鄭海亮 王東方 方雅 刁小偉 文勇,2 袁云霞,2
(1. 江蘇奧賽康生物醫(yī)藥有限公司,南京 211112;2. 江蘇奧賽康藥業(yè)股份有限公司,南京 211112)
核因子 -κB(Nuclear factor kappa B,NF-κB)是由Sen和Baltimor首次從B淋巴細胞核提取物中發(fā)現(xiàn)的一種蛋白因子,能夠與免疫球蛋白κ輕鏈的κB序列相結(jié)合[1]。NF-κB蛋白家族包括5個亞基:NF-κB1(P50)、NF-κB2(P52)、RelA(P65)、Rel(c-REL)和RelB,這些亞基能夠形成同源或異源二聚體存在于細胞質(zhì)中,其中以P50-P60形式最為常見。這些二聚體通常與抑制因子IκB(Inhibitor of NF-κB)結(jié)合,形成復(fù)合物,處于非激活狀態(tài)。當(dāng)受到刺激因素如腫瘤壞死因子(Tumor necrosis factor-α,TNF-α)、 病 毒、 氧 自 由 基、 脂 多 糖(Lipopolysaccharides,LPS)等刺激時,復(fù)合物被激活,解離出NF-κB并轉(zhuǎn)移至細胞核中與相應(yīng)的位點結(jié)合啟動基因轉(zhuǎn)錄[2]。此外,NF-κB參與成纖維細胞生長因子受體(Fibroblast growth factor receptor,F(xiàn)GFR)[3]、表皮生長因子受體(Epidermal growth factor receptor,EGFR)[3]、神經(jīng)生長因子受體(Nerve growth factor receptor,NGFR)[4]、 白 介 素 -1 受 體(Interleukin-1 receptor,IL-1R)[5-6]、CD40[7]等 受體或受體家族信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程,是眾多信號通路的交匯點,能夠與多種細胞因子基因的啟動子或增強子相結(jié)合,參與調(diào)控細胞增殖、分化、炎癥和凋亡等過程。
報告基因(Reporter gene)是指編碼易于被檢測的酶或蛋白的基因,通常插入到表達調(diào)節(jié)序列當(dāng)中,或與目的基因相連接形成嵌合序列。由于報告基因法作用迅速,往往只需要幾個小時即可獲取到檢測結(jié)果,在體外藥物篩選中可實現(xiàn)高通量操作,因此備受關(guān)注[8]。常用的報告基因包括熒光素酶(Luciferase)、熒光蛋白和β-半乳糖苷酶等。熒光素酶是指來源于自然界能夠發(fā)光的生物體內(nèi),可以催化熒光素氧化發(fā)光的一類酶的總稱,具有非放射性、靈敏度高、反應(yīng)迅速、半衰期長等優(yōu)點。截至目前,應(yīng)用最為廣泛的是來自于螢火蟲和發(fā)光海腎的熒光素酶。螢火蟲熒光素酶是一個單亞基蛋白,穩(wěn)定性好且不需要進行翻譯后修飾,可用于報告基因系統(tǒng)[9]。
在本研究中,構(gòu)建了NF-κB-RE-Luc2P HEK293單克隆細胞系,由于NF-κB涉及細胞內(nèi)多條信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,因此可用于NF-κB激活相關(guān)的藥物活性檢測,可進行改造和應(yīng)用。本研究中以FGFRⅡ為例,對其擴展應(yīng)用進行了初步驗證。
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1.2.1 HEK293細胞培養(yǎng) 病毒感染前1 d,采用0.25%胰酶消化,將處于對數(shù)生長期的細胞制備成單細胞懸液并計數(shù),以1.6×104/mL細胞濃度接種24孔培養(yǎng)板,細胞數(shù)目為8×104/孔,在37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中過夜培養(yǎng)。
1.2.2 病毒感染HEK293細胞 根據(jù)病毒感染使用說明,取一支病毒懸液于4℃ 解凍。移除24孔培養(yǎng)板中培養(yǎng)基,依次緩慢加入相應(yīng)體積10%FBS+DMEM 培養(yǎng)基,完全解凍的病毒懸液,感染輔助試劑SURE-entry(終濃度=8 μg/mL),輕輕搖勻,37℃、5% CO2細胞培養(yǎng)箱中放置6-8 h,鏡下觀察細胞生長狀態(tài)良好,繼續(xù)培養(yǎng)72-96 h。
