李丹丹,梁宗鎖,楊宗岐,韓蕊蓮
(西北農(nóng)林科技大學(xué)草業(yè)與草原學(xué)院,陜西 楊凌 712100)
紫花苜蓿(Medicago sativa),多年生豆科牧草,原產(chǎn)于伊朗,其營養(yǎng)價(jià)值高,適口性好,素有“牧草之王”和“飼料皇后”的美稱[1-2]。紫花苜蓿主要分布在中國的西北、北部和東北部半干旱地區(qū)且在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中具有十分重要的價(jià)值和地位[3]。大量研究表明,干旱、低溫等逆境脅迫會(huì)嚴(yán)重影響紫花苜蓿的質(zhì)量和產(chǎn)量[4-5]。5-氨基乙酰丙酸(5-aminolevulinic acid,ALA)在植物代謝過程中發(fā)揮著重要的作用,是許多物質(zhì)合成的前提。有研究發(fā)現(xiàn),噴施適度的ALA能夠提高番茄(Solanum lycopersicum)[6]、甘草(Glycyrrhiza uralensis)[7]、金蕎麥(Fagopyrum dibotrys)[8]、梔子(Gardenia jasminoides)[9]等幼苗的光合作用以及抗逆性。已有研究探究了干旱脅迫對(duì)3個(gè)苜蓿品種(農(nóng)牧806、雷達(dá)克、保定苜蓿)紫花苜蓿生理生化的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)“農(nóng)牧806”相對(duì)于其他兩個(gè)紫花苜蓿品種而言抗旱性較弱。因此,本研究選取生長3個(gè)月的紫花苜?!稗r(nóng)牧806”為試驗(yàn)材料,通過噴施0、5、10、15、20、25 mg·L-1的ALA進(jìn)行處理,24 h后分別測定紫花苜蓿生理生化指標(biāo),探討ALA對(duì)紫花苜蓿幼苗光合色素、抗氧化酶活性、活性氧系統(tǒng)以及滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量的影響,為紫花苜蓿栽培種植提供理論基礎(chǔ)。
紫花苜?!稗r(nóng)牧806”種子購買自北京克勞沃草業(yè)有限公司。
試驗(yàn)于2018年9月4日至12月23日進(jìn)行,將紫花苜蓿“農(nóng)牧806”種子先用0.5%次氯酸鈉溶液消毒20 min,隨后用蒸餾水沖洗干凈,分別撒播在育苗盤上,表面覆土,定時(shí)澆水,當(dāng)幼苗培養(yǎng)至3葉期后,移苗至盛有混勻介質(zhì)(泥炭土∶珍珠巖∶蛭石 = 3∶1∶1)的營養(yǎng)盆(12 cm × 13 cm)中,定時(shí)澆水,每周灌溉一次1/2 Hogland營養(yǎng)液,室內(nèi)溫度控制在26 ℃,光照14 h·d-1,育苗3個(gè)月后,挑選生長一致的紫花苜蓿幼苗,開始試驗(yàn)處理。
噴施不同濃度(0、5、10、15、20、25 mg·L-1)ALA對(duì)紫花苜?!稗r(nóng)牧806”進(jìn)行處理,0為對(duì)照(CK),噴至葉片不滴水為止(每株噴施10 mL)。整個(gè)試驗(yàn)過程保持不斷通氣。ALA處理24 h后,取各處理葉片進(jìn)行生理生化測定,每個(gè)處理3個(gè)重復(fù)。
光合色素含量測定:采用Wellburn等[10]的方法在95%的乙醇中進(jìn)行提取,室溫下避光靜置樣品發(fā)白,然后在665、649和470 nm波長處測定吸光值。
可溶性蛋白含量(soluble protein,SP)測定:采用文獻(xiàn)[11]方法測定。
丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量測定:采用硫代巴比妥酸法測定[12],并在532、600 nm處測定吸光值。
抗氧化酶活性測定:超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)活性采用Ries等[13]方法測定;過氧化物酶(peroxidase, POD)活性采用Nakano等[14]方法測定;過氧化氫酶(catalase, CAT)活性采用Chance等[15]方法測定;抗壞血酸過氧化物酶(ascorbate peroxidase, APX)活性采用維生素C氧化法[16]。
過氧化系統(tǒng)測定:-OH含量根據(jù)Liu等[17]的方法測定;H2O2含量根據(jù)Willekens等[18]的方法測定。
所有數(shù)據(jù)均采用SPSS18.0進(jìn)行方差分析,利用ANOVA中LSD和Duncan's多重比較測驗(yàn),各處理間的顯著性差異檢驗(yàn)水平為P < 0.05。采用GraphPad Prism6軟件作圖。
