安文藝,雷佳琦,董元洋,武 威,劉 璇,邵玉新,張炳坤
(中國農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,動物營養(yǎng)學(xué)國家重點實驗室,北京100193)
肉仔雞生長快,飼養(yǎng)集約化程度高、密度大,致其免疫力低下,抗病力差,易受到各種病原菌侵襲??股卦诟纳菩笄菝庖吡蜕a(chǎn)性能方面做出重要貢獻[1],但抗生素在畜禽飼料中的禁用勢在必行,尋找抗生素替代物以改善畜禽免疫力成為當(dāng)今畜牧業(yè)關(guān)注的熱點。殼寡糖(Chitooligosaccharides, COS)是目前發(fā)現(xiàn)的自然界中唯一堿性功能寡糖,有來源廣、分子量小、活性高等優(yōu)點,在調(diào)節(jié)腸道微生物區(qū)系、提高機體免疫力和改善動物生長性能方面均有顯著效果。研究顯示,COS可提高肉仔雞胸腺指數(shù)和法氏囊指數(shù),降低腸道中大腸桿菌數(shù),促進肉仔雞生長[2-3]。屎腸球菌(Enterococcus faeciums,PNC)是人和動物腸道菌群組成成員,可代謝產(chǎn)生有機酸、過氧化氫和細菌素等,降低腸道pH,抑制病原菌,有益生特性[4]。研究表明,PNC 可促進肉雞生長,緩解大腸桿菌和沙門氏菌導(dǎo)致的肉仔雞生產(chǎn)性能下降,并提高血清中IgA 含量,增加盲腸生物多樣性,改善腸道微生物組成[5-6]。
脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)是革蘭氏陰性菌細胞壁的重要組分,是免疫系統(tǒng)的有效激活劑,廣泛應(yīng)用于炎癥反應(yīng)模型構(gòu)建。研究表明,LPS 刺激降低肉仔雞生長性能,誘發(fā)全身炎癥反應(yīng),導(dǎo)致IL-1β 等表達量上升[7-8],COS 抑制LPS 刺激的RAW 264.7 細胞中促炎介質(zhì)如IL-1β 和NO 產(chǎn)生[9]。目前,關(guān)于COS 與PNC 聯(lián)合使用的報道較少,但已發(fā)現(xiàn)COS 可促進益生菌增殖[10],二者同時添加或能更好地發(fā)揮益生作用。因此,本試驗用LPS 構(gòu)建炎癥反應(yīng)模型,多次注射模擬細菌感染,探究COS 與PNC 對LPS 誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)的作用效果,為其在肉雞飼糧中的應(yīng)用提供理論依據(jù)。
1.1 試驗材料 COS 為寡糖素COS(II),化學(xué)名稱為寡聚β-(1-4)-2- 氨基-2- 脫氧-D- 葡萄糖,聚合度2~10。寡糖素COS(II)(以下簡稱COS)產(chǎn)品是以甲殼類動物多糖為原料,采取酶法降解殼聚糖與膜分離結(jié)合技術(shù)生產(chǎn)的一種吸收性寡糖,含COS10%,載體為麥芽糊精。
PNC 為實驗室保藏雞源屎腸球菌PNC01[11],將保藏菌種用MRS 培養(yǎng)基培養(yǎng)3 代后,發(fā)酵、噴粉,以稻殼為載體,有效含量為5×1010CFU/g。
1.2 試驗動物及日糧 選取1 日齡健康且體重相近的AA公雛560 羽,采用2(LPS 刺激/非LPS 刺激)×2(添加COS/不添加COS)×2(添加PNC/不添加PNC)三因素試驗設(shè)計,共8 個處理,每處理7 重復(fù),每重復(fù)10只雞(各籠雞平均體重為雞群平均體重±3%),試驗期21 d。試驗飼糧參照《雞營養(yǎng)需要》(NY/T 33-2004),結(jié)合《AA 肉雞飼養(yǎng)管理手冊》配制,呈粉狀,基礎(chǔ)日糧組成和營養(yǎng)成分見表1。采用玉米-豆粕型基礎(chǔ)飼糧,試驗飼糧分別在基礎(chǔ)日糧基礎(chǔ)上添加COS(200 mg/kg)和PNC(1×109CFU/kg)。
