梁元昊 徐文麗 胡瑞雪 劉玉峰
(1.遼寧大學(xué)藥學(xué)院, 遼寧沈陽110036; 2.遼寧省天然產(chǎn)物制藥工程技術(shù)研究中心, 遼寧沈陽110036)
從天然產(chǎn)物(包括瓜果蔬菜、酒渣醬料) 中分離制備活性有效成分并將用于疾病治療,正受到越來越多人的重視,但上述成分種類過多,故對其提取分析是一個(gè)非常復(fù)雜的過程[1?2]。天然產(chǎn)物的傳統(tǒng)分離方法存在純度低、分離不徹底、樣品變性等問題,從而阻礙了對有效化學(xué)成分性質(zhì)的研究[3],故如何對其進(jìn)行分離,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)資源深度利用,得到高產(chǎn)率、高純度活性物質(zhì)是當(dāng)前重點(diǎn)。
高速逆流色譜(HSCCC) 是由美國國立衛(wèi)生研究院Ito博士在20 世紀(jì)80 年代最先研制一種獨(dú)特的液?液分配色譜法,它將分析物分配成2 種互不相溶的液體,被分離組分在該溶劑系統(tǒng)中具有不同的溶解度,進(jìn)而產(chǎn)生分配系數(shù)差,使目標(biāo)化合物能依次被流動(dòng)相洗出,從而實(shí)現(xiàn)組分分離,已廣泛地應(yīng)用于創(chuàng)新藥物、植物提取、保健品、天然產(chǎn)物、化妝品等行業(yè)中[4?5]。本文對HSCCC 在天然產(chǎn)物活性小分子分離、多肽和蛋白質(zhì)等生物大分子分離、手性分離方面進(jìn)行概述,以期為分離純化高產(chǎn)率、高純度有效化學(xué)成分提供一種新的分析方法與思路。
1.1 優(yōu)缺點(diǎn) HSCCC 不需要固定載體作為固定相,可大容量負(fù)載,具有高標(biāo)本負(fù)載能力和目標(biāo)分析物的高回收率[6];與柱色譜法、HPLC 制備方法相比,它進(jìn)一步放大了分離、制備過程,避免了常規(guī)分離方法可能導(dǎo)致在分離、純化階段由于不可逆的吸附而損失活性成分或分解的問題;能輕松有效地分離具有相似骨架和極性的組分[7]。但該方法在溶劑體系的選擇和優(yōu)化方面,尚無更充分的理論依據(jù),需要根據(jù)主觀經(jīng)驗(yàn)進(jìn)行多次實(shí)驗(yàn),進(jìn)而篩選出較佳的溶劑系統(tǒng),有一定的隨機(jī)性和繁瑣性;分離效果易受到兩相密度差[8]、溫度、體積流量、轉(zhuǎn)速等因素的影響[9];消耗溶劑過多,一次分離時(shí)間過長(以小時(shí)計(jì))[10];制備分離量還不能達(dá)到公斤級的分離純化[11],故仍需要進(jìn)一步改進(jìn)與完善。
1.2 溶劑體系選擇 在使用HSCCC 分離天然產(chǎn)物活性成分時(shí),最大的問題是如何選擇一個(gè)正確的溶劑系統(tǒng),對其篩選可占總分析時(shí)間的90%[12]。HSCCC 兩相溶劑體系較穩(wěn)定,溶劑系統(tǒng)分層時(shí)間主要分成3 類,疏水性溶劑體系通常為5~16 s,親水性溶劑體系一般為38~59 s,中性溶劑體系為19~29 s[13],一般條件下,溶劑系統(tǒng)不會(huì)引起樣品的分解、變性,而且其溶解度較高,故目標(biāo)化合物在兩相溶劑系統(tǒng)中分配系數(shù)的選擇范圍要恰當(dāng),一般在0.5~2之間[14]。由此確定,HSCCC 溶劑系統(tǒng)[15]在強(qiáng)極性溶劑體系中常用雙水相,如正丁醇?