噴施低濃度(5~10 mg·L-1)的ALA可以促進(jìn)紫花苜?!稗r(nóng)牧806”幼苗葉片中光合色素的合成(圖1)。噴施10 mg·L-1ALA后,紫花苜蓿幼苗葉片光合色素Chl a、Chl b、Chl a + b、Car較對(duì)照(CK,0 mg·L-1)分別顯著提高12.29%、36.21%、18.69%和11.46%(P < 0.05)。而隨著ALA濃度的增加,紫花苜蓿葉片中光合色素含量顯著降低(P < 0.05),25 mg·L-1ALA處理后,紫花苜蓿幼苗葉片Chl a、Chl b、Chl a + b、Car含量降至最低,分別降低了54.11%、13.64%、56.51%和58.66%。
圖 1 噴施5-氨基乙酰丙酸(ALA)對(duì)紫花苜蓿幼苗葉片光合色素含量的影響Figure 1 Effect of exogenous ALA (5-aminolevulinic acid) on the contents of photosynthetic pigments in alfalfa seedling leaves
與對(duì)照(CK)相比,紫花苜?!稗r(nóng)牧806”葉片中SOD、POD、CAT活性在噴施外源ALA后,隨ALA濃度的增加,SOD、POD、CAT活性呈現(xiàn)出先升高后降低的趨勢(圖2)。噴施10 mg·L-1ALA后,紫花苜蓿幼苗葉片中APX、CAT和POD活性達(dá)到了最高,與對(duì)照相比,APX、CAT和POD活性分別顯著增高了11.46%、225%、38.21% (P < 0.05),SOD在ALA濃度為5 mg·L-1時(shí)活性最高,比對(duì)照顯著增高了83.69%。而隨著ALA濃度的增加,紫花苜蓿葉片中抗氧化酶活性逐漸降低,噴施25 mg·L-1ALA后,紫花苜蓿幼苗葉片中APX和SOD活性降至最低,比對(duì)照分別顯著降低了58.66%和78%。
與對(duì)照相比,噴施ALA后,紫花苜蓿幼苗葉片中H2O2和-OH含量隨著ALA濃度的增加表現(xiàn)出先降低后升高的趨勢,在10 mg·L-1時(shí)降至最低,H2O2和-OH含量與對(duì)照相比分別顯著降低了6.20%和7.83% (P < 0.05) (圖3)。而隨著ALA濃度的增加,紫花苜蓿“農(nóng)牧806”葉片中H2O2和-OH含量逐漸升高,H2O2含量在ALA濃度為25 mg·L-1時(shí)達(dá)到最高,與對(duì)照相比增加了3.87%。-OH含量則在ALA濃度為20 mg·L-1時(shí)其含量最高,但仍低于對(duì)照。
與對(duì)照相比,噴施ALA后,紫花苜蓿幼苗葉片中MDA含量隨著ALA濃度增加表現(xiàn)出先降低后升高的趨勢,并在10 mg·L-1ALA濃度下降至到最 低,比 對(duì) 照 顯 著 降 低12.01% (P < 0.05) (圖4)。而隨著ALA濃度的增加,紫花苜蓿幼苗葉片中MDA含量逐漸升高,25 mg·L-1時(shí),MDA含量達(dá)到最大值,與對(duì)照相比升高了9.19%。
圖 2 噴施5-氨基乙酰丙酸(ALA)對(duì)紫花苜蓿幼苗葉片APX、SOD、POD、CAT活性的影響Figure 2 Effect of exogenous ALA (5-aminolevulinic acid) on the activities of APX, SOD, POD, and CAT in alfalfa seedling leaves
圖 3 噴施5-氨基乙酰丙酸(ALA)對(duì)紫花苜蓿幼苗葉片H2O2和-OH含量的影響Figure 3 Effect of exogenous ALA (5-aminolevulinic acid) on the contents of H2O2 and -OH in alfalfa seedling leaves
噴施ALA后,紫花苜蓿“農(nóng)牧806”葉片中可溶性蛋白含量與對(duì)照相比升高,并在5 mg·L-1ALA濃度增加至最大,比對(duì)照增加了3.02% (圖5)。隨著ALA濃度增加“農(nóng)牧806”葉片中可溶性蛋白含量逐漸降低,ALA濃度為20 mg·L-1時(shí)其含量降至最低,與對(duì)照相比降低了8.97%。
圖 4 噴施5-氨基乙酰丙酸(ALA)對(duì)紫花苜蓿幼苗葉片丙二醛含量的影響Figure 4 Effect of exogenous ALA (5-aminolevulinic acid)on the MDA content of alfalfa seedling leaves
