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        赤霞珠葡萄皮渣酚類物質(zhì)提取及抗氧化性研究

        2019-12-26 06:14:26毛建利李艷
        食品研究與開發(fā) 2019年1期
        關(guān)鍵詞:赤霞珠葡萄籽酚類

        毛建利,李艷,2,*

        (1.河北科技大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,河北石家莊050018;2.河北省發(fā)酵工程技術(shù)研究中心,河北石家莊050018)

        我國2017年葡萄酒產(chǎn)量100.1萬噸,釀酒葡萄重量的70%可轉(zhuǎn)化為葡萄酒,其余為廢棄物,葡萄梗約5%~8%;葡萄皮和葡萄籽分別占果實部分的5%~7%和10%~15%[1-2],由此可見,葡萄酒生產(chǎn)會產(chǎn)生大量廢棄物,如處理不當(dāng),會造成環(huán)境污染[3]。廢棄物葡萄籽、葡萄皮和葡萄梗中含有大量有益物質(zhì),梁傳紅,鄭亞蕾等[4-5]通過對葡萄籽成分及功能研究,證明其含有大量多酚類和脂肪酸類物質(zhì),包括兒茶酸等酚酸類,黃烷酮類、花色苷類[6]、黃酮醇類等物質(zhì)及亞油酸等不飽和脂肪酸。多酚類物質(zhì)有良好的體外抗氧化能力。陶姝穎等[7]的研究顯示葡萄皮渣中富含膳食纖維、多酚類和天然色素等植物營養(yǎng)成分,是優(yōu)質(zhì)的抗氧化膳食纖維資源。經(jīng)葡萄酒發(fā)酵產(chǎn)生的葡萄皮渣中同樣存在著多種有益成分[8],蘊含著巨大的經(jīng)濟效益,其中含有花色苷[9]、白藜蘆醇、齊墩果酸等多種功能性成分,具有良好的體外抗氧化性能[10]。本研究針對我國大面積種植的釀酒葡萄赤霞珠,釀造干紅葡萄酒后的廢棄皮渣提取酚類物質(zhì),并研究提取液的抗氧化性,目的是提高產(chǎn)業(yè)的綜合加工能力和原料利用率,改善環(huán)境,實現(xiàn)變廢為寶,為民造福。

        1 材料與方法

        1.1 材料、試劑

        2015年和2016年份,昌黎產(chǎn)區(qū)赤霞珠葡萄,采用傳統(tǒng)工藝釀造葡萄酒后收集皮渣,經(jīng)55℃低溫烘干,分離葡萄皮和葡萄籽,分別磨粉,過40目篩,備用。

        過硫酸鉀、抗壞血酸、冰乙酸、無水碳酸鈉、乙酸鈉(均為分析純):天津市永大化學(xué)試劑有限公司;DPPH、ABTS標(biāo)品(均為分析純):上海寶曼生物科技有限公司;鐵氰化鉀、磷酸氫二鈉、硫酸鋰(均為分析純):天津市博迪化工有限公司;磷酸二氫鈉分析純:天津市百世化工有限公司;95%乙醇分析純:石家莊市新宇三陽實業(yè)有限公司;三氯乙酸、沒食子酸(均為分析純):天津市大茂化學(xué)試劑廠;氯化鐵、水楊酸(均為分析純):天津市標(biāo)準(zhǔn)科技有限公司;硫酸亞鐵(分析純):天津市四通化工廠;30%過氧化氫:天津政成化學(xué)制品有限公司;濃鹽酸:昆山金城試劑有限公司;氯化鉀(分析純):天津市晶科化工有限公司;乙酸(分析純):天津市東麗區(qū)天大化學(xué)試劑廠;無酸鈉(分析純):天津市津東天正精細化學(xué)試劑廠;鉬酸鈉(分析純):天津市化學(xué)試劑西廠;濃硫酸:珠海市華成達化工有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋:金壇市杰瑞爾電器有限公司;AR1140分析天平:深圳市時代之峰科技有限公司;DELTA 320pH數(shù)字酸度計:梅普勒-托利多儀器有限公司;JJ1000電子天平:常熟市雙杰測試儀器廠;SHZ-HI真空泵:上海知信實驗儀器技術(shù)有限公司;電子萬用爐、101-0AB電熱鼓風(fēng)干燥箱、SX-2.5-10馬弗爐:天津市泰斯特儀器有限公司;SP-756紫外可見分光光度計:上海光譜儀器有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 酚類物質(zhì)成分測定