水、乙酸乙酯?水;中等極性溶劑體系中主要是氯仿?水、乙酸乙酯?水,可在此基礎(chǔ)上添加正丙醇、甲醇、異丙醇、正己烷、正丁醇等來調(diào)配比例;對于弱極性溶劑體系,可采用正己烷?水、石油醚?水、三氯甲烷?水基本體系,同時(shí)添加乙酸乙酯、甲醇進(jìn)行調(diào)配。此外,無水溶劑體系也是理想的選擇,由于其不含水,故回收溶劑較方便,而且樣品后處理更便捷,節(jié)約了成本,目前應(yīng)用最廣泛的是正己烷?乙腈體系,采用乙酸乙酯、二氯甲烷或三氯甲烷對其進(jìn)行調(diào)配[16]。
2.1 天然產(chǎn)物活性小分子 天然產(chǎn)物主要化學(xué)成分包括生物堿、苷類、黃酮、蒽醌、甾體、萜類、香豆素、揮發(fā)油、酚類、植物色素類、糖類、脂類等[17],并且不同種類化合物的藥理作用也有所差異[5]。
2.1.1 多酚 多酚是食品中最豐富的抗氧化劑,富含該成分的天然產(chǎn)物或飲料都與預(yù)防某些慢性疾?。ㄈ绨┌Y和心血管疾?。?有關(guān)[18]。HSCCC 是一種全液相色譜系統(tǒng),它在一定程度上消除了多酚的分離過程中的不可逆吸附和尾影形成[19],主要采用2 種溶劑系統(tǒng),當(dāng)多酚分子量較小時(shí),主要采用中等極性溶劑,如氯仿?甲醇?水、正己烷?水?甲醇?乙酸乙酯等[20];當(dāng)其分子量較大時(shí),主要采用正丁醇?水等極性較強(qiáng)的溶劑體系[21],具體應(yīng)用時(shí)可適當(dāng)對溶劑進(jìn)行調(diào)整。
Peng 等[22]在最優(yōu)條件下采用正己烷?乙酸乙酯?水(3 ∶17 ∶20)、乙酸乙酯?甲醇?水(50 ∶1 ∶50) 溶劑體系,通過兩步分離成功地從柿子中得到出7 種主要多酚,純度均高于95.0%,并且發(fā)現(xiàn)HSCCC 在制備二聚原花青素方面具有明顯的優(yōu)勢。Kohler 等[23]將葡萄籽提取物黃烷?3?醇間苯三酚加合物在乙酸乙酯?甲醇?水(1 ∶5 ∶0.1 ∶5、1.5 ∶10 ∶1.5 ∶10) 體系下直接用HSCCC 全液相色譜技術(shù)進(jìn)行分離,發(fā)現(xiàn)所得餾分中含有純度極高的化合物,實(shí)現(xiàn)了對二聚體到四聚體原花青素的分離。此外,HSCCC 分離低聚原花青素時(shí)已證實(shí)可應(yīng)用于半制備規(guī)模上,在某些情況下可采用制備型高效液相色譜法進(jìn)行最終純化。Jiang 等[24]建立了一種簡便、快速、峰容量顯著提高的離線二維HSCCC,分別以正己烷?乙酸乙酯?甲醇?水(3 ∶5 ∶3 ∶5)、乙酸乙酯?正丁醇?水(7 ∶3 ∶10) 為第1、第2 維兩相溶劑體系,成功從苦蕎粗提物中分離出槲皮素3?O?蘆丁苷、蘆丁、山柰酚?3?蘆丁苷、槲皮素、山柰酚,純度均在96%以上,可為苦蕎新制劑、功能性產(chǎn)品開發(fā)及進(jìn)一步生物測定提供理論依據(jù)。Wen 等[25]采用HPLC?HSCCC 聯(lián)用技術(shù),以氯仿?甲醇?水?正丁醇(4 ∶3 ∶2 ∶1.5) 為溶劑從山楂葉中分離得到4 種黃酮,純度均在98%以上。
