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        冷藏草魚源氣單胞菌的群體感應(yīng)現(xiàn)象及其對(duì)生物膜形成的影響

        2019-12-04 02:59:20張彩麗王辰晨朱菲菲劉海梅劉巖龍
        食品科學(xué) 2019年22期
        關(guān)鍵詞:株菌肉湯生物膜

        張彩麗,王辰晨,朱菲菲,劉海梅,劉巖龍*

        (魯東大學(xué)食品工程學(xué)院,山東 煙臺(tái) 264025)

        草魚(Ctenopharyngodon idellus)肉質(zhì)鮮嫩、營(yíng)養(yǎng)豐富,深受消費(fèi)者的喜愛,是我國淡水養(yǎng)殖產(chǎn)量最高的魚類,2017年產(chǎn)量高達(dá)534.56萬 t[1]。水產(chǎn)品在貯藏、運(yùn)輸以及銷售過程中,常常由于幾種微生物的活動(dòng)而導(dǎo)致腐敗變質(zhì),這些微生物被稱為特定腐敗菌,是引起水產(chǎn)品腐敗的關(guān)鍵因素[2]。已有研究顯示氣單胞菌是冷藏草魚的特定腐敗菌,草魚在4 ℃貯藏8 d時(shí),氣單胞菌數(shù)量達(dá)到8.49(lg(CFU/g)),占細(xì)菌比例的48.76%[3]。氣單胞菌是一種兼性厭氧的革蘭氏陰性菌,最低生長(zhǎng)溫度為0~5 ℃,可以在低溫條件下與其他嗜冷菌競(jìng)爭(zhēng),因此在冷藏水產(chǎn)品中常常檢出,魚類水產(chǎn)品中氣單胞菌的污染率達(dá)31.9%[4]。

        細(xì)菌在生長(zhǎng)繁殖過程中會(huì)產(chǎn)生一類被稱為自誘導(dǎo)物的信號(hào)分子。隨著細(xì)菌密度的增加,信號(hào)分子濃度也隨之增加,當(dāng)達(dá)到一定閾值時(shí),便會(huì)啟動(dòng)某些基因的表達(dá)調(diào)控細(xì)菌的生理活動(dòng),從而表現(xiàn)出一定的群體行為,這種現(xiàn)象稱為群體感應(yīng)[5]。很多研究顯示群體感應(yīng)調(diào)控細(xì)菌的生理性狀,如胞外酶的分泌、毒力因子的表達(dá)等[6]。N-?;呓z氨酸內(nèi)酯(N-acyl-homoserine lactones,AHLs)是革蘭氏陰性菌中廣泛存在的最典型群體感應(yīng)信號(hào)分子,其分子結(jié)構(gòu)由一個(gè)高絲氨酸內(nèi)酯環(huán)和?;鶄?cè)鏈組成,因?;鶄?cè)鏈取代基(—H、—OH、=O等)不同、碳鏈長(zhǎng)度或不飽和度的不同而存在差異[7]。

        生物膜是微生物聚集在一起形成的特殊細(xì)菌群落,它增強(qiáng)了細(xì)菌抵抗外界環(huán)境的能力。生物膜一旦形成,便很難清除,這為食品的貯運(yùn)和保藏帶來很大的風(fēng)險(xiǎn),也是影響食品工業(yè)衛(wèi)生安全的一個(gè)重要指標(biāo)[8]。研究顯示細(xì)菌的群體感應(yīng)現(xiàn)象可以影響生物膜的形成[9],群體感應(yīng)抑制劑可以有效地抑制細(xì)菌的生物膜形成[10]。