        花色苷:pH值示差法[11]。稱取1.50g樣品溶于20mL 0.5%HCl酸化的60%乙醇溶液,50℃水浴3 h,離心去上清液。再加入15 mL酸化乙醇,50℃水浴3 h離心去上清液,重復(fù)3次,合并3次上清液定容至50 mL測定花色苷含量,求出1.50 g樣品中花色苷的質(zhì)量分數(shù)即為樣品中花色苷的提取得率。

        單寧(以單寧酸計):福林-丹尼斯法[12]。稱取10.00 g樣品,于250 mL容量瓶中,加水50 mL放入60℃烘箱中過夜。次日將清液濾至250 mL容量瓶中,殘渣加入30 mL熱水,80℃水浴20 min。清液濾入容量瓶,再加30 mL熱水,80℃水浴20 min重復(fù)3到4次直至提取液與10 g/L FeCl3溶液不生成藍色產(chǎn)物為止。稀釋至刻度,離心測定樣品提取液對應(yīng)的單寧吸光度,計算單寧含量,求出10.00 g樣品中單寧的質(zhì)量分數(shù)即為樣品中單寧的提取得率。

        總酚(以沒食子酸計):福林-肖卡法[13]。稱取1 g樣品,按料液比 1∶10(g/mL)加入 50%乙醇溶解,60 ℃,水浴1 h,冷卻過濾后取3 mL定容至25 mL,測定樣品提取液對應(yīng)的總酚的吸光度,計算總酚含量,求出1.00 g樣品中總酚的質(zhì)量分數(shù)即為樣品中總酚的提取得率。

        1.3.2 葡萄皮和葡萄籽中酚類物質(zhì)提取

        1.3.2.1 單因素試驗

        分別以提取溫度、提取時間、乙醇濃度和料液比為變化因素,以總酚提取率為評價指標(biāo)進行單因素試驗。溫度(℃)設(shè)定為:30、40、50、60、70,固定條件為料液比 1 ∶10(g/mL)、60%乙醇提取 60 min;提取時間(min)設(shè)定為:20、40、60、80、100,固定料液比 1 ∶10(g/mL)、60%乙醇、提取溫度60℃;乙醇濃度設(shè)定為:30%、40%、50%、60%、70%,固定料液比 1∶10(g/mL)、溫度60 ℃提取 60 min;料液比(g/mL)變量值為:1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25,固定 50%乙醇,60 ℃提取 60 min。

        1.3.2.2 正交試驗優(yōu)化酚類物質(zhì)提取條件

        在單因素試驗基礎(chǔ)上,采用L9(34)正交試驗優(yōu)化酚類物質(zhì)提取的條件,因素水平表見表1。

        表1 正交試驗因素水平表Table 1 Orthogonal experimental factor level table

        1.3.3 葡萄皮渣中酚類提取物的體外抗氧化性能測定

        1.3.3.1 ABTS+自由基清除能力測定

        樣品ABTS+自由基的清除能力采用分光光度法[14]:

        式中:A0為不加樣品時的吸光度;A為加入不同量樣品時的吸光度。

        取1 mL提取液,用提取溶劑稀釋成VC同等濃度。

        VC用去離子水稀釋成終濃度(μg/mL)為 80、90、100、110、120、140、160 的溶液。

        取4 mL ABTS工作液,加入100 μL待測液,充分混勻,黑暗環(huán)境下反應(yīng)6 min后于734nm測定吸光值。

        1.3.3.2 DPPH自由基清除能力的測定

        DPPH的測定方法采用分光光度法[15]:

        式中:A空白為不加樣品時的吸光度;A樣品為加入不同量樣品時的吸光度。

        VC用去離子水稀釋成終濃度(μg/mL)為:10、20、30、40、50、60、70 的溶液。

        分別吸取2mL樣品和VC溶液于試管中,加入2mL DPPH溶液,使總體積為4 mL,每個樣品做3個平行對照,搖勻后避光,室溫放置30 min,517 nm測定吸光值,記為A樣品。用2 mL提取溶劑代替樣品溶液,吸光值記為A空白。

        1.3.3.3 羥自由基清除能力的測定羥自由基清除能力的測定采用分光光度法[16]:

        式中:A1為加入樣品和羥基母體溶液時的吸光度;A2為不加羥基母體溶液時的吸光度;A0為只加羥基母體溶液時的吸光度。

        取1 mL提取液,用去離子水稀釋成VC同等濃度作為待測液。

        VC用去離子水稀釋成終濃度(μg/mL)為:50、100、150、200、250、300 的溶液。

        取3 mL羥基母體溶液,分別加入1 mL不同濃度的待測液,充分混勻,37℃恒溫水浴15 min,530 nm測定各組的吸光值A(chǔ)1(分光光度計用去離子水校零),將羥基母體溶液用等同的提取溶劑代替,其他操作相同記為A2,將樣品溶液用等同的提取溶劑代替其它操作相同記為A0。

        1.3.3.4 鐵離子還原力測定

        鐵離子還原能力的測定采用分光光度法[17]:

        式中:A0我加入樣品和試劑時的吸光度;A1為不加樣品時的吸光度。取1 mL提取液,用提取溶劑稀釋成VC同等濃度。VC用去離子水稀釋成終濃度(μg/mL)為:10、20、30、40、50、60、80、120、140 的溶液。

        吸取2.5 mL磷酸鹽緩沖溶液、2.5 mL鐵氰化鉀溶液、及不同濃度的2.5 mL樣品溶液,充分混勻。50℃水浴20 min后快速冷卻,加2.5 mL10%三氯乙酸混勻,3 000 r/min離心10 min,取上清液2.5 mL,加2.5 mL 0.1%FeCl3溶液,反應(yīng)10 min,在700 nm測定吸光值(A0),將樣品用同等體積的提取溶劑替代,其他方法相同,測定吸光度A1。

        1.3.4 數(shù)據(jù)處理

        本研究通過 Excel 2003,Origin8.5,SPSS17.0 進行試驗數(shù)據(jù)的匯總與統(tǒng)計分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 葡萄皮與葡萄籽中酚類物質(zhì)提取和測定結(jié)果

        赤霞珠葡萄酒廢棄皮渣經(jīng)預(yù)處理得到的粉狀物,在相同提取條件下,料液比1∶10(g/mL)、50%乙醇、60℃、水浴提取60 min,以酚類物質(zhì)提取率為評價指標(biāo),測定結(jié)果見圖1。

        圖1 樣品的酚類物質(zhì)的提取結(jié)果Fig.1 Results of phenolic extraction of samples

        圖1可見,葡萄籽中總酚和單寧提取率均高于葡萄皮,分別達到6.82%和0.79%。說明赤霞珠葡萄籽具有潛在提取酚類物質(zhì)的價值,作為后續(xù)正交試驗優(yōu)化提取酚類物質(zhì),及抗氧化性能測定選定的樣品。由圖1還可看到葡萄皮和葡萄籽中花色苷類物質(zhì)提取率較低,分別為0.10%和0.099%,也有一定的提取價值[18]。說明釀酒過程中對花色苷浸提效果明顯,絕大多數(shù)花色苷類物質(zhì)進入葡萄酒中,釀酒工藝條件合適。

        2.2 葡萄籽中酚類物質(zhì)提取單因素實驗

        分別進行提取溫度、提取時間、乙醇濃度和料液比對酚類物質(zhì)提取率的影響進行單因素試驗,結(jié)果見圖2。

        圖2 赤霞珠葡萄籽中總酚提取條件的單因素試驗Fig.2 Single factor experiment of total phenol extraction conditions from Cabernet Sauvignon grape seed

        由圖2可知,分別在提取溫度60℃,提取時間60 min,乙醇濃度 60%,料液比 1∶10(g/mL)時,酚類物質(zhì)提取率達到最高值,并出現(xiàn)拐點。眾所周知,在浸取過程中,溫度影響分子運動的速率,隨著溫度升高,固體中可溶性物質(zhì)分子運動加劇,酚類物質(zhì)滲出、溶解和擴散至溶液中[19],60℃時總酚提取率最高為6.88%,到70℃時降低,溫度過高會破壞酚類物質(zhì)[20]或加速酚類物質(zhì)的氧化分解。在恒定溫度下,提取時間延長會促使物質(zhì)溶出,因此呈現(xiàn)上升趨勢,達到高峰值后下降[21],提取60 min時,總酚提取率最高達8.96%,時間再長導(dǎo)致提取液中總酚成分在較高溫度下被破壞。乙醇可以改變物質(zhì)的溶解性,酸化乙醇更利于酚類物質(zhì)和單寧的溶出,葡萄籽中酚類物質(zhì)有些是醇溶性的,因此隨著乙醇濃度的提高,酚類物質(zhì)提取總量也會提高,在乙醇濃度達60%,總酚提取率最高達8.99%。料液比是指溶液的固液比例,液體量增加溶液變稀,固體物質(zhì)的傳質(zhì)阻力變小,傳質(zhì)推動力提高,但整體提取率下降,從工程學(xué)角度說不合算。減少溶劑用量可降低能耗、提高提取效率。從圖2看,在料液比1∶10(g/mL)附近,總酚提取率最高,達8.51%。