2.1.2 生物堿 Sutherland 等[26]報(bào)道了通過HSCCC 分離純化天然產(chǎn)物有效成分的研究概況,涵蓋了來自56 個(gè)科、108 種植物,從中分離了354 個(gè)化合物,其中關(guān)于生物堿的文獻(xiàn)有56 篇,占化合物總數(shù)的16%。Guo 等[27]將HSCCC 與HPLC?DAD?QTOF?MS/MS 分析相結(jié)合,選擇石油醚?乙酸乙酯?甲醇?水(8 ∶4 ∶7 ∶5) 作為溶劑體系來分離厚樸粗提取物,并將2 種主要木脂素、厚樸酚剔除后,對生物堿等微量成分進(jìn)行富集,再通過保留時(shí)間、UV、準(zhǔn)分子離子、裂解途徑結(jié)合比對標(biāo)準(zhǔn)品或已知化合物,初步確定了其結(jié)構(gòu)。Zou 等[28]采用重結(jié)晶法預(yù)處理蘆薈乙醇提取物,以正己烷?乙酸乙酯?甲醇?水(5 ∶2 ∶5 ∶3) 為溶劑一步合成了3 種喹諾酮類生物堿{1?甲基?2 [(6Z,9Z) ?十五碳二烯基] ?4 (1H) ?喹諾酮、二氫玫瑰堿、1?甲基?2?十五烷基?4 (1H) ?喹諾酮},然后以5 ∶3.5 ∶8.75 ∶8.25 比例從各亞組分中又分離出3 種喹諾酮類生物堿[1?甲基?2?十一烷基喹啉?4 (1H) ?酮、(Z) ?1?甲基?2? (十三碳?5?烯?1?基) 喹啉?4 (1H) ?酮、1?甲基?2?壬基喹啉?4 (1H) ?酮]。劉德明等[29]采用HSCCC 對正己烷、石油醚、乙酸乙酯、95%乙醇、甲醇、丙酮、水等溶劑進(jìn)行搭配組合以篩選溶劑體系,發(fā)現(xiàn)石油醚?乙酸乙酯?甲醇?水(5 ∶1 ∶2 ∶4) 分離生物堿類的效果最佳,并從黃柏粗提物中分離得到小檗堿、黃柏堿、巴馬丁和白瓜蔞堿,純度均可達(dá)95%以上。
2.1.3 皂苷 由于苷分子中所連糖基較多,極性較大,以固體為載體的傳統(tǒng)方法對其分離時(shí)易造成死吸附,HSCCC技術(shù)被證明是分離此類物質(zhì)的理想方法,對降低分離提取成本、提高產(chǎn)品質(zhì)量有重要的意義[30]。在分離極性較小的單糖苷時(shí),主要采用醋酸乙酯?甲醇?水、氯仿?甲醇?水、正己烷?乙酸乙酯?甲醇?水溶劑體系,并可通過調(diào)節(jié)其比例來進(jìn)一步分離不同極性者[31];對于極性較大的雙糖苷或多糖苷,大多采用醋酸乙酯?正丁醇?水,通過調(diào)節(jié)正丁醇用量來進(jìn)一步分離不同極性者[32],但這并不是絕對的,一般是根據(jù)前人經(jīng)驗(yàn)來進(jìn)一步巧妙地縮短分離時(shí)間和步驟。
Du 等[33]發(fā)現(xiàn),HSCCC 是一種在實(shí)驗(yàn)室規(guī)模上分離三萜糖苷的有效方法,可用于制備苦瓜中純?nèi)圃碥眨紫韧ㄟ^硅膠柱層析法從粗提物中得到2 種三萜皂苷,進(jìn)而使用不同比例甲基叔丁基醚?正丁醇?甲醇?水溶劑體系作進(jìn)一步分離純化。Ma 等[34]以正丁醇?乙酸? 6 mmol/L 醋酸銨水溶液(4 ∶1 ∶5) 為溶劑體系,采用HSCCC?ELSD 技術(shù),成功地從大蒜粗提液中一步分離純化出4 種甾體皂苷,從300 mg 粗品中分離得到4 個(gè)化合物,純度可達(dá)93.0%以上,這也是上述聯(lián)用技術(shù)首次用于分離和純化該類成分。