表1 基礎(chǔ)日糧組成和營養(yǎng)成分(風(fēng)干基礎(chǔ))
1.3 LPS 刺激與飼養(yǎng)管理 試驗用LPS 為大腸桿菌源脂多糖,購自Sigma-Aldrich(美國),于試驗雞17、19和21 日齡早晨每只雞腹腔注射1 mg/kg BW 的LPS,對照組腹腔注射生理鹽水。
動物飼養(yǎng)試驗于中國農(nóng)業(yè)大學(xué)家禽試驗基地進行,肉仔雞3 層籠養(yǎng),自由采食和飲水,常規(guī)免疫。每天觀察溫度、濕度變化和采食情況,記錄死亡情況。
1.4 樣品采集與指標(biāo)測定 于試驗雞21 日齡,每重復(fù)隨機選取1 只健康且接近平均體重的雞,于腹腔注射LPS 3 h 后,稱活重,翅靜脈無菌采血,頸靜脈放血致死,分離肝臟、脾臟、法氏囊和胸腺后稱重。取脾臟和回腸組織樣于2 mL RNAase free 管中,液氮速凍,-80℃保存待測。取盲腸食糜于5 mL 離心管,-80℃保存,測定短鏈脂肪酸(SCFA)含量。
1.4.1 生長性能 試驗開始,第17 天和21 天早晨以重復(fù)為單位稱取空腹重,用于生長性能的統(tǒng)計。計算階段采食量、體增重和耗料增重比(采食量/體增重)。
1.4.2 器官指數(shù) 根據(jù)肝臟、脾臟、法氏囊和胸腺的重量和雞只活重,計算器官指數(shù):器官指數(shù)=器官重(g)/宰前活重(kg)。
1.4.3 腸道組織形態(tài) 回腸組織樣品經(jīng)10%中性甲醛固定后,用石蠟包埋,制作石蠟切片,PAS 染色后進行腸道形態(tài)的觀測。用活細胞工作站進行絨毛高度和隱窩深度的測定。每個切片選取10 根完整且平直的絨毛和對應(yīng)的10 個隱窩深度,絨毛高度為絨毛頂端到隱窩入口處的垂直距離,隱窩深度為隱窩入口到絨毛基部的垂直距離。
1.4.4 血清中IgA 含量測定 翅靜脈無菌采血2 mL,4℃,3 000 r/min 離心15 min,分離所得血清-20℃保存待測。用雙抗夾心ELISA 法測定血清中IgA,試劑盒購自美國Bethyl 公司,測定方法參照說明書,血清稀釋8 000 倍測定,用ELISA calc 軟件繪制標(biāo)準曲線。
1.4.5 脾臟和回腸mRNA 表達量測定 總RNA 采用RNAiso Plus 試劑(TaKaRa,日本)提取,步驟參見Wang 等[8]。RNA 濃度和純度采用Nanodrop 2000 測定,用0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢查其完整性,濃度、純度和完整性均符合要求的RNA 進行反轉(zhuǎn)錄。反轉(zhuǎn)錄采用PrimeScript?RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)試劑(TaKaRa,日本)。操作按照試劑盒說明書進行,取910 ng RNA 反轉(zhuǎn)錄為cDNA,-30 ℃保存?zhèn)溆?。qPCR 在7500 熒光定量PCR 儀(Applied Biosystems,F(xiàn)oster City, California, USA)上進行,試劑為SYBR?Premix Ex Taq?(TaKaRa,日本)。PCR反應(yīng)條件參考試劑盒說明書。反應(yīng)結(jié)束后用熔解曲線和瓊脂糖凝膠電泳檢測表達產(chǎn)物的特異性。用2-ΔΔCt計算相對表達量,目的基因及內(nèi)參基因的引物序列見表2。