        本研究以冷藏草魚的優(yōu)勢(shì)腐敗菌氣單胞菌為對(duì)象,探究其群體感應(yīng)現(xiàn)象以及生物膜的形成情況,評(píng)價(jià)群體感應(yīng)對(duì)氣單胞菌生物膜形成的影響,旨在為冷藏草魚的保鮮貯運(yùn)提供一定的理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        胰蛋白胨大豆肉湯(trypticase soy broth,TSB)、Luria-Bertani(LB)肉湯、LB瓊脂、生理生化實(shí)驗(yàn)試劑盒青島海博生物技術(shù)有限公司;結(jié)晶紫、乙醇 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;N-丁?;呓z氨酸內(nèi)酯(N-butanoyl-L-homoserinelactone,C4-HSL)、N-己酰基高絲氨酸內(nèi)酯(N-hexanoyl-L-homoserinelactone,C6-HSL) 上海甄準(zhǔn)生物科技有限公司;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒、2×EasyTaq PCR Supermix 全式金生物技術(shù)有限公司;RP-18 F254S反相C18-薄層色譜板 德國Merck公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        SHP-250生化培養(yǎng)箱 上海培因?qū)嶒?yàn)儀器有限公司;HY-60振蕩搖床 武漢匯誠生物科技有限公司;LDZX-40II型高壓蒸汽滅菌鍋 上海申安醫(yī)療器械公司;SWCJ-2FD 超凈工作臺(tái) 上海博迅實(shí)業(yè)有限公司;UV-1300型紫外-可見分光光度計(jì) 上海美析儀器有限公司;Tanon-5200凝膠成像系統(tǒng) 上海天能科技有限公司;KH19A高速離心機(jī) 湖南凱達(dá)科學(xué)儀器有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 細(xì)菌的分離

        冷藏草魚貯藏8 d(貨架期終點(diǎn)),隨機(jī)取出2 尾,無菌條件下取腹部魚肉25 g,參照Wang Guangyu等[11]的方法分離氣單胞菌。挑取菌落數(shù)在30~300 CFU的平板,對(duì)單菌落進(jìn)行純化并保存。純化的菌株以W1、W2、W3……進(jìn)行命名。

        1.3.2 細(xì)菌的鑒定

        利用全式金細(xì)菌基因組DNA抽提試劑盒提取DNA,然后擴(kuò)增細(xì)菌的16S rRNA序列[12],將聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)后,送往生工生物工程(上海)股份有限公司測(cè)序。測(cè)序結(jié)果利用NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行比對(duì)。

        將分離的氣單胞菌屬細(xì)菌進(jìn)行氧化酶、氨基酸、糖類利用、七葉苷等生理生化實(shí)驗(yàn),在細(xì)菌種水平上進(jìn)一步鑒定。

        1.3.3 AHLs活性檢測(cè)

        平板劃線法:將待檢測(cè)菌株與報(bào)告菌株CV026在LB平板上平行劃線,28 ℃培養(yǎng)18~24 h,觀察顏色變化[13]。

        報(bào)告平板法:利用報(bào)告平板法檢測(cè)細(xì)菌生長(zhǎng)過程中的AHLs活性變化。過夜活化的菌株W41和W69接種于LB肉湯,每隔4 h取10 mL菌液,12 000 r/min離心10 min后,獲得細(xì)菌上清液,將細(xì)菌上清液經(jīng)0.22 μm微膜過濾除菌后,于-20 ℃保存?zhèn)溆?。取過夜培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期的紫色桿菌CV026 2~3 mL,加入冷卻至40 ℃的含1.5%瓊脂的LB中,混勻后傾倒平板。待平板凝固后,用無菌打孔器在瓊脂中央打孔,加入50 μL不同培養(yǎng)時(shí)間的細(xì)菌上清,于28 ℃培養(yǎng)24~48 h,用游標(biāo)卡尺量取紫色區(qū)域直徑,直徑越大表明AHLs濃度越高[14]。

        1.3.4 AHLs提取

        參考文獻(xiàn)[15]的方法,取培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期的菌液100 mL,于10 000 r/min離心10 min,收集上清液,取50 mL細(xì)菌上清液用等體積乙酸乙酯(0.5%甲酸酸化)萃取3 次,合并有機(jī)相,旋蒸、溶解,保存至-20 ℃。

        1.3.5 AHLs鑒定

        反相薄層層析法[16]:利用C18-反相薄層層板,將標(biāo)準(zhǔn)品AHLs與乙酸乙酯提取物2~5 μL點(diǎn)樣于反相薄層層析板,利用甲醇-水(60∶40,V/V)充分展開,取出后在常溫下?lián)]干溶劑,按制備報(bào)告平板方法制備含CV026菌液的LB瓊脂,傾到于薄層層析板上,凝固后,28 ℃培養(yǎng)18~24 h,根據(jù)遷移值比對(duì)信號(hào)分子類型。