圖 5 噴施5-氨基乙酰丙酸(ALA)對(duì)紫花苜蓿幼苗葉片可溶性蛋白含量的影響Figure 5 Effect of exogenous ALA (5-aminolevulinic acid)on the soluble protein content of alfalfa seedling leaves
ALA 是葉綠素等卟啉化合物生物合成的關(guān)鍵前體,植物遭受逆境脅迫時(shí),ALA參與植物的細(xì)胞代謝及生理過程[19]。研究表明,ALA是植物葉綠素合成的一個(gè)部分,可以提高植物的光合速率[20-21]。張春平等[22]研究發(fā)現(xiàn),噴施不同濃度的ALA處理后,NaCl脅迫下黃連(Coptis chinensis)幼苗葉片中光合色素的含量顯著提高。本研究表明,噴施低濃度(5~10 mg·L-1) ALA可以促進(jìn)紫花苜蓿幼苗葉片中Chl a、Chl b、Chl a + b、Car的合成,而噴施高濃度(15~25 mg·L-1) ALA會(huì)抑制紫花苜蓿葉片中光合色素合成。產(chǎn)生這一現(xiàn)象的原因可能是由于外源ALA提高了紫花苜蓿葉片的凈光合速率和氣孔導(dǎo)度,促進(jìn)了紫花苜蓿葉片中光合色素的積累。這與盧克歡等[23]提出的ALA可以調(diào)節(jié)植物葉綠素合成的觀點(diǎn)相一致。
當(dāng)植物長期處于逆境中時(shí),植物中的抗氧化系統(tǒng)發(fā)揮作用,使得植物細(xì)胞中活性氧產(chǎn)生與清除能夠保持平衡;而當(dāng)逆境脅迫加重、細(xì)胞失水達(dá)到一定程度時(shí),細(xì)胞中產(chǎn)生的活性氧超出清除系統(tǒng)的能力,植物就會(huì)產(chǎn)生氧化損傷[24]。本研究結(jié)果表明,噴施低濃度的外源ALA (5~10 mg·L-1)后,紫花苜?!稗r(nóng)牧806”葉片中APX、CAT、POD和SOD的活性顯著升高,而H2O2、-OH含量則與抗氧化酶活性變化相反,其含量顯著降低。與對(duì)照相比,噴施10 mg·L-1ALA后,紫花苜?!稗r(nóng)牧806”葉片中APX、CAT、POD和SOD的活性達(dá)到最大值。而噴施高濃度ALA (15~25 mg·L-1)后,紫花苜蓿“農(nóng)牧806”葉片中APX、CAT、POD和SOD的活性與對(duì)照相比顯著降低,H2O2、-OH含量則顯著升高,這表明高濃度的ALA不利于紫花苜蓿的生長。這與偶春等[9]的研究結(jié)果相一致。
MDA是膜脂過氧化最重要的產(chǎn)物之一,當(dāng)植物處于不利環(huán)境中時(shí),MDA含量可作為組織中自由基形成的可靠指標(biāo),通過植物體內(nèi)MDA含量的變化了解組織中膜脂過氧化程度,以間接測定植物的抗逆性程度[25]。本研究表明,噴施低濃度的ALA后,紫花苜蓿幼苗葉片中MDA含量降低,隨著ALA濃度的增加,MDA含量逐漸升高。說明適度的ALA處理能夠減輕紫花苜蓿幼苗葉片中膜脂過氧化的產(chǎn)生,從而可以緩解逆境對(duì)紫花苜蓿細(xì)胞膜造成的傷害。
可溶性蛋白是植物體內(nèi)重要的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)之一。有研究表明,當(dāng)植物受到非生物因子脅迫時(shí),可溶性蛋白含量會(huì)增加來提高細(xì)胞液的滲透壓,保護(hù)和調(diào)節(jié)植物的正常生長[9]。本研究發(fā)現(xiàn),低濃度的ALA處理誘導(dǎo)了紫花苜蓿滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的合成,導(dǎo)致紫花苜?!稗r(nóng)牧806”幼苗葉片中可溶性蛋白含量升高。這與孫陽等[26]、周賀芳等[27]研究發(fā)現(xiàn),噴施ALA可顯著增加玉米(Zea mays)、甜瓜(Cucumis melo)等幼苗葉片內(nèi)可溶性糖和可溶性蛋白含量。本研究與他人的研究結(jié)果相似。
不同濃度的外源ALA對(duì)紫花苜蓿幼苗葉片的光合色素、抗氧化酶活性、過氧化系統(tǒng)、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)影響不同。噴施適度的ALA(5~10 mg·L-1)可以提高紫花苜?!稗r(nóng)牧806”幼苗葉片中Chl a、Chl b、Chl a + b、Car、SP的含量以及APX、SOD、POD、CAT的活性而降低過氧化系統(tǒng)(H2O2、-OH)以及MDA的含量。噴施高濃度(15~25 mg·L-1)的ALA抑制紫花苜蓿幼苗葉片中光合色素的合成,不利于紫花苜蓿“農(nóng)牧806”的生長。