1.4.6 盲腸食糜中SCFA 含量的測定 取盲腸凍存樣品,用剪刀剪開腸壁取0.1 g 左右于10 mL 離心管,加入5 mL鹽酸甲酸混合液,200 μg 內(nèi)標(biāo)溶液,鋼珠2 顆,迅速放回;置于冰上1 h,并間歇震蕩混勻;14 000 r/min離心20 min;用2 mL 注射器吸取1 mL 左右離心上清液,通過0.2 μm 的濾膜過濾至2 mL 樣品瓶中。用氣象色譜(SCION-456-GC)檢測,使用氮氣作為載氣,流速為20 mL/min,氫氣流量為30 mL/min,空氣流量為300 mL/min。將檢測器和注射器溫度分別加熱至230℃和200℃,進樣量為2 μL,測定乙酸、丙酸和丁酸含量。結(jié)果表示為每克食糜樣品中SCFA 的微克數(shù)(μg/g)。
表2 Real-time PCR 引物序列
1.5 統(tǒng)計分析 數(shù)據(jù)經(jīng)Excel 2007 處理后,采用SPSS 18.0 一般線性模型(GLM)分析;當(dāng)LPS 刺激、COS與PNC 處理的交互作用顯著時,做單因素方差分析,當(dāng)組間差異顯著時,采用Duncan's 結(jié)合LSD 多重比較進行分析,P<0.05 表示差異顯著,P<0.01 表示差異極顯著。試驗結(jié)果用平均值和SEM(標(biāo)準誤)表示。
2.1 COS 和PNC 對肉仔雞生長性能的影響 由表3 可知,各處理組肉仔雞0~17 d 的生長性能無顯著差異。由表4 可知,LPS 刺激降低了肉仔雞17~21 d 采食量(P<0.01),有提高耗料增重比的趨勢,對體增重及0~21 d 生長性能無顯著影響。添加COS 可緩解LPS 刺激下的采食量下降(P<0.05),提高0~21 d 肉仔雞體增重(P<0.05),有提高0~21 d 采食量并降低耗料增重比的趨勢。COS 與PNC 對0~21 d 肉仔雞的體增重和采食量交互作用顯著(P<0.05):在非LPS 刺激條件下,同時添加COS 和PNC 較單獨添加PNC 可提高肉仔雞體增重和采食量(P<0.05),但刺激條件下各日糧處理組差異不顯著。LPS、COS 和PNC 三因素互作對生產(chǎn)性能無顯著影響。
2.2 COS 和PNC 對肉仔雞器官指數(shù)的影響 由表5 可知,LPS 刺激提高21 d 肉仔雞肝臟和脾臟指數(shù)(P<0.01),對胸腺指數(shù)無顯著影響。COS 可降低21 d 肉仔雞脾臟指數(shù)(P<0.05),PNC 可降低21 d 肉仔雞脾臟指數(shù)(P<0.01)。LPS、COS 和PNC 三因素互作對法氏囊指數(shù)有顯著差異(P<0.05),LPS 刺激降低肉仔雞法氏囊指數(shù)(P<0.05),單獨或同時添加COS 和PNC 均能緩解法氏囊指數(shù)降低。
表3 COS 和PNC 對LPS 刺激前(0~17 d)肉仔雞生長性能的影響
表4 COS 和PNC 對LPS 刺激后(17~21 d)和全期(0~21 d)肉仔雞生長性能的影響
2.3 COS 和PNC 對肉仔雞腸道形態(tài)的影響 由表6 可知,LPS 刺激降低21 d 肉仔雞回腸絨毛高度和隱窩深度(P<0.01),對絨毛高度/ 隱窩深度無顯著影響;PNC 降低21 d 肉仔雞回腸隱窩深度(P<0.05),對絨毛高度和絨毛高度/隱窩深度無顯著影響;COS 及各因素互作對腸道形態(tài)無顯著影響。
表5 飼糧中添加COS 和PNC 對肉仔雞免疫器官指數(shù)的影響 g/kg BW
2.4 COS 和PNC 對肉仔雞血清IgA 含量的影響 由表7可知,LPS 刺激降低21 d 肉仔雞血清IgA 含量(P<0.05),COS 降低21 d 肉仔雞血清IgA 含量(P<0.05),PNC可提高21 d 肉仔雞血清IgA 含量(P<0.05),各因素互作對血清IgA 含量無顯著影響。
