楊麗娟， 葛 賀， 安麗萍， 孫 新， 郭 鵬， 劉 杰， 林珈羽， 劉艷波△

(北華大學 1醫(yī)學院病理生理學教研室， 2吉林省分子老年醫(yī)學重點實驗室， 3藥學院微生物與生化藥學教研室， 吉林 吉林 132013； 4北華大學附屬醫(yī)院腎病風濕病科， 吉林 吉林 132011)

1941年美國芝加哥大學的Huggins和Hodges最先報道了切除雙側睪丸(去勢，castration)在轉(zhuǎn)移性前列腺癌患者中的良好療效，奠定了內(nèi)分泌治療前列腺癌的基礎[1]。去勢主要降低雄激素的含量，但由于雄激素合成及代謝的復雜性，單純?nèi)葜委煵荒芡耆钄囿w內(nèi)雄激素，這是因為腎上腺網(wǎng)狀帶產(chǎn)生的雙氫睪酮(dihydrotestosterone，DHT)不會因去勢而消失[2]。DHT作用強大，其生物效應是生殖組織的1.5～2.5倍；而且，DHT與雄激素受體(androgen receptor，AR)的結合能力要比睪酮(testosterone，T)大4～5倍。DHT與AR結合后，激活雄激素下游基因，進而控制前列腺細胞增殖和分裂，使得激素依賴性前列腺癌(hormone-dependent prostate cancer，HDPC)最終發(fā)展成激素非依賴性前列腺癌(hormone-independent prostate cancer，HIPC)[3]。因此，延緩HIPC發(fā)生發(fā)展，延長患者生存期，具有重要的現(xiàn)實意義。

硒是人體必需的微量元素，具有明顯免疫增強效應，對前列腺癌的預防及治療效果顯著。但無機硒化物在低濃度時即表現(xiàn)細胞脫壁、細胞內(nèi)空泡增多、細胞膜破裂、細胞壞死和急性溶解等毒性作用[4]；而有機硒具有防治前列腺癌的效應，如每天補充200 μg的硒可使前列腺癌的發(fā)病危險性降低50%；含硒化合物可抑制LNCaP、PC-3和DU145細胞的增殖[5-6]。Dong等[7]發(fā)現(xiàn)，甲基化硒酸(methyl-seleninic acid，MSA)可抑制AR與雄激素受體反應原件(androgen receptor element，ARE)的結合，干擾雄激素信號轉(zhuǎn)導效應，從而降低前列腺癌的發(fā)病率或延遲HIPC的發(fā)生[8]。

因此，本文通過體外實驗觀察MSA對 LNCaP抑制作用并探討相關機制，進而通過裸鼠前列腺癌去勢后復發(fā)模型，探討甲基硒代半胱氨酸(methylselenocysteine，MSC)延緩HIPC的作用及相關機制，為前列腺癌靶向輔助治療奠定基礎。

材 料 和 方 法

1 細胞株及動物

HDPC細胞株LNCaP由吉林大學前列腺癌防治研究中心趙雪儉教授饋贈；用含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)液培養(yǎng)，0.25%胰酶消化傳代。10只BALB/c-nu/nu雄性裸鼠購自中國醫(yī)學科學院實驗動物研究所，4～6周齡，體重18～20 g，于恒定溫度(22～25 ℃)、恒定濕度(40%-50%)的SPF層流室中飼養(yǎng)，標準飼料及水經(jīng)高壓滅菌后供動物自由食用，該動物研究符合國際公認標準，并得到了北華大學醫(yī)學院動物倫理委員會的批準。