        2.3 正交試驗優(yōu)化赤霞珠葡萄籽中酚類物質(zhì)提取條件

        在單因素試驗基礎(chǔ)上進行正交試驗優(yōu)化赤霞珠葡萄籽中酚類物質(zhì)提取條件,結(jié)果見表2,正交試驗方差分析結(jié)果見表3。

        表2 正交試驗優(yōu)化葡萄籽中酚類物質(zhì)提取條件Table 2 Orthogonal experiments to optimize the extraction conditions of phenols from grape seeds

        由表3可知,各因素的極差大小順序為C>A>B>D,由此可得出,影響赤霞珠葡萄籽中酚類物質(zhì)提取率的4個因素先后順序為:料液比>提取時間>提取溫度>乙醇濃度,最優(yōu)的提取工藝條件為:A2、B3、C3、D2,即提取溫度70℃,乙醇濃度為60%,料液比為1 ∶15(g/mL),提取時間 60 min。由表 3 可知,提取時間、提取溫度、料液比、乙醇濃度,對總酚提取率的影響極顯著。為了考察最優(yōu)條件的再現(xiàn)性,進行了驗證試驗。在正交試驗最優(yōu)條件下,進行驗證和擬合試驗,試驗平行3次求得平均值,總酚的平均提取率10.21%。比正交表中最佳提取率提高0.88%。

        表3 正交試驗方差分析結(jié)果Table 3 Orthogonal test variance analysis results

        2.4 酚類物質(zhì)提取物體外抗氧化性研究

        2.4.1 酚類提取物對ABTS+自由基的清除性能

        以VC為陽性對照,研究赤霞珠葡萄籽酚類提取液對ABTS+自由基的清除率,以VC和提取液濃度為橫坐標(biāo),ABTS+自由基清除率為縱坐標(biāo)作圖,對比效果見圖3。ABTS/ABTS+的氧化還原電位為0.68 V,容易發(fā)生電子轉(zhuǎn)移,生成穩(wěn)定的綠色自由基ABTS+[23]。ABTS溶液在過硫酸鉀的催化下發(fā)生電子轉(zhuǎn)移,生成穩(wěn)定呈現(xiàn)綠色的ABTS+自由基。赤霞珠葡萄籽提取物具有還原性,將ABTS+自由基還原并發(fā)生褪色反應(yīng),褪色的程度與ABTS+自由基得到的電子數(shù)目呈現(xiàn)良好的相關(guān)性,因此通過溶液吸光值的改變就可了解其抗氧化性強弱。

        圖3 赤霞珠葡萄籽酚類提取物對ABTS+自由基的清除性能Fig.3 The scavenging performance of ABTS+free radicals by phenolic extracts of Cabernet Sauvignon grape seed

        由圖3可見,赤霞珠葡萄籽總酚提取液比VC清除ABTS+自由基的能力強,且隨著總酚提取液濃度增加,清除率提高,當(dāng)赤霞珠葡萄籽總酚提取液加入量到100 μg/mL以上時,對ABTS+自由基的清除率能達到100%,由試驗結(jié)果分析可知,赤霞珠葡萄籽總酚提取物對ABTS+自由基的清除效果明顯。

