高晶萍 李珮瑤 王存連 張瑞華 范玉堂 程智慧 徐彤
摘? 要:目的:確定內蒙古某奶牛場初生犢牛發(fā)生腹瀉并導致嚴重死亡的病因,以便針對性采取有效的防控措施。方法:采集發(fā)病死亡犢牛的肺、肝、腎、脾、淋巴以及小腸,無菌操作進行細菌分離鑒定;分離菌株純培養(yǎng)后進行動物致病性試驗和藥敏試驗。結果:在送檢3例犢牛肝臟、脾臟及小腸接種培養(yǎng)基上,具有大腸桿菌菌落的典型特征,生化鑒定為大腸桿菌;在1例犢牛肺接種培養(yǎng)基上分離1株符合綠膿桿菌的菌落特征,生化鑒定為綠膿桿菌。致病性試驗顯示,大腸桿菌肉湯培養(yǎng)物接種小鼠腹腔后24h內全部死亡;綠膿桿菌菌株肉湯培養(yǎng)物也導致接種小鼠在48h死亡。藥敏試驗結果顯示,大腸桿菌對阿米卡星、頭孢哌酮和頭孢吡肟敏感;對諾氟沙星、慶大霉素、復方新諾明、新霉素、妥布霉素、環(huán)丙沙星耐藥;綠膿桿菌對頭孢吡肟、諾氟沙星、妥布霉素、慶大霉素和頭孢哌酮敏感,對復方新諾明、新霉素、妥布霉素、環(huán)丙沙星耐藥。結論:大腸桿菌是引起該場犢牛腹瀉死亡的主要病原菌,在抵抗力下降的情況下,部分犢牛繼發(fā)感染了綠膿桿菌,也是導致死亡的原因之一。
關鍵詞:犢牛腹瀉;大腸桿菌;分離鑒定;藥敏試驗;防治
中圖分類號 S858.23 文獻標識碼 A文章編號 1007-7731(2019)11-0085-3
犢牛腹瀉是犢牛常發(fā)的一種胃腸疾病,發(fā)病原因有病原性感染和營養(yǎng)因素等。大多數(shù)犢牛腹瀉主要發(fā)生于犢牛出生后2周內,但在環(huán)境條件較差時,3~4周齡也仍然具有較高的易感性。在傳染性因素中,大腸桿菌是引起犢牛腹瀉的一種主要致病菌。臨床表現(xiàn)為腹瀉、脫水,嚴重者因機體脫水、酸中毒死亡。大腸桿菌的發(fā)病率和死亡率,因飼養(yǎng)管理水平、環(huán)境衛(wèi)生的不同,具有較大的差異[1-2]。犢牛腹瀉一般在氣溫驟降及陰雨連綿的時期多發(fā),任何降低犢牛抵抗力的因素都會導致本病的發(fā)生[3]。近年來,隨著我國養(yǎng)牛業(yè)集約化程度的提高,犢牛大腸桿菌病的發(fā)病率日趨增加,給養(yǎng)牛業(yè)帶來了巨大的威脅。
2019年2月份,內蒙古某奶牛場飼養(yǎng)的犢牛發(fā)生腹瀉,引起大量的死亡,根據(jù)流行病學和臨床癥狀懷疑為大腸桿菌,用慶大霉素、氟苯尼考和恩諾沙星等藥物后治療無效。為了進一步確診病因,采集發(fā)病死亡犢牛的肺、肝、腎、脾、淋巴、小腸等到河北北方學院進行了實驗室診斷,為臨床合理防控提供理論依據(jù)。
1 材料
1.1 病料來源 內蒙古某規(guī)模養(yǎng)殖場飼養(yǎng)奶牛約900余頭,采用集中發(fā)情和配種方式繁殖。2018年11月至2019年1月,在其1號和3號養(yǎng)殖棚內出生犢牛陸續(xù)發(fā)生腹瀉,用氨芐西林鈉與慶大霉素、氟苯尼考及恩諾沙星等進行治療,有效控制了此次犢牛腹瀉。然而,2019年2月初,該場2號棚陸續(xù)出生250余頭犢牛,出生不久后,部分犢牛出現(xiàn)腹瀉癥狀,糞便逐漸變成粥狀,內含未消化的乳凝塊和血液,逐漸消瘦、虛弱、走路搖擺;至來校診斷時約有50%的犢牛發(fā)生腹瀉,病死率20%。剖檢變化主要在小腸,表現(xiàn)為小腸充盈、內有液狀內容物和灰白色的乳凝塊;腸黏膜變薄,有的嚴重出血,呈暗紅色;腸系膜淋巴結腫脹、出血。發(fā)病死亡犢牛的肺、肝、腎、脾、淋巴、小腸送檢,低溫保存,當日檢查。
1.2 試劑與儀器 麥康凱培養(yǎng)基、肉湯培養(yǎng)基、營養(yǎng)瓊脂、革蘭氏染色液均購自北京奧博星生物技術有限責任公司;生化反應檢測管、藥敏紙片均購自杭州天和微生物制劑有限公司。超凈臺購自蘇凈集團蘇州安泰空氣技術有限公司;顯微鏡購自Olympus;電熱恒溫培養(yǎng)箱購自上海博訊實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠。
1.3 實驗動物 6~8周齡SPF級BALB/c小鼠24只,由北京實驗動物中心提供。
2 方法
2.1 細菌的分離鑒定 將病料無菌操作、釣菌劃線接種于麥康凱培養(yǎng)基、營養(yǎng)瓊脂平板和肉湯培養(yǎng)基,置于37℃恒溫箱中24h過夜培養(yǎng)。挑取單個典型疑似菌落進行革蘭氏染色、鏡檢。