2.1.4 其他 HSCCC 已被用于純化足量的抗微生物化合物,用于測定天然抗菌化合物的抑制譜和作用方式[35]。Liang 等[36]將HSCCC 作為羥基不飽和脂肪酸的純化方法,可獲得足夠量以研究對菌絲體真菌、分生孢子、酵母的抑制譜。Wu 等[37]將HSCCC 與超臨界萃取相結(jié)合,以正己烷?乙酸乙酯?甲醇?水(7 ∶3 ∶8 ∶2) 為溶劑體系,成功提取分離了山蒼子中對甲氧桂皮酸乙酯和肉桂酸乙酯,兩者純度分別為98.4%和98.1%,有效解決了由于常規(guī)分離技術(shù)中精力、溶劑消耗大,樣品、對照品損失多的問題。Wei等[38]引入HSCCC 來純化番茄紅素,以正己烷?二氯甲烷?乙腈(10 ∶3.5 ∶6.5) 為非水溶劑體系,得到了純度高于95%的該成分。Zou 等[39]建立了一種基于三相溶劑體系液?液萃取和HSCCC 來快速富集蟾蜍肉中微量丁二烯內(nèi)酯4 個(gè)差向異構(gòu)體的方法,首先選擇響應(yīng)面法優(yōu)化后的正己烷?乙酸甲酯?乙腈?水(3 ∶6 ∶5 ∶5) 溶劑體系對粗提液進(jìn)行液?液萃取,再用氯仿?甲醇?水(4 ∶2 ∶2) 溶劑體系進(jìn)行富集,有助于蟾蜍肉的定量分析和安全性評價(jià)。
2.2 多肽、蛋白質(zhì)等生物大分子 蛋白質(zhì)作為天然產(chǎn)物中的第一大營養(yǎng)素,對生物體內(nèi)的生命活動(dòng)起著重要作用,基于此,由其降解得到的生物活性多肽也引起了人們廣泛關(guān)注。HSCCC 主要采用雙水相溶劑系統(tǒng)和含有丁醇的體系來用于蛋白質(zhì)、多肽的前處理,對復(fù)雜樣品粗分時(shí)再通過其他分離技術(shù)來得到高純度樣品[40],但由于溶劑體系比較單一,難以達(dá)到完全分離的條件,所得成分的種類也有限,導(dǎo)致該技術(shù)局限于簡單二肽、中極性或弱極性的肽類衍生物的分離[41]。因此,基于HSCCC 分離蛋白質(zhì)和多肽的分析主要集中于其標(biāo)準(zhǔn)品分離,以便于研究儀器分離效率與機(jī)理,從而進(jìn)一步實(shí)現(xiàn)中試放大[42]。
Li 等[43]使用HSCCC 結(jié)合反膠束溶劑系統(tǒng),開發(fā)了一種從苦瓜果實(shí)中分離蛋白質(zhì)的新方法,這也是首次在苦瓜中發(fā)現(xiàn)該成分。另外,HSCCC 在分離蛋白質(zhì)等大分子時(shí),由于有機(jī)溶劑會(huì)使生物大分子及細(xì)胞發(fā)生不可逆的結(jié)構(gòu)和性質(zhì)改變,故通常選用雙水相體系[44]。郅文波等[44]采用多分離柱高速逆流色譜研究聚乙二醇1000?磷酸鹽雙水相體系的固定相保留率,以及該體系對蛋白質(zhì)混合物和雞蛋清的分離效果,發(fā)現(xiàn)pH 為9.2 時(shí)細(xì)胞色素C、溶菌酶、血紅蛋白的分配系數(shù)差異最大,在體積流量10 mL/min、轉(zhuǎn)速850 r/min 的條件下成功地分離了雞蛋清,得到了卵白蛋白、溶菌酶、卵轉(zhuǎn)鐵蛋白。
2.3 天然產(chǎn)物手性分子 在分離天然產(chǎn)物手性分子中的單體化合物時(shí),由于異構(gòu)體分子性質(zhì)不同,通常只有一種異構(gòu)體具有較強(qiáng)生物活性,而另一種基本無活性或活性較弱,或具有不同藥理活性甚至毒性[45],如何從中分離得到單一的異構(gòu)體是急待解決的問題。隨著高效手性添加劑的發(fā)現(xiàn)和逆流色譜儀器的進(jìn)一步完善,近年來HSCCC 在相關(guān)方面已經(jīng)得到了成功應(yīng)用。通過HSCCC 分離羧酸、糖苷、萜類生物堿等異構(gòu)體時(shí),主要使用乙酸乙酯?水、正丁醇?水等強(qiáng)極性體系;分離多酚、苯丙類、苷類、芳香酸等異構(gòu)體時(shí),大多采用甲基叔丁基醚?水、正己烷?乙酸乙酯?甲醇?水等中等極性體系。此外,還可采用逆流色譜閉路循環(huán)、多重雙向洗脫模式等多樣化洗脫模式適當(dāng)提高異構(gòu)體分子間的色譜分離度[46?47]。