        氣相色譜-質(zhì)譜法[17]:將乙酸乙酯提取的AHLs利用氣相色譜-質(zhì)譜進(jìn)一步鑒定,使用6890 N氣相色譜結(jié)合5973質(zhì)譜儀,HP-5MS毛細(xì)管柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm),升溫程序:初始溫度150 ℃保持3 min,以25 ℃/min升至280 ℃;氦氣作為載氣,流速0.8 mL/min;進(jìn)樣量1 μL;不分流模式。質(zhì)譜條件:電子電離源,電子能量70 eV,傳輸線溫度280 ℃,離子源溫度230 ℃,激活電壓1.5 V,選擇性掃描模式m/z143。

        1.3.6 生長(zhǎng)曲線測(cè)定

        將待測(cè)細(xì)菌分別在LB瓊脂活化后,挑取單菌落接種在LB肉湯中,過夜培養(yǎng)后,按1%比例接種在100 mL新鮮LB肉湯中,120 r/min、30 ℃振蕩培養(yǎng),0、4、8、12、16、20 h和24 h后在無菌環(huán)境下取出菌液10 mL,于600 nm波長(zhǎng)處測(cè)定OD值,每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

        1.3.7 生物膜形成測(cè)定

        參考Peeters等[18]的方法利用結(jié)晶紫染色法測(cè)定細(xì)菌的生物膜形成量。將過夜培養(yǎng)的細(xì)菌按1%比例接種在48 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中(裝液量1 mL TSB),30 ℃靜置培養(yǎng)36 h。小心吸除菌懸液,用蒸餾水清洗每個(gè)孔3 次,然后用0.1 g/100 mL的結(jié)晶紫染色15 min,再用蒸餾水清洗每個(gè)孔3 次后,加入95%乙醇溶液脫色5 min,混勻后于590 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,以無菌的TSB肉湯作為空白組。每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

        不同溫度生物膜測(cè)定:將過夜培養(yǎng)的細(xì)菌按1%比例接種于LB肉湯中,然后加入48 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,分別置于8、30 ℃和37 ℃培養(yǎng)36 h,參考上述結(jié)晶紫方法測(cè)定生物膜形成量。每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

        外源C4-HSL、C6-HSL對(duì)生物膜影響:將過夜培養(yǎng)的細(xì)菌按1%比例接種于LB肉湯中,然后加入48 孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,分別加入終濃度為2、5、10、20、50 μmol/L的外源C4-HSL或C6-HSL(C4-HSL和C6-HSL溶解于二甲基亞砜),以添加二甲基亞砜組作為對(duì)照,30 ℃靜置培養(yǎng)36 h,參考上述結(jié)晶紫方法測(cè)定細(xì)菌的生物膜形成量。每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。

        1.4 數(shù)據(jù)分析

        2 結(jié)果與分析

        2.1 細(xì)菌的鑒定

        利用分子生物學(xué)方法,對(duì)20 株細(xì)菌進(jìn)行16S rRNA擴(kuò)增,獲得的序列經(jīng)NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST比對(duì),結(jié)果顯示均為氣單胞菌屬(Aeromonas)。生理生化實(shí)驗(yàn)結(jié)果(表1)顯示,本研究分離的氣單胞菌氧化酶反應(yīng)均為陽性,均不能利用鳥氨酸和阿拉伯糖,而均具有利用葡萄糖產(chǎn)酸的能力,但是相同種水平的細(xì)菌在精氨酸、賴氨酸、七葉苷、水楊苷等的利用上存在差異。Abbott等[19]的研究也顯示氣單胞菌屬在種水平的鑒定比較困難,傳統(tǒng)的生理生化反應(yīng)多有重疊,很難明確區(qū)分,而且鑒定的實(shí)驗(yàn)方法也不一致。結(jié)合16S rRNA結(jié)果,本研究分離的氣單胞菌屬包括殺鮭氣單胞菌(A. salmonicida,7 株)、嗜水氣單胞菌(A. hydrophila,5 株)、中間氣單胞菌(A. media,3 株)、A. rivuli(3 株)和A. molluscorum(2 株),其中嗜水氣單胞菌包含多個(gè)亞種。

        表1 氣單胞菌鑒定結(jié)果Table 1 Identification of the isolated Aeromonas spp.

