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        高通量測序技術(shù)檢測非典型子宮內(nèi)膜增生疾病微小RNA 的差異表達(dá)

        2019-11-22 04:05:28唐世倩褚春芳劉菊紅
        中國醫(yī)藥導(dǎo)報 2019年30期
        關(guān)鍵詞:差異分析

        唐世倩 褚春芳 李 婷 鄭 萍 周 琦 劉菊紅 王 玉

        首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京婦產(chǎn)醫(yī)院婦科,北京 100026

        非典型子宮內(nèi)膜增生(atypical endometrial hyperplasia,AEH)疾病被認(rèn)為是子宮內(nèi)膜癌的癌前病變,在雌激素持續(xù)作用下,最終可進(jìn)展為子宮內(nèi)膜癌[1],目前AEH 的發(fā)病機(jī)制并不完全清楚。大量研究發(fā)現(xiàn),AEH 疾病存在著多種基因的異常表達(dá),提示AEH 是由多種基因共同參與的、復(fù)雜的生物演變過程[2]。

        微小RNA(microRNA,miRNA)是一種小分子RNA,它可通過影響目標(biāo)mRNA 的穩(wěn)定性及翻譯,參與細(xì)胞周期、分化、生長、新陳代謝等多個生物過程的調(diào)控[3],現(xiàn)已證實多種miRNA 參與機(jī)體內(nèi)腫瘤的形成,并發(fā)揮巨大調(diào)節(jié)作用,但其在AEH 中的作用目前尚不清楚。為了探索miRNA 在AEH 中的作用,本研究采用高通量測序技術(shù)篩選正常人群與AEH 患者子宮內(nèi)膜的差異miRNA,并進(jìn)行生物學(xué)分析,了解差異miRNA 在AEH 中作用及機(jī)制。

        1 對象與方法

        1.1 研究對象

        收集2016 年1 月~2017 年1 月在首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京婦產(chǎn)醫(yī)院(以下簡稱“我院”)就診的3 例AEH患者(實驗組)及3 名正常女性(對照組)的子宮內(nèi)膜組織標(biāo)本,年齡25~40 歲。實驗組平均年齡(36.33±1.86)歲,平均體重指數(shù)(BMI)(24.31±1.42)kg/m2;對照組平均年齡(30.00±2.89)歲,平均BMI(18.25±1.36)kg/m2。兩組年齡、BMI 比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),具有可比性。

        實驗組樣本選自經(jīng)診斷性刮宮術(shù),術(shù)后病理證實為AEH 內(nèi)膜組織的患者;對照組樣本選自同期行診斷性刮宮術(shù),術(shù)后病理證實為正常增生期子宮內(nèi)膜的女性。所有研究對象既往均未使用激素藥物治療,且無甲狀腺、子宮肌瘤、惡性腫瘤、糖尿病、多囊卵巢綜合征等病史。所有研究對象均簽署知情同意書,本研究經(jīng)我院醫(yī)學(xué)倫理委員會批準(zhǔn)。

        1.2 研究方法

        用生理鹽水洗滌兩組診斷性刮宮術(shù)后得到的內(nèi)膜組織標(biāo)本,置EP 管中,液氮快速冷凍后,-80℃冰箱保存待測。根據(jù)術(shù)后病理結(jié)果挑選符合要求的組織標(biāo)本,將實驗組與對照組配對。

