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        siRNA沉默ARC對低氧下大鼠肺動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞活力的影響*

        2019-09-16 01:38:32吳素玲
        重慶醫(yī)學(xué) 2019年16期
        關(guān)鍵詞:水平

        張 婕,金 泉,吳素玲,管 明

        (1.浙江省杭州市兒童醫(yī)院內(nèi)二科 310014;2.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬杭州市第一人民醫(yī)院耳鼻喉科 310006)

        低氧性肺動(dòng)脈高壓是一種慢性進(jìn)行性疾病,其中低氧是該病發(fā)生的最主要原因。肺動(dòng)脈血管收縮、肺血管重構(gòu)及微血管損傷是低氧性肺動(dòng)脈高壓的主要發(fā)病機(jī)制[1-2]。肺動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞(pulmonary arterial smooth muscle cells,PASMCs)是肺動(dòng)脈壁的主要構(gòu)成細(xì)胞。PASMCs的增殖和凋亡平衡影響肺血管的厚度,是肺血管重塑的主要機(jī)制之一[3]。研究低氧性肺動(dòng)脈高壓的發(fā)病機(jī)制,尋找更有效安全的治療方法一直是研究的熱點(diǎn)。

        含胱冬肽酶富集功能域的凋亡抑制因子(apoptosis repressor with caspase recruitment domain,ARC)是一種高效及多功能的調(diào)節(jié)內(nèi)外源性凋亡的抗凋亡蛋白[4]。ARC可以拮抗由細(xì)胞毒性藥物、放射性損傷、氧化應(yīng)激反應(yīng)、缺氧、細(xì)胞內(nèi)Ca2+平衡失調(diào)、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激等引起的凋亡[5]。由于ARC對于PASMCs生長與肺血管重塑的影響并不明確,本研究主要通過干擾ARC的表達(dá),探討是否影響下游反應(yīng)元件的激活,最終通過一系列內(nèi)外源性抗凋亡因子的表達(dá),使得機(jī)體適應(yīng)外界環(huán)境的變化。因此,本研究通過小干擾RNA(small interfering RNA,siRNA)技術(shù),體外干擾PASMCs ARC的表達(dá),檢測細(xì)胞活力變化,討論ARC在PASMCs生長中的作用,現(xiàn)報(bào)道如下。

        1 材料與方法

        1.1主要試劑 胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基、0.25%胰蛋白酶-乙二胺四乙酸(EDTA)消化液購于美國HyClone公司;OPTI-MEM購于美國Gibco公司;青、鏈霉素(100×)購于上海碧云天生物技術(shù)公司;RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit購于美國Thermo Fisher Scientific公司;Lipofectamine 2000購于美國Invitrogen公司;4′,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)購于(H+L)索萊寶公司;FITC標(biāo)記山羊抗兔IgG購于美國BD公司; BCA蛋白定量試劑盒購于南京維森特生物技術(shù)公司;吐溫20(Tween-20)購于上海生工生物工程公司;聚偏氟乙烯(PVDF)膜購于美國Millipore公司;α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)抗體、β-actin抗體、ARC抗體購于美國Santa Cruz公司;CCK-8購于北京普魯頓公司。

        1.2方法

        1.2.1大鼠PASMCs的分離、培養(yǎng)及分組 大鼠PASMCs的培養(yǎng)和鑒定采用膠原酶Ⅰ消化法[9]。取SD大鼠,超凈臺內(nèi)處死,取肺組織,分離肺內(nèi)動(dòng)脈血管于磷酸鹽緩沖液(PBS)中。分離出血管中膜,用眼科剪將血管中膜剪碎,放入預(yù)先盛有含0.2%膠原酶Ⅰ的離心管中離心,棄上清液后將沉淀組織重懸于5 mL含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液中,取細(xì)胞懸液,置于培養(yǎng)皿中于培養(yǎng)箱中孵育。一般約1周平滑肌細(xì)胞可從組織塊中爬出,待細(xì)胞即將融合時(shí),進(jìn)行消化傳代,取2~3代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。將PASMCs分成以下4組:常氧組、低氧組、ARC-siRNA+低氧組、Negative-siRNA+低氧組。