        2.2 AHLs檢測(cè)結(jié)果

        報(bào)告菌株平板劃線法是定性檢測(cè)細(xì)菌產(chǎn)AHLs能力的最直接最快速的方法,Chromobacterium violaceumCV026是常用的報(bào)告菌株之一。C. violaceum CV026本身不產(chǎn)AHLs,但具有感受AHLs的蛋白CivR,當(dāng)感受到外界AHLs,可產(chǎn)生肉眼可見的紫色。如圖1所示,冷藏草魚中分離的20 株菌中,有18 株氣單胞菌可誘導(dǎo)CV026發(fā)生顏色反應(yīng),只有菌株W72、W85不產(chǎn)生AHLs。

        圖1 利用報(bào)告菌株C. violaceum CV026平行劃線檢測(cè)細(xì)菌AHLs活性Fig. 1 Detection of AHLs production in Aeromonas spp. strain suspensions cross fed with biosensor C. violaceum CV026

        2.3 生物膜檢測(cè)結(jié)果

        利用結(jié)晶紫染色法半定量檢測(cè)氣單胞菌的生物膜形成情況,因?yàn)槠咸烟谴龠M(jìn)細(xì)菌生物膜的形成,所以在初步檢測(cè)細(xì)菌的生物膜形成能力時(shí),采用含有葡萄糖的TSB肉湯進(jìn)行培養(yǎng)。參考Stepanovic等[20]的方法,將空白孔A590nm值的3 倍標(biāo)準(zhǔn)差作為臨界cut-off值,根據(jù)A590nm值將細(xì)菌分為以下幾類:A590nm≤0.20,弱生物膜形成能力;0.20<A590nm≤0.80,中等生物膜形成能力;A590nm>0.80,強(qiáng)生物膜形成能力。如圖2所示,20 株氣單胞菌屬中,有13 株為弱生物膜形成能力,5 株為中等生物膜形成能力(W51、W56、W65、W69、W70),2 株為強(qiáng)生物膜形成能力(W41、W77)。其中菌株W41的生物膜形成能力最強(qiáng),A590nm達(dá)3.049±0.07。本研究將選取2 株產(chǎn)AHLs的細(xì)菌為代表,進(jìn)一步研究AHLs對(duì)氣單胞菌生物膜形成能力的影響。為減少細(xì)菌的種間差異,選取相同種水平的生物膜形成能力不同的2 株細(xì)菌,因此選取A. salmonicida W41和A. salmonicida W69作后續(xù)研究。

        圖2 20 株氣單胞菌生物膜形成能力的定量檢測(cè)結(jié)果Fig. 2 Biofilm formation ability of 20 isolates determined using the quantitative adhesion test