2 主要試劑

MSA和MSC由美國杜蘭大學張海濤博士惠贈(Sigma)；DNA marker DL2000和DNA marker DL15000購自TaKaRa；溴化乙錠、瓊脂糖、SDS、TEMED、丙烯酰胺、N，N’-亞甲基雙丙烯酰胺、MTT、DTT、DMSO、PE-Texas Red和PMSF購自Sigma；DEPC購自Merck；高保真Taq DNA聚合酶、DAB、Triton X-100、dNTP和MMV逆轉(zhuǎn)錄酶購自Promega；TRIzol購自Invitrogen；胰酶、IMDM培養(yǎng)基和胎牛血清購自HyClone；其它常規(guī)化學試劑均為進口或國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。鼠抗人AR、前列腺特異性抗原(prostate-specific antigen，PSA)和信號轉(zhuǎn)導及轉(zhuǎn)錄激活因子3(signal transducer and activator of transcription 3, STAT3)多克隆抗體及堿性磷酸酶與辣根過氧化物酶標記的羊抗兔多克隆抗體購自santa Cruz；PSA試劑盒購自CanAG；兔抗人β-actin多克隆抗體和TUNEL原位雜交試劑盒購于武漢博士德公司。

3 主要儀器

PCR擴增儀(GeneAmp)；倒置相差顯微鏡和熒光顯微鏡(Olympus)；超凈工作臺(YZ-875蘇州凈化設備廠)；自動CO2恒溫培養(yǎng)箱(SANYO)；電泳儀、蛋白質(zhì)電泳裝置及轉(zhuǎn)移系統(tǒng)(Bio-Rad)；凝膠成像系統(tǒng)(Tanon)；紫外分光光度計及分析工作站(Shimadazi)。

4 主要方法

4.1LNCaP細胞的培養(yǎng)及生長抑制實驗 將LNCaP細胞分為4組：即對照(mock)組、MSA低劑量(1.25 μmol/L)組、MSA中劑量(2.50 μmol/L)組和MSA高劑量(5.00 μmol/L)組。當培養(yǎng)的貼壁細胞達到70%融合時，分組加藥，設立24 h、48 h和72 h 3個時點，預定時段每孔加入50 μL經(jīng)4 ℃預冷的500 mL/L三氯醋酸，使終濃度為100 mL/L，置4 ℃放置1 h，自來水充分漂洗，空氣干燥后，加4 g/L磺酰羅丹明B(sulforhodamine B, SRB)染色15～30 min，醋酸洗滌、干燥，加入10 mmol/L Tris液100 μL溶解，微振器上振蕩10 min，酶聯(lián)檢測儀上于波長570 nm處測吸光度(A)值。抑制率(%)=(對照組A均值-實驗組A均值)/對照組A均值×100%。

4.2流式細胞術檢測凋亡 將加藥處理后的細胞快速推入70%冷乙醇中，4 ℃固定12 h，用RNase消化后，加入1.5 mL PE-Texas Red (75 mg/L)對DNA進行染色，細胞混勻后在流式細胞儀上進行單參數(shù)分析。

4.3RT-PCR法檢測AR、PSA和STAT3的mRNA表達 根據(jù)PCR引物設計原則，設計人源性AR、PSA、STAT3和β-actin的引物序列，見表1。采用RNeasy Mini試劑盒分離純化各組細胞的總RNA，分光光度法計算提取的總RNA含量及濃度。參照OneStep RT-PCR試劑盒實驗操作說明進行RT-PCR，總反應體積50.0 μL： 5× OneStep RT-PCR buffer 10.0 μL，dNTP Mix 2.0 μL，OneStep RT-PCR Enzyme Mix 2.0 μL，5× Q-Solution 10.0 μL，RNase inhibitor 10 U，RNA 1.0 μg，引物 0.6 μmol/L。擴增條件為： 50 ℃ 逆轉(zhuǎn)錄30 min、95 °C初始化15 min；94 °C變性 1 min、55 ℃ ～57 ℃ 1 min、72 °C 1 min，28～30個循環(huán)；72 ℃ 10 min。在2%瓊脂糖凝膠上電泳，70 V、 40 min，凝膠圖像成像系統(tǒng)拍攝保存實驗結果，凝膠圖像分析系統(tǒng)(GelPro Analyzer 3.0)分析各目的基因與β-actin條帶吸光度值。