2.5 COS 和PNC 對肉仔雞脾臟和回腸mRNA 相對表達量的影響 由表8 可知,LPS 刺激提高肉仔雞脾臟和回腸IL-1β 和脾臟IL-8 mRNA 表達量(P<0.01),降低脾臟TLR4 mRNA 表達量(P<0.01),對NF-κB mRNA 表達量無顯著影響;COS 有降低脾臟IL-1β 表達量的趨勢(P=0.097),降低LPS 刺激后IL-8 mRNA表達量(P<0.05)。PNC 及各因素互作對各基因表達量無顯著影響。
表6 飼糧中添加COS 和PNC 對肉仔雞回腸形態(tài)的影響
2.6 COS 和PNC 對肉仔雞盲腸SCFA 含量的影響 由表9 可知,LPS 刺激降低21 d 肉仔雞盲腸食糜中丁酸含量(P<0.05),對盲腸食糜中乙酸和丙酸含量無顯著影響。COS 提高盲腸食糜中丙酸和丁酸含量(P<0.05),有提高乙酸含量的趨勢。LPS 和PNC 對盲腸食糜中乙酸含量交互作用顯著(P<0.05);非LPS 刺激條件下,同時添加COS 和PNC 增加盲腸食糜中乙酸含量(P<0.05),LPS 刺激條件下,添加PNC 降低盲腸食糜中乙酸含量(P<0.05)。各因素互作對丙酸和丁酸含量無顯著交互作用。
3.1 COS 和PNC 對肉仔雞生長性能的影響 益生菌與益生元是重要的抗生素替代物。前人研究表明,COS單獨添加及與干酪乳桿菌共同添加可顯著提高肉仔雞的平均日增重[12]。COS 的免疫調(diào)節(jié)效果以及雞源PNC的促生長效果均已經(jīng)被證實[9,11],但同時添加COS 和PNC 的免疫調(diào)節(jié)功能有待探究。本試驗通過LPS 多次刺激肉仔雞,建立肉仔雞炎癥反應(yīng)模型,以探究COS和PNC 的免疫調(diào)節(jié)作用。LPS 刺激導(dǎo)致免疫應(yīng)激,研究表明,LPS 刺激提高肉雞肝臟的相對重量,降低體重和飼料利用率,還可影響骨骼代謝,降低脛骨重量與脛骨強度,增加骨骼的分解代謝,改變機體組成成分[13];另外,LPS 刺激還會消耗營養(yǎng)物質(zhì)用于細胞因子等分泌,造成分解代謝增強,合成代謝減弱[14]。本試驗發(fā)現(xiàn),LPS 刺激降低肉仔雞17~21 d 采食量,COS 可以提高應(yīng)激狀態(tài)下的采食量,改善體增重,降低了LPS 對肉仔雞生長的不良影響。
表7 飼糧中添加COS 和PNC 對肉仔雞血清IgA 的影響
3.2 COS 和PNC 對肉仔雞器官指數(shù)的影響 肝臟是急性期蛋白合成的場所,脾臟則是機體重要的外周免疫器官,是免疫感應(yīng)發(fā)生的重要場所,二者相對指數(shù)增加有利于提高抗原清除速度。研究發(fā)現(xiàn),LPS 多次刺激顯著提高肉仔雞肝臟和脾臟的器官指數(shù)[7]。本試驗發(fā)現(xiàn)添加COS 和PNC 可抑制LPS 刺激后脾臟指數(shù)上升。法氏囊則是禽類特有的中樞免疫器官,可產(chǎn)生B 淋巴細胞,從而產(chǎn)生特異性抗體完成特定免疫應(yīng)答。本試驗發(fā)現(xiàn),COS 可緩解LPS 刺激后法氏囊萎縮,這與Deng 等[15]發(fā)現(xiàn)的COS 促進法氏囊發(fā)育的報道相一致。
表8 飼糧中添加COS 和PNC 對肉仔雞脾臟mRNA 表達量的影響
3.3 COS 和PNC 對肉仔雞腸道組織形態(tài)的影響 肉仔雞生長早期,持續(xù)的LPS 刺激會降低腸道的生長速度和腸道上皮細胞的增殖速度,進而降低肉仔雞十二指腸和空腸的絨毛高度和隱窩深度,進而降低腸道的吸收能力[16]。本試驗中LPS 刺激后肉仔雞回腸形態(tài)被破壞,肉仔雞生長性能下降。一般來說,回腸更接近后腸段,pH 更高,食糜流通速度慢,更易受到微生物影響,進而通過改變SCFA 含量,尤其是丁酸含量來改變腸道形態(tài),然而本試驗條件下COS 和PNC 沒有顯著改善LPS 造成的腸道形態(tài)改變。