1.2.3 加壓篩選及單克隆細胞株分離培養(yǎng) 培養(yǎng)72-96 h后,更換為選擇培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),間隔每2-3 d換液,篩選時間約2-3周,細胞融合度達到約90%時擴大培養(yǎng)至75 cm2細胞瓶,凍存多克隆細胞系。多克隆細胞復(fù)蘇培養(yǎng)后進行單克隆篩選,以5/mL細胞濃度接種96孔培養(yǎng)板,每孔細胞數(shù)目為0.5個,24 h后鏡下觀察,挑選只含有單個細胞的細胞孔,間隔3-4 d換液,篩選時間約3周,細胞融合度達到約90%時消化細胞并逐漸擴大培養(yǎng)至75 cm2細胞瓶,凍存單克隆細胞系。
1.2.4 RT-QPCR 取 1×106個 FGFR Ⅱ /NF-κB-RELuc2P HEK293細胞提取RNA并測定RNA濃度。RNA反轉(zhuǎn)錄形成cDNA,反應(yīng)體系為 1 μg RNA,4 μL 5× prime script buffer,1 μL Oligo DT primer,1 μL Oligo DT primer Random 6mers,補 H2O 至 20 μL。QPCR 反 應(yīng) 體 系 為 12.5 μL SYBRGREEN I matrix,1 μL正向引物,1 μL反向引物,5 μL cDNA,補H2O至25 μL。引物序列:目的基因FGFRⅡ-F/R,CTCAAGCACTCGGGGATAAA/ CTGTTTTGGCAGGA-CAGTGA;內(nèi)參基因Beta-actin-F/R,CATCGAGCACGGCATCGTCA/ TAGCACAGCCTGGATAGCAAC。反應(yīng)程序為 95℃,15 s,40個循環(huán);60℃,15 s,70℃,10 s。2-ΔΔCt方法計算基因相對表達量。
1.2.5 細胞系熒光素酶活性檢測 取對數(shù)生長期的 NF-κB-RE-Luc2P HEK293 或 FGFR Ⅱ /NF-κB-RELuc2P HEK293細胞,消化計數(shù),用工作培養(yǎng)基1%FBS+DMEM 稀釋至 4×105個 /mL,轉(zhuǎn)移 100 μL到96孔板中,細胞數(shù)目4×104個/孔,過夜培養(yǎng)。TNF-α刺激 NF-κB-RE-Luc2P HEK293細胞,生長培養(yǎng)基2倍梯度稀釋TNF-α(100 ng/mL,共12個濃度梯度,每孔100 μL加入96孔板中;FGF融合蛋白刺激FGFRⅡ/NF-κB-RE-Luc2P HEK293細胞,工作培養(yǎng)基4倍梯度稀釋FGF融合蛋白(50 ng/mL),共10個濃度梯度,每孔100 μL加入96孔板中;37℃、5%CO2孵育6 h后,每孔加入One-Glo 50 μL,室溫反應(yīng)5 min,放入酶標儀讀數(shù),實驗結(jié)果采用四參數(shù)擬合。
1.2.6 統(tǒng)計分析 每組實驗均重復(fù)3次或3次以上,所獲得的數(shù)據(jù)均以平均值±標準差形式進行表示,數(shù)據(jù)均采用Graph-pad Prism5軟件進行分析,不同數(shù)據(jù)間對比采用t檢驗法,當(dāng)P<0.05時差異顯著(*),當(dāng)P<0.01時差異極顯著(**表示P<0.01,***表示P<0.001)。
在NF-κB-RE-Luc2P慢病毒感染HEK293實驗中,MOI分別設(shè)置了0、5、10、15和20等5個梯度,實驗結(jié)果(圖1-A)表明,MOI為10-20時轉(zhuǎn)染效果較好,其中又以MOI=15轉(zhuǎn)染效率最高。當(dāng)MOI=15時,用NF-κB-RE-Luc2P慢病毒感染細胞,所獲得的多克隆細胞接種于96孔板中,進行功能驗證。加入20 ng/mL TNF-α刺激6 h后,采用One-Glo化學(xué)發(fā)光法進行檢測,信噪比可達到20.2倍(P=0.007 3)(圖 1-B),結(jié)果表明 NF-κB-RE-Luc2P慢病毒已成功感染HEK293細胞。
為了進一步得到穩(wěn)定傳代的細胞系,多克隆細胞NF-κB-RE-Luc2P HEK293采用有限稀釋法進行單克隆分離培養(yǎng),使用Puromycin加壓篩選。經(jīng)過加壓與分離培養(yǎng),成功地獲得了NF-κB-RE-Luc2P HEK293單克隆穩(wěn)定表達細胞系。將獲取的單克隆細胞鋪到96孔板,進行功能驗證。TNF-α(100 ng/mL起始,2倍梯度稀釋)刺激6 h,采用One-Glo化學(xué)發(fā)光法進行檢測。數(shù)據(jù)顯示(圖2-A),響應(yīng)值與TNF-α濃度可擬合成劑量依賴的“S”型曲線,當(dāng)TNF-α濃度為20 ng/mL時與對照組相比,信噪比可達到113.7倍以上(P<0.001)(圖2-B)。結(jié)果表明,本研究成功獲得NF-κB-RE-Luc2P HEK293單克隆細胞系。
圖1 MOI及病毒感染驗證