        1.2.1 總RNA 提取及文庫構(gòu)建 總RNA 提取及文庫構(gòu)建由深圳華大基因科技有限公司完成。取適量組織樣品研磨后,加1.5 mL TRIzol 裂解液,放入組織研磨機(jī)(TissueLyser Ⅱ)中研磨30 s,使組織細(xì)胞充分裂解,12000 g 離心5 min(4°C),取上清液,抽提純化樣品的總RNA。采用安捷倫2100 芯片生物分析儀(Agilent 2100 Bioanalyzer)評估總RNA,NanoDrop Lite分光光度計(賽默飛世爾科技公司)檢測A260/A280 的總RNA 純度。將檢驗合格的總RNA 采用small RNA文庫構(gòu)建試劑盒TruSeq Small RNA Library Prep Kit(illumina,貨號:RS-200-0012)進(jìn)行文庫構(gòu)建。取200~1000 ng RNA 樣品,通過聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)分離不同大小的RNA 片段,收集18~30 nt 之間的RNA條帶。根據(jù)small RNA 文庫構(gòu)建試劑盒在RNA 3′、5′端接上接頭,通過與3′端互補(bǔ)的逆轉(zhuǎn)錄引物反轉(zhuǎn)錄為cDNA,反應(yīng)條件:70℃2 min,50℃1 h。PCR 擴(kuò)增程序:98℃30 s;98℃10 s,60℃30 s,72℃15 s,11 個循環(huán);72℃10 min;4℃保持。使用PAGE 對PCR 產(chǎn)物切膠回收純化,回收產(chǎn)物溶于溴化乙錠(EB)中,構(gòu)建small RNA 文庫。采用Agilent 2100 Bioanalyzer 檢測small RNA 文庫,經(jīng)測序平臺(Illumina HiSeq-4000)對該文庫進(jìn)行高通量測序。

        1.2.2 miRNA 信息分析 處理原始數(shù)據(jù):過濾低質(zhì)量讀數(shù),如去除長度小于18 nt 的片段、去除5′和3′端口質(zhì)量連續(xù)低于10 的堿基及含有>10% N 堿基的讀數(shù)等。將處理后的序列運用序列拼接工具bowtie 定位到人類基因組,通過對比分析,去除與基因組不匹配的序列。再將匹配序列分別與基因組重復(fù)序列Gen-Bank 數(shù)據(jù)庫和Rfam 10.0 數(shù)據(jù)庫進(jìn)行對比,篩選和去除其他小分子RNA 序列,剩余序列應(yīng)用Blast 和miRbase 21.0 數(shù)據(jù)庫比對,鑒定已知的miRNA。對存在于人類基因組外顯子反義鏈、內(nèi)含子、基因間區(qū),但未確定的sRNA 而言,通過Mirdeep 篩選miRNA 的生物特征得到新的miRNA,將鑒定出已知和預(yù)測的新miRNA 用于后續(xù)分析。

        1.2.3 已知miRNA 差異表達(dá)分析 應(yīng)用DEGseq 軟件對已知的miRNA 進(jìn)行表達(dá)分析,閾值為|log FC|>2、qvalue<0.001,篩選出有顯著性差異的miRNA。對差異表達(dá)的miRNA 進(jìn)行Venn 分析,篩選3 組或2 組間有交集的miRNA 作為差異表達(dá),進(jìn)入下游分析。

        1.2.4 miRNA 的功能分析 用miRWalk 2.0、miRanda、PITA、RNAhybrid 和Targetscan 數(shù)據(jù)庫預(yù)測miRNA 的靶基因,使用R 包clusterprofiler 進(jìn)行KEGG 富集分析。使用BH(Benjamini 和Hochberg)法校正P 值,以P<0.05 為截止值。

        1.2.5 miRNA 之間相互作用 若兩miRNA 共同調(diào)控同一靶基因,則該靶基因為兩miRNA 共調(diào)控靶基因,對共同調(diào)控的靶基因進(jìn)行GO Biological Process 富集分析,并根據(jù)富集到的條目數(shù)量來量化miRNA 之間功能協(xié)同作用。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

        采用SPSS 23.0 統(tǒng)計學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,兩組間比較采用t 檢驗;計數(shù)資料用率表示,組間比較采用χ2檢驗。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 small RNA 文庫表達(dá)情況

        實驗組和對照組經(jīng)高通量測序分別得到45 446 485 和46 115 154 條原始序列,數(shù)據(jù)處理后,得到的序列分別為44 418 630 及45 097 769 條。

        2.2 miRNA 及相應(yīng)靶基因情況

        通過軟件分析及比對,實驗組得到284 個已知miRNA 及1925 個新miRNA;對照組得到409 個已知miRNA 及2314 個新miRNA,進(jìn)一步通過數(shù)據(jù)庫預(yù)測其相應(yīng)的靶基因。見表1。

