與核心細(xì)菌菌群中的菌屬之間具有密切的相關(guān)性,表明堆積發(fā)酵過程水分、淀粉含量和酸度對微生物生長具有緊密的調(diào)控作用,共同形成推動發(fā)酵過程的微生物菌群結(jié)構(gòu),促進(jìn)釀造發(fā)酵的正常進(jìn)行。

        3 結(jié) 論

        本研究利用高通量測序及數(shù)理分析方法系統(tǒng)性研究醬香型白酒機(jī)械化釀造不同輪次堆積發(fā)酵酒醅中的細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)特征,7 個(gè)輪次中共檢測出14 個(gè)門,456 個(gè)屬,優(yōu)勢菌門為Proteobacteria、Actinobacteria和Firmicutes;在屬水平上,不同輪次堆積發(fā)酵酒醅中的細(xì)菌菌群在數(shù)量及結(jié)構(gòu)分布上多性特征明顯,且主要核心菌群種類基本一致。根據(jù)各菌群豐度將12 種菌群定義為醬香白酒機(jī)械化釀造的核心細(xì)菌屬,分別是Acinetobacter、Bacillus、Caulobacter、Kroppenstedtia、Lactobacillus、Lentibacillus、Oceanobacillus、Pediococcus、Rhodococcus、Sphingomonas、Thermoactinomyces和Weissella。核心微生物菌群之間的物種相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)分析結(jié)果表明,Bacillus、Lactobacillus和Sphingomonas在醬香型白酒機(jī)械化釀造各輪次發(fā)酵過程堆積發(fā)酵核心微生物菌群中具有重要的生物學(xué)調(diào)控作用;Caulobacter與大部分核心微生物存在拮抗作用,Oceanobacillus與大部分核心菌屬屬于共生關(guān)系。堆積發(fā)酵過程的環(huán)境因子中,水分、酸度、淀粉含量對微生物群落結(jié)構(gòu)影響較大,產(chǎn)生了重要的調(diào)控作用,其中Bacillus、Thermoactinomyces、Pediococcus與淀粉含量顯著正相關(guān),與水分、酸度顯著負(fù)相關(guān);Caulobacter、Sphingomonas與淀粉含量顯著負(fù)相關(guān),與水分含量顯著正相關(guān),Sphingomonas還與酒醅酸度顯著正相關(guān)。本研究為推進(jìn)醬香型白酒機(jī)械化釀造發(fā)展提供了基礎(chǔ)理論和學(xué)科依據(jù)。

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