        2.4.2 酚類物質(zhì)提取物對DPPH自由基的清除性能

        DPPH自由基有單電子,在517 nm有強吸收,其醇溶液呈紫色的特性。當(dāng)有自由基清除劑存在時,因與其單電子配對而使其吸收逐漸消失,褪色程度與其接受的電子數(shù)成定量關(guān)系,因而可用分光光度計進行快速定量分析,抗壞血酸等具有遞電子和遞質(zhì)子能力的抗氧化劑對DPPH自由基的清除作用是通過抗氧化劑把電子和質(zhì)子傳遞給DPPH自由基,從而生成穩(wěn)定的分子態(tài)DPPH2的結(jié)果[25]。以VC和提取液濃度為橫坐標(biāo),DPPH自由基清除率為縱坐標(biāo)作圖,對比效果見圖4。

        圖4 赤霞珠葡萄籽酚類提取物對DPPH自由基的清除性能Fig.4 DPPH free radical scavenging performance of phenolic extracts of Cabernet Sauvignon grape seed

        赤霞珠籽總酚提取液的加入量在20 μg/mL時,對DPPH自由基的清除率達到95.00%,隨提取液量濃度增加,清除率增加,當(dāng)提取液的加入量達到30 μg/mL時對DPPH自由基的清除率達到100%。VC溶液對DPPH自由基的清除力明顯低于葡萄籽總酚提取液對DPPH的清除能力。

        2.4.3 酚類物質(zhì)提取物對羥自由基的清除性能

        羥自由基(·OH)系活性氧的一種,它可以通過發(fā)生電子轉(zhuǎn)移,參與奪氫及羥基化等反應(yīng)與生物體內(nèi)多種分子作用,引起機體損傷,酚類物質(zhì)和VC可作為還原劑或自由基清除劑能提供一個氫原子與羥自由基結(jié)合形成穩(wěn)定結(jié)構(gòu)[26],從而改變整個反應(yīng)體系的吸光度,由此計算樣品對羥自由基的清除性能。以VC和提取液濃度為橫坐標(biāo),羥自由基清除率為縱坐標(biāo)作圖,對比效果見圖5。

        圖5 赤霞珠葡萄籽酚類提取物對羥自由基的清除性能Fig.5 The scavenging properties of hydroxyl free radicals of phenolic extracts of Cabernet Sauvignon grape seed

        由圖5可知,提取液對羥自由基的清除能力略高于VC。如VC濃度0.25 mg/mL時,對羥自由基的清除率為54.44%,而同等濃度的赤霞珠籽總酚提取液對羥自由基的清除率為65.12%。隨濃度增加對羥自由基的清除率都明顯上升。

        2.4.4 赤霞珠葡萄籽中酚類物質(zhì)提取物對鐵還原力的測定

        還原力法的原理為:K3Fe(CN)6+樣品→K4Fe(CN)6+樣品氧化物 K4Fe(CN)6+Fe3+→Fe4[Fe(CN)6]3

        在700 nm測定吸光度A,A越大,則樣品的還原力越大。以VC和提取液濃度為橫坐標(biāo),鐵離子的清除率為縱坐標(biāo)作圖,對比效果見圖6。

        圖6 赤霞珠葡萄籽酚類提取物對鐵還原力的測定Fig.6 Determination of iron reducing power of phenolic extracts from Cabernet Sauvignon grape seed

        鐵還原力的測定試驗中,赤霞珠籽總酚提取液加入量在20 μg/mL時對鐵離子的清除率達到77.5%,隨提取液濃度增加,清除率升高。相同濃度的VC溶液對鐵離子的清除率能達到71.82%。由此可知,赤霞珠籽總酚提取液對鐵離子的還原力大于VC。

        3 結(jié)論

        由試驗結(jié)果可知,影響赤霞珠葡萄籽中酚類物質(zhì)提取率的4個因素先后順序為:料液比>提取時間>提取溫度>乙醇濃度,最優(yōu)的提取工藝條件為:提取溫度70℃,乙醇濃度為 60%,料液比為 1∶15(g/mL),提取時間60 min。在最優(yōu)提取條件下得到的總酚的提取率為10.21%。

        以VC為參照測定提取液對ABTS+自由基、DPPH自由基、羥自由基清除力和鐵離子還原力。結(jié)果顯示提取液對自由基清除能力及鐵離子的還原能力均高于VC溶液,對DPPH自由基的清除效果最好,濃度為20 μg/mL的提取液對DPPH自由的清除率可達95%。說明酚類提取液體外抗氧化能力較強。

        赤霞珠葡萄釀酒后廢棄的皮渣含有豐富的可利用資源,具有提取酚類物質(zhì),并開發(fā)抗氧化保健產(chǎn)品的潛在效益。

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