表1 RT-PCR的引物序列

4.4Western blot法檢測AR、PSA和STAT3蛋白的表達 取蛋白50 μg加入等體積2×上樣緩沖液，于100 ℃沸水中熱變性10 min，上樣。電泳結束后經(jīng)Bio-Rad半干式轉(zhuǎn)膜60 min，blocking buffer(5%脫脂奶粉)室溫封閉2 h。TBST洗膜，鼠抗人PSA(1 ∶300)和AR(1 ∶500) 抗體稀釋溶于TBST中，4 ℃與膜孵育過夜，TBST洗膜；加入1 ∶300稀釋的生物素標記的羊抗小鼠IgG II 抗，室溫孵育60 min，TBST洗膜；再加入辣根過氧化物酶標記的III抗，室溫孵育60 min，TBST洗膜。加入DAB顯色，待特異性條帶信號清晰可見時用stop buffer終止染色。采用天能科技有限公司GIS凝膠圖像分析系統(tǒng)處理相關信號。

4.5免疫熒光染色 各組細胞于加藥48 h后用PBS清洗，新鮮配制的4%多聚甲醛固定細胞20 min，PBS充分洗滌，0.2% Triton X-100打孔10 min，PBS洗后1%BSA室溫孵育15 min，封閉非特異性位點；滴加STAT3多克隆抗體(1 ∶300)室溫孵育2 h，2.7% NaCl 洗滌后PBS清洗；滴加CY3標記的熒光 II 抗(1 ∶20由1%PBS BSA配制)避光室溫孵育細胞1 h，熒光顯微鏡下觀察，拍照。

4.6免疫細胞化學染色 6孔培養(yǎng)板內(nèi)接種5×105細胞，37 ℃、5% CO2中培養(yǎng)，次日加藥，繼續(xù)培養(yǎng)48 h，PBS清洗，迅速經(jīng)4%多聚甲醛的固定液中于 4 ℃固定過夜，0.2% Triton X-100處理10 min，并用封閉液封閉1 h。然后分別用抗STAT3抗體(1 ∶500)4 ℃孵育24 h。用PBS 洗3遍后，用Cy3標記山羊抗兔IgG(1 ∶500)在室溫下進行染色標記、觀察。細胞圖像通過顯微鏡用 ×10或 ×20物鏡攝取。每組獨立的實驗都會采集超過30個區(qū)域的細胞。而且，在明視野下所采集的每幅圖像都盡量包含相同的細胞數(shù)目。應用Image-Pro Plus 6.0專業(yè)圖像分析軟件分析各實驗組的熒光圖片單個細胞的累積吸光度值，進行統(tǒng)計學分析。

4.7裸鼠移植瘤動物模型的建立 將LNCaP 細胞用胰酶消化成細胞懸液，離心，將細胞團塊混合于Matrgel(4 ℃)中，取LNCaP 細胞1×107個接種于裸鼠背部皮下。待移植瘤長至直徑10 mm時將瘤無菌條件下取出，分成直徑約2 mm×2 mm的瘤塊，裸鼠腹腔注射100 mg/kg氯胺酮，強力碘消毒皮膚，將瘤塊植入10只裸鼠背部皮下，縫合。密切觀察腫瘤生長情況，待腫瘤長到5 mm時，切除睪丸，進行手術去勢。

4.8裸鼠前列腺癌去勢模型的建立 10只裸鼠重新麻醉，消毒下腹部，垂直腹中線在陰囊處打開切口，切除睪丸，結扎睪丸動脈，縫合皮膚。將裸鼠隨機分為2組，每組5只，去勢組即日起每天MSC灌胃，MSC的劑量為每天5 μg/g，對照組給予生理鹽水200 μL灌胃，連續(xù)給藥16周。