        2.4 細(xì)菌生長(zhǎng)曲線及AHLs產(chǎn)生規(guī)律

        將細(xì)菌W41和W69接種在LB肉湯中,測(cè)定其生長(zhǎng)曲線和AHLs產(chǎn)生規(guī)律。如圖3A所示,2 株菌在最適生長(zhǎng)溫度(30 ℃)下適應(yīng)環(huán)境能力和生長(zhǎng)繁殖速度很快,培養(yǎng)4 h后即進(jìn)入對(duì)數(shù)期,24 h時(shí)細(xì)菌W41和W69的密度(OD600nm)分別達(dá)2.12±0.06和1.80±0.01,菌株W41的生長(zhǎng)速率始終顯著快于W69(P<0.05)。2 株菌產(chǎn)AHLs規(guī)律分別如圖3B、C所示,紫色圓圈直徑越大表示AHLs活性越高,從4 h開始菌株W41(OD600nm為0.31±0.02)和W69(OD600nm為0.08±0.01)便有可檢測(cè)的AHLs產(chǎn)生,且隨著細(xì)菌密度的增加AHLs活性增加。W41的AHLs活性從4 h開始維持較高水平,在20 h活性有所下降;菌株W69的AHLs活性在8 h達(dá)到最高,從12 h稍有下降后便維持在穩(wěn)定水平。在細(xì)菌培養(yǎng)過程中,AHLs活性一般都呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),對(duì)蝦源不動(dòng)桿菌Acinetobacter spp. M1的AHLs分泌也有相似的現(xiàn)象,Acinetobacter spp. M1中AHLs活性在0~24 h隨細(xì)菌密度的增加呈現(xiàn)逐漸增長(zhǎng)的趨勢(shì),在24 h對(duì)數(shù)末期達(dá)到最大值,然后開始下降,其主要原因是細(xì)菌生長(zhǎng)到達(dá)穩(wěn)定期時(shí),細(xì)菌產(chǎn)生的次級(jí)代謝產(chǎn)物導(dǎo)致呈堿性環(huán)境,而AHLs在堿性環(huán)境中不穩(wěn)定[21]。該現(xiàn)象在Vibrio anguillarum、Hafnia alvei等細(xì)菌的AHLs活性規(guī)律檢測(cè)中都有發(fā)現(xiàn)[22-23]。

        圖3 菌株生長(zhǎng)曲線(A)及 W41(B)、W69(C)的AHLs分泌規(guī)律Fig. 3 Growth curves (A) and AHLs activity of strains W41 (B) and W69 (C) during incubation

        2.5 AHLs類型鑒定

        利用薄層色譜法檢測(cè)氣單胞菌W41和W69產(chǎn)生的AHLs類型,結(jié)果如圖4所示,2 株氣單胞菌均可產(chǎn)生C4-HSL和C6-HSL,且C4-HSL活性高于C6-HSL。氣相色譜-質(zhì)譜進(jìn)一步鑒定如圖5所示,氣單胞菌A. salmonicida W41和A. salmonicida W69主要產(chǎn)生C4-HSL和C6-HSL類型信號(hào)分子。Gui Meng等[24]從真空包裝冷藏鱘魚的特定腐敗菌A. veronii LP-11中檢測(cè)到C6-SHL、C8-HSL、3-oxo-C8-HSL和3-OH-C8-HSL四種AHLs。Nagar等[25]檢測(cè)了22 株不同食品源氣單胞菌產(chǎn)生的AHLs類型,其中18 株可以產(chǎn)生C4-HSL,18 株可以產(chǎn)生C6-HSL,另外某些氣單胞菌還可以產(chǎn)生奇數(shù)鏈的AHLs(如C5-HSL、C7-HSL),由此可以看出,C4-HSL和C6-HSL是氣單胞菌屬產(chǎn)生的典型AHLs。細(xì)菌AHLs產(chǎn)生差異可能與細(xì)菌的種水平以及生存環(huán)境有關(guān)。

        圖4 薄層色譜法檢測(cè)氣單胞菌W41和W69的AHLs活性Fig. 4 AHL profile of strains W41 and W69 detected by thin-layer chromatography with C. violaceum CV026

        圖5 氣相色譜-質(zhì)譜檢測(cè)菌株W41和W69提取液中的AHLs類型Fig. 5 Gas chromatography-mass spectrometry analysis of AHLs extracted from culture supernatants of strains W41 and W69

        2.6 溫度對(duì)氣單胞菌生物膜形成影響

        將2 株菌W41和W69接種在LB肉湯中,測(cè)定不同溫度下培養(yǎng)36 h的生物膜形成量,選取的3 個(gè)溫度為8、30、37 ℃分別為食品冷鏈溫度、細(xì)菌最適生長(zhǎng)溫度和最高生長(zhǎng)溫度。如圖6所示,2 株菌在8 ℃的生物膜形成量沒有顯著差異,而在30 ℃時(shí)W41的生物膜形成量顯著高于W69(P<0.05)。細(xì)菌W41的生物膜形成量從高到低分別為30 ℃>8 ℃>37 ℃;細(xì)菌W69的生物膜形成量從高到低分別為8 ℃>30 ℃>37 ℃。由此看出,細(xì)菌生物膜的形成受多種因素的影響,細(xì)菌個(gè)體間也存在較大差距,溫度因素也是影響生物膜形成的重要因素。海洋源弧菌V. alginolyticus的生物膜形成能力為16 ℃>28 ℃>40 ℃,且不同個(gè)體間鰻弧菌的生物膜形成能力也存在較大差異[26]。