為了證明NF-κB-RE-Luc2P HEK293單克隆細胞系改造后可用于藥物活性檢測,將此細胞系感染FGFRⅡ受體,按照同樣的單克隆篩選流程,使用Puromycin和Hygromycin加壓培養(yǎng),獲得單克隆細胞 FGFR Ⅱ /NF-κB-RE-Luc2P HEK293。RT-QPCR檢測FGFRⅡ mRNA表達水平,其表達水平顯著高于對照組細胞,比值可達到204倍(204.2∶1)(圖3-A),結(jié)果表明,F(xiàn)GFRⅡ成功導(dǎo)入到NF-κB-RELuc2P HEK293,并可穩(wěn)定表達。
為了進步驗證此細胞系的藥物檢測功能,選用FGF7類蛋白藥物Palifermin?,梯度稀釋后加入到此細胞系中,結(jié)果(圖3-B)顯示,響應(yīng)值與Palifermin?濃度呈劑量依賴型S曲線,表明該細胞系可用于FGF7蛋白藥物活性檢測。
圖2 NF-κB-RE-luc2P HEK293細胞系TNF-α刺激實驗
圖3 FGFR II/NF-κB-RE-Luc2P HEK293細胞系鑒定
隨著生物技術(shù)藥物的發(fā)展與檢測手段的不斷革新,熒光素酶報告基因法憑借其靈敏度高、簡便可靠等技術(shù)優(yōu)點越來越受業(yè)內(nèi)關(guān)注,已逐漸成為藥物篩選及體外活性檢測的發(fā)展趨勢。然而,針對不同生物靶點的藥物篩選及藥物活性檢測,往往需要對其適配的工程細胞系進行單獨構(gòu)建或定制,人力、物力及時間成本投入較大。因此,在一定程度上具備通用性的細胞系就顯得尤為必要。
NF-κB信號通路與機體免疫、炎癥反應(yīng)和細胞生長及分化緊密相關(guān),以NF-κB及其信號通路為靶標的藥物可用于腫瘤和炎癥的預(yù)防與治療。如NF-κB特異性抑制劑藥物(Dehydroxymethylepoxyquinomicin,DHMEQ),在肺癌[10]、肝癌[11]、乳腺癌[12]和多發(fā)性骨髓瘤[13]的體內(nèi)外研究中均取得了理想的研究結(jié)果,又如地塞米松、阿司匹林和舒林酸等抗炎藥物,也是通過阻斷NF-κB通路發(fā)揮其抗炎效果[14]。除此之外,NF-κB還廣泛參與TNFR、FGFR、EGFR、NGFR、IL-1R和CD40等受體或受體家族的調(diào)節(jié)過程,是眾多信號通路的交匯點[15-16],因此該細胞系在這類靶點相關(guān)藥物的篩選及檢測中,具備通用性。
細胞系構(gòu)建及篩選是一個復(fù)雜而又繁瑣的實驗過程。在本研究中,以慢病毒為載體,攜帶目的基因進行感染HEK293,由于病毒感染的過程對細胞具有一定損傷作用,因此實驗時必須保證HEK293維持在較好的細胞狀態(tài),如待用培養(yǎng)基必須37℃預(yù)熱、病毒及SURE-entry的添加必須輕柔避免細胞脫落等。在單克隆篩選實驗中,本研究采用的是有限稀釋法進行分離培養(yǎng),因此在克隆挑選時必須在細胞發(fā)生分裂前進行,此時細胞孔內(nèi)僅有單個細胞,從而可以保證所獲得的細胞系均為單一克隆。
在本研究中,以NF-κB-RE-Luc2P慢病毒為載體,經(jīng)感染、抗生素加壓與單克隆分離培養(yǎng)成功獲得了NF-κB-RE-Luc2P單克隆細胞系,該細胞系可直接用于以TNF-α或其受體家族為靶點的藥物篩選及活性檢測,如類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎靶向治療藥物Humira?及其生物類似藥等[17]。同時本研究還奠定了以NF-κBRE-Luc2P HEK293細胞系為基礎(chǔ),針對不同的研究需求繼續(xù)進行改造和完善的方案,繼續(xù)引入EGFR、FGFR、NGFR等受體,可用于后續(xù)的相關(guān)藥物活性檢測。如本研究成功導(dǎo)入了受體FGFRⅡ,獲得了FGFRⅡ/NF-κB-RE-Luc2P HEK293細胞系,進行了體外FGF類藥物驗證實驗,結(jié)果表明該細胞系可用于FGF類藥物的活性檢測。
在本研究中,采用慢病毒感染方法成功構(gòu)建了NF-κB-RE-Luc2P HEK293細胞系,該細胞系可直接用于以TNF-α或其受體家族為靶點的藥物篩選及活性檢測。同時,由于NF-κB還涉及EGFR、FGFR、NGFR、IL-1R和CD40等受體或受體家族介導(dǎo)的多條信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,以此細胞系為基礎(chǔ)感染FGFR家族的受體FGFRⅡ,并進行了初步確證,結(jié)果表明響應(yīng)值與藥物Palifermin?呈現(xiàn)濃度依賴型“S”型曲線,可用于該類藥物活性檢測。綜上所述,本研究成功獲得了穩(wěn)定表達的NF-κB-RE-Luc2P HEK293細胞系。由于NF-κB是細胞內(nèi)多個信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的交匯點,因此該細胞系具備通用性及進一步改造的潛力,具有研究及應(yīng)用價值。