        1.2.2免疫熒光染色法檢測ARC、caspase-3表達(dá) 將生長狀態(tài)良好的PASMCs細(xì)胞接種至12孔板中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜后,棄去培養(yǎng)基。取細(xì)胞PBS洗滌1次,多聚甲醛固定細(xì)胞,室溫孵育10 min。PBS洗滌3次,加入含0.2% TritonX-100,室溫靜置30 min。PBS洗滌3次,加入約40 μL一抗(ARC 1∶1 000、caspase-3 1∶1 000、α-SMA 1∶200稀釋),4 ℃孵育過夜。除去未結(jié)合的一抗,PBS洗滌后加入二抗,靜置 30 min, PBS洗滌。隨后用DAPI染核5 min,PBS洗滌,用尖鑷子將玻片取出,晾干,載玻片上滴一滴封片液。熒光顯微鏡下觀察,拍照。

        1.2.3siRNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞 PASMCs接種于6孔板中,待細(xì)胞長至70%融合時(shí),棄培養(yǎng)基,用PBS洗3次,無血清培養(yǎng)基洗2次,加入新的無血清培養(yǎng)基,將Lipofectamine2000、ARC-siRNA(ARC-siRNA 1、2、3)或陰性對照序列(Neigative-siRNA)分別加入細(xì)胞中,充分混勻,培養(yǎng)48 h后,換液,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。ARC的3個(gè)siRNA oligo序列見表1。

        表1 各siRNA序列

        1.2.4CCK-8法檢測細(xì)胞活力 收集細(xì)胞,將轉(zhuǎn)染48 h的細(xì)胞用胰蛋白酶-EDTA消化,稀釋細(xì)胞使其濃度為3×107/L。分別取100 μL于96孔板培養(yǎng),每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,常氧培養(yǎng)過夜貼壁。在常氧或低氧條件下將各組細(xì)胞分別培養(yǎng) 0、24、48、72 h后,按1∶10體積比混合CCK-8和無血清DMEM培養(yǎng)基,取100 μL加入待測孔中,37 ℃、5% CO2孵育1 h;用微板分光光度計(jì)測定450 nm波長下的吸光度(A)值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        1.2.5Western blot 收集各組細(xì)胞,加入細(xì)胞裂解液,在冰上靜置裂解20 min;4 ℃ 10 000×g 離心5 min,取上清液,加入2×十二烷基硫酸鈉(SDS)凝膠上樣緩沖液水浴(100 ℃)變性10 min,樣本備用或分裝凍存。取20 μg蛋白樣品,10% SDS-聚丙烯酰胺凝膠(PAGE)電泳,100 V轉(zhuǎn)移至PDVF膜,封閉液中封閉1 h;加入一抗[分別為ARC抗體(1∶1 000)、β-actin抗體(1∶500)]室溫孵育2 h;洗膜;放入辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的羊抗兔IgG室溫孵育1 h;PBST洗膜,在暗室中加ECL發(fā)光試劑,X射線膠片曝光1~2 min后顯影、定影,雜交信號在圖像分析系統(tǒng)中進(jìn)行光密度掃描。應(yīng)用管家基因β-actin作為內(nèi)參,其余目的蛋白與其的比值對目的蛋白相對表達(dá)水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        表2 各基因RT-PCR引物

        1.2.6RT-PCR TRIzol一步法提取各組細(xì)胞總RNA,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書步驟,合成cDNA。紫外吸收法測定總RNA在260 nm和280 nm處A值,計(jì)算其濃度和純度。用PCR擴(kuò)增目的片段。以GADPH mRNA表達(dá)水平作為內(nèi)參。PCR反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性10 min;94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸50 s,循環(huán)35次。PCR產(chǎn)物在1.5%~1.8%的瓊脂糖凝膠上電泳,條帶經(jīng)紫外顯色灰度掃描。各基因RT-PCR引物見表2。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