        表1 miRNA 及相應(yīng)靶基因情況

        2.3 差異miRNA 分析

        結(jié)果顯示,在閾值為|log FC|>2,qvalue<0.001的條件下,得到3 組(346、66、11 個)差異miRNA,下游分析共獲得18 個miRNA,其中17 個為上調(diào)miRNA,包括:hsa-miR-375、hsa-miR-1307-5p、hsa-miR-671-3p、hsa-miR-1247-5p、hsa-miR-340-3p、hsamiR-100-3p、hsa-miR-345-5p、hsa-miR-3909、hsamiR-431-5p、hsa-miR-1247-3p、hsa-miR-4454、hsamiR-182-5p、hsa-miR-4286、hsa-miR-577、hsa-miR-455-3p、hsa-miR-183-5p、hsa-miR-4485;1 個為表達(dá)下調(diào)miRNA,hsa-miR-3609。

        2.4 差異miRNA 靶基因的富集分析

        每個miRNA 的靶基因功能富集和通路分析結(jié)果見圖1(封四),富集因子點越大表示富集程度越高,通路中候選靶基因個數(shù)越多。

        圖1 差異miRNA 靶基因的富集分析

        2.5 差異miRNA 共調(diào)控靶基因網(wǎng)絡(luò)圖

        結(jié)果顯示,miRNA 之間共調(diào)控靶基因共有18 個節(jié)點,107 個關(guān)系對。miR-4286、miR-577、miR-182-5p 等miRNA 之間有較多、緊密的功能協(xié)同作用,分別調(diào)控1493、3455、2864 個靶基因,共同調(diào)節(jié)CACNA1C、MECP2、FOXK1、LPP、SH3TC2、Smad、MDM4 等靶基因,見圖2。直線代表兩miRNA 之間的共調(diào)控靶基因存在顯著的GO Biological Process 富集結(jié)果,其粗細(xì)代表富集結(jié)果數(shù)目。

        圖2 差異miRNA 共調(diào)控靶基因網(wǎng)絡(luò)圖

        3 討論

        近年來,AEH 的發(fā)病率呈上升趨勢,越來越受關(guān)注。臨床上對無生育要求的AEH 患者可行全子宮切除術(shù),但對于有生育要求的女性而言,可連續(xù)服用大劑量、高效的孕激素[4]或選擇放置左炔諾孕酮宮內(nèi)緩釋系統(tǒng)(LNG-IUS)[5]抑制內(nèi)膜增生,同時口服二甲雙胍等[6]輔助治療,但是部分患者的治療效果并不滿意。隨著人們對疾病逐漸深入了解,認(rèn)識到AEH 不僅是腫瘤相關(guān)性疾病,而且還與機(jī)體糖耐量降低、糖尿病、中心性肥胖、內(nèi)分泌異常等多種代謝異常疾病相關(guān)。

        miRNA 是一類包含19~25 個堿基的內(nèi)源性RNA,主要通過與靶基因mRNA 的3′-非翻譯區(qū)(3′-UTR)結(jié)合,調(diào)節(jié)mRNA 相關(guān)靶基因,影響細(xì)胞的增殖、分化、凋亡及個體發(fā)育。miRNA 具有高度保守性,自身不翻譯蛋白質(zhì)[7-8],但在生物體內(nèi)可以通過多種代謝途徑發(fā)揮調(diào)控作用。研究發(fā)現(xiàn),多種miRNA 在子宮內(nèi)膜癌的發(fā)展過程中發(fā)揮著重要作用,例如miR-1202 降低或miR-196a 升高影響AN3CA 和HEC-1-A 細(xì)胞增加子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞遷移和侵襲能力[9];miR-21、miR-205 通過下調(diào)PTEN、程序性凋亡基因4 等基因表達(dá)水平,促進(jìn)子宮內(nèi)膜癌的細(xì)胞增殖[10];miR-106b-93-25 調(diào)節(jié)p21 和BIM,減少子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞周期停滯及細(xì)胞凋亡[11]。然而,目前miRNA 在AEH 中的研究較少。近期有報道顯示,miR-205、miR-146a、miR-1260b 可作為分子標(biāo)志物來鑒定AEH 和典型子宮內(nèi)膜增生[12],因此miRNA 可能在不同子宮內(nèi)膜狀態(tài)轉(zhuǎn)化間發(fā)揮作用。