4.9一般指標觀察 密切觀察裸鼠生活變化，每周測量腫瘤的長徑(L)和短徑(W)，根據(jù)公式 V=L×W2×0.52計算腫瘤體積，繪制腫瘤的生長曲線。實驗畢，全麻法處死小鼠，完整分離腫瘤，稱瘤重，游標卡尺測量腫瘤長徑和短徑并計算體積，觀察是否有淋巴結轉(zhuǎn)移情況等；腫瘤組織固定、石蠟包埋、切片、HE染色，光鏡下觀察形態(tài)變化。同時分離血清進行PSA含量測定。

4.10TUNEL法檢測腫瘤組織的細胞凋亡 腫瘤組織10%福爾馬林固定48 h，石蠟包埋。切片常規(guī)脫蠟入水。新鮮配制3% H2O2封閉10 min。切片滴加Proteinase K緩沖液37 ℃消化15 min。TdT和DIG-dUTP各1 μL加入18 μL標記緩沖液中，混勻，與組織共孵育，37 ℃標記2 h。TBS清洗后加封閉液，室溫孵育30 min。用封閉液1 ∶100稀釋生物素化抗地高辛抗體，每片50 μL。37 ℃反應30 min。TBS清洗后滴加SABC，繼續(xù)反應60 min。TBS清洗，DAB顯色。水洗，蘇木素輕度復染。脫水，透明，封片，顯微鏡觀察。細胞核染為棕黃色的即是凋亡細胞，每張切片觀察3個視野，每個視野連續(xù)數(shù)300個細胞，計數(shù)凋亡細胞百分比即為凋亡指數(shù)(apoptotic index, AI)。AI(%)=凋亡細胞數(shù)/總細胞數(shù)×100%。

4.11ELISA測定血清PSA的含量 10只裸鼠于接種腫瘤前、去勢前、去勢后1周分別眼眶取血進行血清PSA含量的測定。將PSA抗體包被的微孔固定到支架上；在微孔中加入25 μL對照標準品或血清試樣；加入100 μL酶結合物(空白組不加)；室溫下孵育30 min；去除溫育混合物，用配置好的清洗液清洗微孔；在每個微孔中依次加入100 μL顯色液A和顯色液B(包括顯色液空白組)。室溫孵育10 min；每個微孔中加入50 μL終止液；通過微孔反應板酶標儀，在波長450 nm處讀取吸光度(A)值。

5 統(tǒng)計學處理

用SPSS 11.0統(tǒng)計軟件進行分析。數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標準差(mean±SD)表示，兩組間均數(shù)比較采用獨立樣本t檢驗，多組間比較采用單因素方差分析，組間兩兩比較采用最小顯著性差異法(LSD法)，以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

結 果

1 MSA抑制LNCaP細胞生長

在預定時點檢測細胞的生長情況，以mock組的生長抑制率為0%，給藥24 h、48 h和72 h后，1.25、2.50和5.00 μmol/L MSA組細胞的生長抑制率隨藥物濃度的增加而增加，依培養(yǎng)時間延長而增加，表現(xiàn)出明顯的時間和劑量依賴關系(P<0.05)，見表2。

表2 MSA對LNCaP細胞生長的影響

Table 2.Effect of MSA on the growth of LNCaP cells (Mean±SD.n=4)

GroupGrowth inhibitory rate (%)24 h48 h72 hMock0001.25 μmol/L 1.24±0.285.36±1.569.21±2.882.50 μmol/L 9.23±3.7221.62±9.21?39.42±4.87?#5.00 μmol/L 18.36±2.96?#30.67±7.73 ?#65.32±12.11?#

*P<0.05vsmock group;#P<0.05vs1.25 μmol/L group.