3.4 COS 和PNC 對肉仔雞血清IgA 含量的影響 IgA是在體液免疫應(yīng)答中發(fā)揮重要作用的免疫分子,也是外分泌液中主要的免疫球蛋白,具有抗菌、抗病毒和抗毒素作用,而應(yīng)激反應(yīng)會導(dǎo)致IgA 水平的波動。Huang 等[17]研究發(fā)現(xiàn),添加COS 可提高肉雞血清中IgA 水平,與本試驗結(jié)果有差異,這可能與添加水平和殼寡糖組分有關(guān)。據(jù)報道,PNC 可提高肉仔雞血清中IgA 水平[6],與本試驗結(jié)果一致,表明添加PNC 可提高肉仔雞體液免疫水平,這可能與其對肉仔雞腸道微生物區(qū)系的改善有關(guān),也可能是PNC 作為抗原通過樹突細胞和巨噬細胞等上調(diào)了機體體液免疫水平。
表9 飼糧中添加COS 和PNC 對肉仔雞盲腸食糜中SCFA 含量的影響 μg/g
3.5 殼寡糖和PNC 對肉仔雞脾臟和回腸mRNA 相對表達量的影響 Takahashi 等[18]研究發(fā)現(xiàn),LPS 刺激后2~4 h,脾臟中炎癥相關(guān)因子IL-1β mRNA 相對表達量先升高后降低,且在刺激后3 h 達到峰值,而脾臟TLR4 的表達量在刺激后4 h 內(nèi)持續(xù)下降,與本試驗結(jié)果一致。IL-1β 是重要的促炎細胞因子,IL-8 是重要的趨化因子,可以募集異噬細胞,用于抗原清除,COS 降低IL-1β 和IL-8 表達可能有利于抑制過度的炎癥反應(yīng),避免機體損傷。研究證實,COS 抑制LPS 與TLR4/MD-2 受體復(fù)合物結(jié)合,快速磷酸化ERK、JNK和p38,降低MAPK 的活化,減少NF-κB 核易位,最終使LPS 刺激的RAW 264.7 細胞中促炎介質(zhì)(如IL-1β、NO 等)產(chǎn)生減少[9]。Lin 等[19]在研究COS 對血管內(nèi)皮細胞的抗炎作用時得到了相似結(jié)果。本試驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),殼寡糖降低IL-1β 基因表達,卻未見對NF-κB表達量的顯著影響,其具體機制仍需探究;而LPS 多次刺激降低TLR4 基因表達,這可能是LPS 多次刺激引起了免疫耐受,炎癥反應(yīng)弱化[7]。
3.6 殼寡糖和PNC 對肉仔雞盲腸SCFAs 含量的影響免疫應(yīng)激影響腸道微生物區(qū)系[20]。腸道中SCFA 主要由微生物發(fā)酵未消化的碳水化合物產(chǎn)生,腸道微生物區(qū)系影響SCFA 含量及組成。本研究顯示,LPS 刺激后盲腸丁酸含量顯著降低,可能是由于LPS 刺激擾亂了腸道微生物區(qū)系,使發(fā)酵產(chǎn)生SCFA 的厭氧菌含量下降,從而降低了盲腸SCFA 含量。丁酸可抑制IκB 降解,降低NF-κB 表達,從而抑制IL-1β 產(chǎn)生,這可能是LPS刺激后IL-1β 表達增加的原因之一。COS 顯著提高盲腸食糜中丙酸和丁酸含量,丁酸和丙酸在不同生理濃度共同存在情況下,其生物學(xué)作用十分復(fù)雜,丁酸對基因表達影響最大,丙酸次之[21]。丁酸鹽抑制NF-κB 的核轉(zhuǎn)錄及與DNA 的結(jié)合,或誘導(dǎo)IκB-β 高表達抑制NF-κB表達,抑制NF-κB 信號通路的激活,緩解炎癥反應(yīng)[22],這可能是COS 抑制炎癥反應(yīng)發(fā)生的途徑之一,但目前缺乏家禽上SCFAs 受體的報道,因此關(guān)于其相互作用機制還有待進一步探究。
本試驗發(fā)現(xiàn),添加COS(200 mg/kg)可提高盲腸中SCFA 含量,可改善LPS 刺激肉仔雞的生長性能改變;添加PNC(1×109CFU/kg)可改善機體體液免疫;二者均能緩解LPS 刺激導(dǎo)致的脾臟腫大和IL-1β mRNA 表達增加,緩解機體炎癥反應(yīng),改善LPS 刺激對肉仔雞的不利影響。