        2 結(jié) 果

        2.1siRNA在PSCMCs中抑制ARC表達(dá)的效率檢測 常氧下,免疫熒光染色發(fā)現(xiàn)ARC在PSCMCs的細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)內(nèi)均存在表達(dá),見圖1。常氧下,ARC-siRNA干擾后,ARC在PSCMCs中的表達(dá)水平經(jīng)RT-qPCR檢測,結(jié)果顯示:相對于對照細(xì)胞(未轉(zhuǎn)染siRNA,常氧,ARC表達(dá)水平設(shè)為100%),ARC-siRNA1,ARC-siRNA2,ARC-siRNA3作用后,ARC mRNA的表達(dá)水平分別為(46.8±3.0)%、(42.6±6.9)%、(50.7±10.0)%,其中ARC-siRNA 2抑制ARC表達(dá)的效率最高 (圖2A)。Western blot、免疫熒光染色檢測ARC-siRNA2干擾,ARC在PSCMCs的表達(dá)水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn)ARC在ARC-siRNA2干擾后的細(xì)胞中表達(dá)較對照細(xì)胞顯著下降(圖2B、C)。因此最終選取ARC-siRNA2來進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

        圖1 ARC在PACMCs中表達(dá)(熒光顯微鏡×800)

        A:ARC mRNA表達(dá)量被ARC-siRNA1、ARC-siRNA2、ARC-siRNA3轉(zhuǎn)染后所抑制;B:Western blot結(jié)果顯示 ARC表達(dá)水平在ARC-siRNA2干擾后顯著下降;C:免疫熒光結(jié)果顯示ARC表達(dá)水平在ARC-siRNA2干擾后顯著下降。a:P<0.05

        圖2ARC-siRNA抑制ARC在PASMCs中的表達(dá)(熒光顯微鏡×400)

        2.2ARC對低氧下PASMCs細(xì)胞活力的影響 CCK-8法檢測細(xì)胞活力結(jié)果顯示低氧明顯促進(jìn)PASMCs活力(P<0.01),且呈時(shí)間依賴性,各組在0 h時(shí)A值差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。在低氧情況下,ARC-siRNA+低氧組的A值較Negative-siRNA+低氧組明顯減弱,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見表3。

        2.3低氧下PASMCs中caspase-3表達(dá)水平變化及與ARC的關(guān)系 為了進(jìn)一步研究ARC對低氧下PASMCs活力影響的機(jī)制,筆者采用免疫熒光染色檢測了caspase-3在低氧作用后表達(dá)水平變化。免疫熒光染色結(jié)果顯示,低氧作用48 h,低氧組caspase-3陽性細(xì)胞較常氧組顯著增加[(22.4±5.2)%vs.(5.5±1.8)%]。用ARC-siRNA下調(diào)ARC表達(dá),再低氧作用48 h,免疫熒光染色結(jié)果顯示ARC-siRNA組與Negative-siRNA組比較,caspase-3陽性細(xì)胞顯著增加[(50.1±5.8)%vs. (17.2±4.1)%]。結(jié)果表明,ARC干擾后,PASMCs對低氧敏感度增加,可能與caspase-3表達(dá)增加有關(guān)。見圖3。

        表3 CCK-8法測量不同分組下PASMCs細(xì)胞活力情況值)

        a:P<0.05,與常氧組比較;b:P<0.05,與Negative-siRNA+低氧組比較

        圖3 ARC表達(dá)抑制后低氧條件下PASMCs中caspase-3表達(dá)水平變化(熒光顯微鏡×800)