2 MSA對LNCaP細胞周期分布及凋亡的影響

LNCaP細胞經(jīng)1.25、2.50和5.00 μmol/L MSA處理48 h后，快速推入70%冷乙醇中，4 ℃固定，RNase消化后用PE-Texas Red溶液對DNA進行染色，用流式細胞術進行單參數(shù)分析，結果顯示隨MSA濃度增大，細胞凋亡率隨著增加，且細胞主要停滯在G0/G1期,見圖1、表3。

Figure 1.Apoptosis and cell cycle of LNCaP cells treated with MSA at different doses.

圖1 MSA對LNCaP細胞凋亡和細胞周期的影響

表3 MSA對LNCaP細胞凋亡和細胞周期的影響

Table 3.Apoptosis and cell cycle analysis in the LNCaP cells treated with MSA (%. Mean±SD.n=3)

GroupApoptotic cellsG0/G1SMock 0.90±0.65 39.90±2.53 56.70±6.27 1.25 μmol/L MSA 14.70±1.45? 46.20±2.36 28.70±4.73? 2.50 μmol/L MSA 33.10±2.36? 53.30±3.19?44.90±5.38? 5.00 μmol/L MSA52.80±2.87??#68.80±3.64?# 24.30±4.56?

*P<0.05,**P<0.01vsmock group;#P<0.05vs1.25 μmol/L MSA group.

3 MSA對AR及PSA mRNA表達的影響

與mock組相比，不同濃度的MSA作用于LNCaP細胞48 h后PSA及AR的mRNA表達明顯降低(P<0.05)，以5.00 μmol/L MSA組最為明顯,見圖2。

Figure 2.The mRNA expression of AR and PSA in the LNCaP cells treated with MSA at different doses. Mean±SD.n=3.*P<0.05,**P<0.01vsmock group.

圖2 MSA對LNCaP細胞AR及PSA mRNA表達的影響

4 MSA對AR及PSA 蛋白表達的影響

與mock組相比，2.50 μmol/L和5.00 μmol/L濃度的MSA與LNCaP孵育48 h明顯降低LNCaP細胞內(nèi)AR及PSA 蛋白的表達(P<0.05)，見圖3。

5 MSA對LNCaP細胞STAT3表達的影響

利用免疫熒光法檢測LNCaP細胞內(nèi)STAT3的表達與定位，結果顯示mock組STAT3陽性的紅色熒光位于胞漿及胞核，5.00 μmol/L MSA處理后LNCaP細胞 STAT3陽性的紅色熒光數(shù)量明顯減少，強度明顯降低,見圖4。

Figure 3.The protein expression of AR and PSA in the LNCaP cells treated with MSA at different doses. Mean±SD.n=3.*P<0.05,**P<0.01vsmock group.

圖3 MSA對LNCaP細胞AR及PSA蛋白表達的影響

免疫細胞化學染色發(fā)現(xiàn)，mock組細胞增殖旺盛，STAT3蛋白的陽性表達顆粒主要位于胞漿，也有少部分位于胞核內(nèi)，而5.00 μmol/L MSA組STAT3蛋白表達明顯下降，見圖4。

Figure 4.STAT3 expression in the LNCaP cells treated with MSA observed by immunofluorescence (A) and immunocytochemical (B) methods (×200).

圖4 免疫熒光及免疫細胞化學法檢測STAT3表達

6 MSC對裸鼠移植瘤生長的影響

裸鼠接種瘤塊20 d后，10只裸鼠全部出瘤，瘤體積平均為(172.56±20.36) mm3，切除睪丸進行去勢，mock組每天200 μL生理鹽水灌胃，治療組每天5 μg/g MSC灌胃，連續(xù)給藥16周，實驗期間裸鼠腫瘤的生長曲線見圖5，由該生長曲線可知，去勢后2組動物的腫瘤體積均明顯回縮，表現(xiàn)良好的治療效果。mock組動物移植瘤從第8周開始生長加快，接近去勢之前水平。而MSC組第11周腫瘤體積達到去勢前水平，說明MSC有延緩去勢后前列腺癌生長的作用，從第13周開始，兩組動物移植瘤體積的差異存在統(tǒng)計學意義(P<0.05)，見圖5。第16周時處死動物，見圖 6，取移植瘤測量體積并稱重，與mock組相比，MSC治療組移植瘤重量明顯減輕(P<0.05)，體積明顯減小(P<0.05)，見圖7。