        本實驗采用測序速度快、準(zhǔn)確度高的高通量測序技術(shù)檢測AEH 與正常子宮內(nèi)膜組織miRNA 的差異性。研究中分別提取3 例正常子宮內(nèi)膜組織及3 例AEH 組織的總RNA 并進(jìn)行文庫構(gòu)建,分析各樣品中的miRNA 及靶基因情況。通過分析共篩選出18 種具有明顯差異的miRNA,其中上調(diào)17 個,下調(diào)1 個。為進(jìn)一步明確其在機(jī)體內(nèi)的功能,對篩選出的具有顯著差異的miRNA 進(jìn)行靶基因功能富集和通路分析比較,結(jié)果發(fā)現(xiàn)差異性miRNA 的靶基因大部分富集在腫瘤或者機(jī)體代謝的信號傳導(dǎo)相關(guān)通路上,意味著這些具有差異的miRNA 可能通過激活腫瘤及機(jī)體代謝途徑對靶基因發(fā)揮作用。這與目前已知的AEH 發(fā)生機(jī)制相符,說明AEH 不單是一種腫瘤相關(guān)的病變,機(jī)體代謝性異常可能也參與AEH 疾病的發(fā)展。

        通過構(gòu)建差異miRNA 之間的作用網(wǎng),分析差異miRNA 共同調(diào)控的靶基因,作用網(wǎng)顯示miR-577、miR-182-5p、miR-4286 相互之間有著密切關(guān)系。且這三種miRNA 已經(jīng)被證實分別在多種腫瘤及機(jī)體代謝疾病中發(fā)揮重要的作用。miRNA-182-5p 在前列腺癌[13]、胃癌[14],miR-4286 在非小細(xì)胞肺癌[15]、食管癌[16],miR-577 在胃癌[17]等腫瘤中均有表達(dá)。靶向調(diào)控相應(yīng)靶基因,激活并促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的侵襲和增殖能力。通過對miR-577、miR-182-5p、miR-4286 進(jìn)行靶基因預(yù)測,結(jié)果發(fā)現(xiàn)其均可通過調(diào)節(jié)Smad 發(fā)揮作用。而Smad 被認(rèn)為是子宮內(nèi)膜癌的相關(guān)靶點[18],且有研究發(fā)現(xiàn),miRNA-182-5p 在膀胱癌組織中可以靶向作用于Smad 4 發(fā)揮致癌作用[19]。但是到目前為止,尚未有研究這三種miRNA 在AEH 中的調(diào)節(jié)機(jī)制,由此提示需要進(jìn)行后期驗證,進(jìn)一步確定miR-577、miR-182-5p、miR-4286 與Smad 4 之間是否存在調(diào)節(jié)關(guān)系。

        差異miRNA 的靶基因功能富集和通路分析發(fā)現(xiàn),miR-577、miR-4286 的靶基因均與AMPK 信號通路相關(guān)。AMPK 信號通路是體內(nèi)中樞代謝轉(zhuǎn)換的重要途徑,且AMPK 已被確認(rèn)是糖尿病患者的治療靶點[20]。在AEH 中,miR-577、miR-4286 是否通過AMPK 信號通路發(fā)揮作用,還有待進(jìn)一步研究。另外,成纖維細(xì)胞生長因子21(FGF-21)水平的降低可能與糖尿病發(fā)生具有相關(guān)性,此前Chen 等[21]發(fā)現(xiàn)miR-577 可通過負(fù)向調(diào)節(jié)FGF-21 影響機(jī)體內(nèi)的血糖及血脂水平。由此可見,miR-577、miR-4286 可能通過機(jī)體的代謝途徑參與AEH 的發(fā)生。

        綜上所述,本研究通過高通量測序技術(shù)檢測到AEH 和正常子宮內(nèi)膜組織中差異的miRNA,通過對差異miRNA 進(jìn)行生物學(xué)分析,了解差異miRNA 在AEH 中可能發(fā)揮的作用和機(jī)制。然而,由于本試驗中檢測樣本數(shù)量較少,使得試驗存在一定的局限性,還有待于在大量的組織樣本中進(jìn)行進(jìn)一步的驗證,以便更好地了解miRNA 在AEH 中的作用機(jī)制。

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