        圖6 不同溫度下菌株W41和W69的生物膜形成量Fig. 6 Biofilm formation of strains W41 and W69 at different temperatures

        2.7 AHLs對(duì)氣單胞菌生物膜形成的影響

        圖7 C4-HSL(A)和C6-HSL(B)濃度對(duì)菌株W41和W69生物膜形成能力的影響Fig. 7 Biofilm formation of strains W41 and W69 upon supplementation with exogenous C4-HSL (A) and C6-HSL (B) at 30 ℃

        許多研究顯示細(xì)菌的生物膜形成受群體感應(yīng)的調(diào)控,通過外源添加不同濃度的C4-HSL和C6-HSL,探究外源AHLs對(duì)氣單胞菌生物膜的影響。如圖7所示,C4-HSL對(duì)菌株W41的生物膜形成沒有影響,50 μmol/L C6-HSL顯著促進(jìn)了菌株W41生物膜的形成(P<0.05)。而對(duì)于菌株W69,低濃度的AHLs促進(jìn)W69生物膜的形成,高濃度的AHLs抑制其生物膜的形成;1~10 μmol/L C4-HSL促進(jìn)了W69生物膜的形成,50 μmol/L C4-HSL抑制了W69生物膜的形成;類似地,10 μmol/L C6-HSL顯著促進(jìn)W69生物膜的形成(P<0.05),20 μmol/L濃度C6-HSL對(duì)菌株W69生物膜的形成顯示抑制作用。該現(xiàn)象在蜂房哈夫尼菌(H. alvei)中也有體現(xiàn),Hou Hongman等[23]的研究顯示低濃度(5、10 μmol/L)的C6-HSL促進(jìn)H. alvei生物膜形成,而高濃度的(20、40 μmol/L)的C6-HSL抑制H. alvei生物膜形成,而C4-HSL和3-oxo-C8-HSL的作用效果則與C6-HSL相反。Zhao Dandan等[27]的研究結(jié)果表明0.5 mmol/L C4-HSL、C6-HSL、C7-HSL和C8-HSL對(duì)魚糜中的A. veronii均顯示促進(jìn)效果。Li Tingting等[28]的研究結(jié)果顯示外源添加的C4-HSL、C6-HSL和C10-HSL不同程度地促進(jìn)了冷藏大菱鲆源假單胞菌屬P. fluorescens生物膜的形成,其中以C6-HSL的促進(jìn)效果最為顯著。由此可以看出,細(xì)菌對(duì)群體感應(yīng)信號(hào)分子的感受能力存在較大的個(gè)體差異,細(xì)菌對(duì)AHLs類型以及濃度具有一定依賴性。

        3 結(jié) 論

        本研究檢測(cè)了冷藏草魚源分離獲得的20 株氣單胞菌Aeromonas spp.的群體感應(yīng)現(xiàn)象和生物膜形成情況,有18 株氣單胞菌可以產(chǎn)生AHLs信號(hào)分子,20 株菌均顯示有不同強(qiáng)弱程度的生物膜形成能力。以生物膜形成能力較強(qiáng)的2 株菌A. salmonia W41和A. salmonia W69為主要對(duì)象,結(jié)果表明2 株菌的AHLs活性具有菌體密度依賴性,該2 株菌主要產(chǎn)生C4-HSL和C6-HSL信號(hào)分子,AHLs對(duì)細(xì)菌的生物膜形成能力影響不同,其中高濃度C6-HSL促進(jìn)A. salmonia W41生物膜的形成;而高濃度AHLs降低了A. salmonia W69的生物膜形成,低濃度AHLs促進(jìn)A. salmonia W69生物膜的形成。本研究顯示大多數(shù)草魚源氣單胞菌可以產(chǎn)生群體感應(yīng)信號(hào)分子,并且AHLs可以影響氣單胞菌生物膜的形成情況,為水產(chǎn)品保鮮劑的開發(fā)提供一定的理論支持。

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