7 MSC對PSA分泌的影響

于接種腫瘤前、去勢前和去勢1周后眶內(nèi)用毛細管采血，治療16周后斷頭取血，分別進行PSA含量測定。結果顯示，正常雄性裸鼠PSA含量低，接種LNCaP細胞后PSA分泌增加，去勢前PSA含量明顯高于接種細胞前，去勢1周后PSA水平迅速下降(P<0.05)，說明去勢干擾PSA合成與分泌；MSC治療16周后PSA增加，但MSC組增加緩慢，與同期mock組相比差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)，見表4。

Figure 5.The tumor growth curve of the nude mice treated with MSC after castration. Mean±SD.n=5.*P<0.05vsmock group.

圖5 MSC對裸鼠皮下移植瘤去勢后生長的影響

Figure 6.The LNCaP cell xenografts in the nude mice treated with MSC after castration.

圖6 去勢16周后裸鼠前列腺癌皮下移植瘤生長情況

Figure 7.The weight and volume of the xenografts in the nude mice treated with MSC for 16 weeks after castration. Mean±SD.n=5.*P<0.05vsmock group.

圖7 MSC對裸鼠前列腺癌皮下移植瘤體積及重量的影響

表4 MSC治療前后裸鼠血清PSA水平的變化

*P<0.05vsbefore inoculation;#P<0.05vsbefore castration;▲P<0.05vsmock at killed time.

8 MSC對腫瘤細胞凋亡的影響

TUNEL法檢測移植瘤組織細胞凋亡情況，結果顯示mock組的細胞生長旺盛，細胞核大而深染，凋亡細胞少，而MSC治療組的腫瘤組織內(nèi)細胞數(shù)量明顯減少，結構疏松，腫瘤細胞生長不夠旺盛，可見大量細胞核染為棕黃色的凋亡細胞，MSC組凋亡指數(shù)明顯高于mock組(P<0.05)，見圖8、表5。

Figure 8.The apoptosis in the xenografts of the mice treated with MSC for 16 weeks. A: mock group; B: MSC group (×400).

圖8 MSC對前列腺癌皮下移植瘤細胞凋亡的影響

表5 MSC對前列腺癌皮下移植瘤細胞生長及凋亡的影響

Table 5.The effects of MSC on viability index (VI) and apoptotic index (AI) of the xenografts in nude mice (Mean±SD.n=5)

Group AI (%)VI (%)Mock 4.93±1.6292.64±9.25MSC52.60±10.67??54.80±7.64?

*P<0.05,**P<0.01vsmock group.

9 MSC對相關基因mRNA表達的影響

RT-PCR結果可見MSC可明顯抑制AR、PSA及STAT3的mRNA水平(P<0.05)，見圖9。

Figure 9.The relative mRNA levels of AR, PSA and STAT3 in the LNCaP cell xenografts after castration and treated with MSC.Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmock group.

圖9 MSC對前列腺癌移植瘤相關基因mRNA表達的影響

10 MSC對相關蛋白水平的影響

提取腫瘤組織總蛋白及核蛋白進行Western blot分析，結果顯示,與mock組相比，MSC組的STAT3、PSA和AR蛋白水平明顯下調(diào)(P<0.05)，見圖10。

Figure 10.The relative protein levels of AR, PSA and STAT3 in the LNCaP cell xenografts after castration of the mice treated with MSC. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsmock group.