        2.4低氧下PASMCs凋亡通路中多種凋亡因子表達(dá)水平及與ARC的關(guān)系 低氧作用48 h后,低氧組caspase-3 mRNA表達(dá)水平較常氧組顯著增加,且內(nèi)源性促凋亡因子Bad、 Fadd表達(dá)顯著增加,抗凋亡因子Bcl-2表達(dá)顯著下降,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。ARC-siRNA+低氧組與Negative-siRNA+低氧組比較,caspase-3和Fadd表達(dá)均顯著增加,Bcl-2表達(dá)則顯著下降(P<0.05),而Bad表達(dá)無明顯變化(P>0.05),見圖4。

        a:P<0.05,與常氧組比較;b:P<0.05 ,與Negative-siRNA+低氧組比較

        圖4ARC表達(dá)抑制后低氧條件下凋亡因子表達(dá)水平變化

        3 討 論

        低氧性肺動(dòng)脈高壓是由低氧血癥引起的肺動(dòng)脈壓力升高,是一種慢性進(jìn)行性疾病,其主要病理特征為肺動(dòng)脈壓力持續(xù)增高、肺動(dòng)脈壁的增厚及血管肌化,目前其治療手段和效果有限,預(yù)后極差,常導(dǎo)致患者右心心力衰竭而死亡[1]。其中低氧是該病發(fā)生的最主要原因。肺動(dòng)脈血管收縮、肺血管重構(gòu)及微血管損傷是低氧性肺動(dòng)脈高壓的主要發(fā)病機(jī)制[2]。低氧性肺血管重建是低氧性肺動(dòng)脈高壓的主要病理改變,PASMCs是構(gòu)成肺動(dòng)脈壁的主要細(xì)胞,PASMCs增殖和凋亡失衡是肺血管重塑的主要機(jī)制,而細(xì)胞活力的變化能從側(cè)面說明反映細(xì)胞增殖凋亡情況。

        ARC是1998由KOSEKI等[4]首次發(fā)現(xiàn)并命名是一種高效及多功能的調(diào)節(jié)內(nèi)外源性凋亡途徑的抗凋亡因子。ARC含有兩個(gè)功能區(qū)域:CARD和P/E,CARD區(qū)同凋亡因子caspase的CARDS區(qū)及凋亡受體蛋白RAIDD和Apaf-1具有同源性。ARC通過與caspase或其受體蛋白之間的相互作用來調(diào)節(jié)凋亡信號,維持其線粒體膜電位的穩(wěn)定,抑制線粒體釋放活性氧[5]。在心肌細(xì)胞缺血再灌注模型中,ARC缺陷的小鼠,心肌細(xì)胞損傷更加顯著[6-7]。而過表達(dá)ARC可保護(hù)心肌因缺血再灌注引起的損傷[8-9]。ARC參與細(xì)胞程序性死亡、凋亡、遷移等行為的調(diào)控,維持線粒體膜電位的穩(wěn)定[5,10-13]。

        本研究發(fā)現(xiàn)ARC在PASMCs表達(dá),對于低氧性肺動(dòng)脈高壓研究顯示,低氧促進(jìn)PASMCs活力,凋亡減少,增殖增加[14],在肺血管重塑中發(fā)揮著重要作用,這與本研究的研究結(jié)果相符。本研究用轉(zhuǎn)染法將外源性siRNA導(dǎo)入PASMCs構(gòu)建ARC干擾模型,在經(jīng)過體外轉(zhuǎn)染PASMCs并做篩選后,選定轉(zhuǎn)染效率最好的靶點(diǎn)2(ARC-siRNA2),采用免疫熒光來檢查轉(zhuǎn)染結(jié)果,結(jié)果顯示ARC表達(dá)顯著降低,說明轉(zhuǎn)染模型構(gòu)建成功。研究結(jié)果顯示ARC對PASMCs活力可能具有一定的增強(qiáng)作用,低氧下PASMCs細(xì)胞活力較常氧下增加。低氧下,當(dāng)ARC受到抑制時(shí),細(xì)胞活力受抑制;本研究顯示這一結(jié)果可能與多種因子相互作用有關(guān),當(dāng)ARC表達(dá)被抑制時(shí),促凋亡因子caspase-3和Fadd表達(dá)顯著增加,抗凋亡因子Bcl-2的表達(dá)降低,而促凋亡因子Bad無明顯變化。

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