2.3.1 立體異構(gòu) 兒茶素、表兒茶素互為構(gòu)象異構(gòu)體,均屬于黃烷醇多酚類化合物,但對兩者大量制備分離方法的研究報(bào)道較少。成超等[48]采用HSCCC 實(shí)現(xiàn)了2 種成分的完全分離,在120 min 內(nèi)以正己烷?乙酸乙酯?水(1 ∶20 ∶20) 為溶劑系統(tǒng),得到了兩者純度分別在99%、95%以上,同時(shí)在柱體積放大約6 倍的情況下可獲得上樣量放大50 倍的理想制備分離效果,這正是該技術(shù)的優(yōu)勢所在[48]。段文娟等[49]采用乙酸乙酯?正丁醇?甲醇?水(5 ∶0.7 ∶1 ∶5)、乙酸乙酯?正丁醇?甲醇?水(5 ∶0.5 ∶1 ∶5) 作為溶劑體系,從連翹果實(shí)中分離制備了2 對木脂素類立體異構(gòu),即(+) 松脂醇單甲醚?β?D?葡萄糖苷和連翹苷、(+) 松脂醇?β?D?葡萄糖苷和(+) 表松脂醇?4′?O?β?D?葡萄糖苷。
2.3.2 構(gòu)造異構(gòu) 在HSCCC 一步法分離過程中,有時(shí)很難找到理想的高純度溶劑體系,制備高效液相色譜法(prep?HPLC) 常作為額外的分離步驟來實(shí)現(xiàn)HSCCC 和HPLC 之間的互補(bǔ)作用[50]。在大黃蒽醌糖苷傳統(tǒng)的分離過程中,通過二氧化硅、凝膠色譜法分離大黃酚1?O?β?D?葡萄糖苷、大黃酚8?O?β?D葡萄糖苷2 種異構(gòu)體時(shí)存在很大的困難,Chen 等[51]通過prep?HPLC 結(jié)合HSCCC 成功分離了兩者。孫文宇等[46]開發(fā)了大孔樹脂?洗脫?推擠逆流色譜法,以正丁醇?乙酸乙酯?水(2 ∶3 ∶5) 為溶劑體系從30%白芍乙醇提取物中分離得到了芍藥苷和芍藥內(nèi)酯苷,再采用洗脫?推擠逆流色譜和普通逆流色譜,以正己烷?乙酸乙酯?甲醇?水(0.5 ∶5 ∶1 ∶5) 為溶劑體系,從其95% 提取物中分離得到苯甲酰芍藥苷、6′?O?苯甲酰芍藥內(nèi)酯苷,純度均高于95%。
國內(nèi)外關(guān)于從天然產(chǎn)物中分離純化單體化合物的工藝優(yōu)化過程報(bào)道較少,基本上仍停留在溶劑提取、常壓柱色譜水平,傳統(tǒng)分離方法對含有量低、結(jié)構(gòu)和性質(zhì)相似、不能結(jié)晶組分的分離提純常受到限制,存在固態(tài)載體吸附損耗、樣品變性、回收率低等問題。HSCCC 可在短時(shí)間內(nèi)實(shí)現(xiàn)高效分離和分析,具有無固體載體、避免分離樣品與固體載體表面產(chǎn)生化學(xué)反應(yīng)而變性、不可逆吸附等優(yōu)點(diǎn),而且對樣品預(yù)處理要求較低,適用于粗提取物分離,從而提供了更便捷、更有效、產(chǎn)率和純度更高的提取方法,極大地減少了昂貴標(biāo)準(zhǔn)品購買成本及樣品制備富集負(fù)擔(dān)。但該技術(shù)在溶劑體系的選擇和優(yōu)化方面尚無更充分的理論依據(jù),只能根據(jù)經(jīng)驗(yàn)來減少實(shí)驗(yàn)次數(shù),進(jìn)而篩選出較佳的溶劑系統(tǒng),故仍需要繼續(xù)探索如何能在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步創(chuàng)新,使其逐漸發(fā)展成一種應(yīng)用更廣的色譜技術(shù)。