圖10 MSC對前列腺癌移植瘤相關蛋白表達的影響

討 論

AR在全身各組織均存在，但主要位于前列腺上皮細胞及部分基質(zhì)細胞中[9]。AR的改變在前列腺癌發(fā)生、發(fā)展中作用以及與內(nèi)分泌治療的關系受到研究者的廣泛關注。HDPC仍穩(wěn)定表達AR，其在HIPC進展過程中不但沒有消失，通過抗雄激素治療后反而有基因擴增現(xiàn)象。前列腺癌細胞通過AR異常增加來適應較低水平的血清雄激素，使細胞對低濃度雄激素的敏感性增加，進而發(fā)展成為HIPC，成為抗雄激素治療失敗的原因之一。

本研究發(fā)現(xiàn)，MSA體外具有抑制前列腺癌LNCaP細胞生長的作用，通過分子生物學手段證實，MSA抑制前列腺癌LNCaP細胞AR表達，使得雄激素與受體結合量減少，對前列腺癌生長的支撐作用減弱，延緩癌細胞的生長甚至造成前列腺癌細胞凋亡。

PSA是由前列腺上皮細胞分泌的單鏈糖蛋白，具有糜蛋白酶活性。PSA存在于正常和前列腺癌組織、前列腺液和精液中，而精液中的濃度很高，血清中的濃度很低。血清中的PSA呈結合與非結合兩種形式出現(xiàn)[10]，大多數(shù)血清PSA與蛋白酶拮抗劑如α1-抗糜蛋白酶或α2-巨球蛋白結合，血清結合的PSA占多數(shù)，游離的僅占10%～20%。當腫瘤細胞破壞由內(nèi)皮層、基底細胞層和基底膜構成的屏障時，腺泡內(nèi)容物即可進入血循環(huán)，導致外周血PSA水平升高。PSA具有較高的組織特異性，PSA在血清中的含量與疾病的發(fā)展階段相關，可及時反映前列腺癌患者的治療情況[11]。Zhang等[12]將MSA加入LNCaP細胞培養(yǎng)液中，利用基因芯片發(fā)現(xiàn)，多種細胞周期調(diào)控基因的mRNA表達水平發(fā)生了劇烈變化，同時細胞增殖受抑，細胞大量積聚在G0/G1期，同時抑制雄激素受體的表達并降低PSA的分泌量。本研究體外實驗結果表明，MSA具有下調(diào)PSA表達的效應，其機制與MSA下調(diào)AR表達，使得雄激素與AR的結合減少，短期內(nèi)減弱對下游基因的調(diào)節(jié)功能，使PSA的表達降低，癌細胞增殖作用減弱，生長抑制效應增強，并出現(xiàn)明顯細胞凋亡現(xiàn)象，為含硒藥物治療前列腺癌的應用奠定了堅實基礎。

為了證實含硒藥物對前列腺癌生長的影響，本研究構建了裸鼠前列腺癌皮下移植瘤去勢后復發(fā)模型。LNCaP細胞接種到裸鼠背部皮下可成瘤，說明HDPC構建成功。待腫瘤生長至一定體積后進行去勢，腫瘤生長迅速回縮，證實移植瘤對雄激素剝奪治療的敏感性，此時動物體內(nèi)PSA含量降低，進一步證實去勢治療的有效性。待去勢發(fā)生后8周，腫瘤重新出現(xiàn)，說明去勢治療前期有效，而后出現(xiàn)腫瘤復發(fā)，一般為HIPC。但MSC治療組腫瘤復發(fā)時間延后，腫瘤體積明顯小于相應時段mock組體積，說明MSC具有延緩HIPC發(fā)生發(fā)展作用。體外研究成果顯示，有機硒一方面干擾PSA的合成，一方面降解PSA，使血中PSA的水平降低，從而抑制前列腺癌的生長。而利用LNCaP細胞復制前列腺癌裸鼠模型，每日給小鼠腹腔注射MSC，發(fā)現(xiàn)MSC處理后小鼠腫瘤明顯變小且腫瘤組織內(nèi)AR受體減少，血中PSA濃度降低，說明含硒化物在體內(nèi)也可以發(fā)揮抑制腫瘤生長的作用。本實驗在預定時間處死動物，兩組動物血清中PSA含量均增加，但MSC可延緩血清中PSA的增加速度和水平，同時移植瘤的生長速度緩慢；RT-PCR和Western blot實驗結果顯示，MSC組動物腫瘤組織PSA及AR的mRNA轉(zhuǎn)錄水平下降及蛋白表達均較mock組明顯降低，免疫組織化學染色結果證實，去勢后mock組動物腫瘤組織AR的表達量及強度均降低，說明MSC可干擾AR表達的某些環(huán)節(jié)。根據(jù)前期的研究結論：硒既可干擾AR的轉(zhuǎn)錄，又干擾AR與ARE的結合，從而阻斷了AR的信號轉(zhuǎn)導，導致下游基因PSA等的轉(zhuǎn)錄及翻譯受到抑制，進而預防前列腺癌的發(fā)生或延緩(抑制)AIPC的產(chǎn)生。

為了探討MSC延緩去勢后HIPC發(fā)生的機制，本研究利用RT-PCR、Western blot和組織學等技術檢測了MSC對STAT3表達影響，結果顯示MSC可下調(diào)STAT3 的mRNA及蛋白表達，與mock組比較差異有統(tǒng)計學意義。STAT3是轉(zhuǎn)錄信號傳導子與激活子家族的重要成員，受IL-6、EGF、PDGF和CSF-I等調(diào)節(jié)，這些細胞因子與細胞膜表面受體相互作用激活JAK-STAT途徑發(fā)揮調(diào)節(jié)細胞生長作用。在前列腺癌的發(fā)生發(fā)展中，STAT3作用獨特，它可通過替代機制激活AR，AR與配體T靶向結合，促進HIPC的發(fā)生及進展。如IL-6可作為HIPC自分泌/旁分泌因子，保護癌細胞逃逸抗腫瘤藥物的細胞毒性作用；IL-6與其受體結合后，激活JAK旁路，使STAT3磷酸化，進而與凋亡及增殖相關基因啟動子結合，誘導靶基因轉(zhuǎn)錄與過度表達，調(diào)控細胞增殖與凋亡等[13-15]。此外，Kok等[16]發(fā)現(xiàn)，硒可干擾正常前列腺上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化，在預防前列腺癌發(fā)生中發(fā)揮重要作用。本研究結果顯示，mock組腫瘤組織的STAT3表達增強，細胞生長活躍，血管形成豐富，而MSC降低STAT3的表達，表現(xiàn)出大量的凋亡細胞，細胞增殖不明顯。另外，MSC可通過降低STAT3的表達而延緩HIPC發(fā)生。

從本研究的結果可知，MSA體外通過干擾AR、PSA和STAT3的表達而抑制LNCaP細胞生長，并促進其凋亡，通過構建裸鼠前列腺癌去勢后復發(fā)模型發(fā)現(xiàn)：MSC體內(nèi)可抑制去勢后的前列腺癌生長，并降低血清中PSA的含量，延遲HIPC發(fā)生，其主要機制可能一是MSC可干擾AR的信號轉(zhuǎn)導，抑制PSA的分泌而起到抑制腫瘤生長的作用；二是MSC可下調(diào)STAT3的表達，結合我們前期研究工作[17]，MSC可通過抑制腫瘤血管形成，實現(xiàn)抑制前列腺癌生長的目的，為臨床前列腺癌的輔助治療提供新的思路。

本研究成功復制裸鼠前列腺癌去勢后復發(fā)模型；有機硒可延緩HIPC的發(fā)生，硒聯(lián)合去勢治療前列腺癌具有廣闊前景。