2.2 細菌生化鑒定 將純化后的單個菌落接種于生化試驗管中37℃培養(yǎng)24h后,觀察并記錄結果。
2.3 動物致病性試驗 24只SPF小白鼠隨機分成2組,試驗組為20只,對照組為4只。試驗組的小鼠腹腔接種肉湯培養(yǎng)物,每只0.1mL,對照組用等量的滅菌普通肉湯進行腹腔注射。48h內觀察小鼠的精神狀態(tài)和記錄死亡情況。
2.4 藥敏試驗 將分離到的菌落均勻地涂抹到營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上,用滅菌鑷子貼上藥敏片后,置于37℃恒溫培養(yǎng)箱24h后測量抑菌圈直徑的大小。結果判定參照NCCLS(2009)的[4]。
3 結果與分析
3.1 細菌的分離鑒定 從病料中共分離出4株細菌,分別編號為S1~S4。S1~S3在麥康凱培養(yǎng)基上長出粉紅色、圓形凸起、表面濕潤、邊緣整齊的菌落,鏡檢為革蘭氏陰性短桿菌;S4在營養(yǎng)瓊脂上長出整體黃綠色的菌落,鏡檢為兩端鈍圓、長短不一的革蘭陰性短桿菌。
3.2 細菌生化鑒定結果 生化試驗結果顯示,S1~S3分離菌符合大腸桿菌的生化特性(表1)。S4分離菌符合綠膿桿菌的生化特性(表2)。
3.3 動物致病性試驗 觀察接種肉湯培養(yǎng)物的小鼠,接種S1、S2、S3、S4以及S1~S4混合菌液肉湯培養(yǎng)物的小鼠,4只/組。接種S1肉湯培養(yǎng)物的4只小鼠在24h內均死亡;S2和S3接種小鼠24h內死亡2只,24~48h死亡2只;S4接種小鼠48h內4只全部死亡;S1~S4混合菌液24h內4只全部死亡。死亡小白鼠在接種12h后可見精神萎靡,腹瀉、被毛蓬松等癥狀。無菌條件下采取小鼠的肝臟進行細菌分離培養(yǎng),鑒定結果與分離菌相同。
3.4 藥敏試驗結果 藥敏試驗結果(見表3),分離大腸桿菌對阿米卡星、頭孢吡肟、頭孢哌酮敏感,對諾氟沙星、慶大霉素、氨芐西林鈉、復方新諾明、新霉素、妥布霉素、環(huán)丙沙星耐藥;綠膿桿菌對阿米卡星、慶大霉素、諾氟沙星、頭孢吡肟、頭孢哌酮、妥布霉素敏感,對復方新諾明、新霉素、妥布霉素、環(huán)丙沙星耐藥。
4 討論
經(jīng)細菌的分離鑒定,從送檢的3份病料中均分離出了大腸桿菌,從其中的1份病料的肺臟中分離出了綠膿桿菌。結合流行病學和臨床癥狀、小鼠的致病性試驗以及送檢前后的臨床治療用藥情況,判定引起該場犢牛腹瀉死亡的主要原因為大腸桿菌感染。盡管1例犢牛肺部分離到綠膿桿菌且其具有較強的致病作用(導致實驗感染小鼠死亡),但是實驗室藥敏試驗確定為敏感的藥物如慶大霉素、諾氟沙星以及氨芐西林等在臨床治療時均未能減少犢牛死亡,因此,綠膿桿菌可能只是部分犢牛在機體抵抗力下降的情況下繼發(fā)感染的因素。綠膿桿菌主要引起水貂的出血性肺炎、或是在畜禽繼發(fā)感染[5-6]。但由綠膿桿菌引起的犢牛腹瀉不容忽視,1985年彭德勛報道過由綠膿桿菌引起犢牛腹瀉的診斷和治療[7]。因此,綠膿桿菌是否是導致本次犢牛腹瀉的致病菌還需進一步研究。
腹瀉在犢牛中的發(fā)病率極高,導致犢牛腹瀉的原因有很多,主要的病原體有大腸桿菌、沙門氏菌、巴氏桿菌、輪狀病毒等[8]。在治療疾病的過程中,雖然抗生素起到了重要作用,但在長期使用過程中抗生素易產生耐藥性。在本次犢牛腹瀉的病例中,由于沒有及時進行實驗室診斷,盲目使用多種藥物,造成了犢牛大量死亡。根據(jù)實驗室診斷結果,采用阿米卡星配合頭孢哌酮有效控制住了本病,不再有新的病例發(fā)生。因此,臨床治療本病時,建議先進行藥敏試驗,篩選出敏感藥物后再進行治療。為防止犢牛發(fā)生脫水,應及時補充5%葡萄糖生理鹽水,并在其中添加碳酸氫鈉,避免腹瀉引起的酸中毒。為保護胃腸道黏膜,可口服鞣酸蛋白或次硝酸鉍。經(jīng)過3~5d治療,即可有效控制犢牛死亡及新病例的出現(xiàn)。
大腸桿菌是一種條件性致病菌,只有在自身抵抗力弱時才會發(fā)病。這次犢牛嚴重腹瀉發(fā)生時,該地區(qū)出現(xiàn)降雪,加之壩上地區(qū)氣候寒冷,同時牛場環(huán)境相對較差,應激及飼養(yǎng)管理差是導致此次犢牛腹瀉的主要原因,因此,加強飼養(yǎng)管理是防治本病的重要措施。為了避免犢牛發(fā)生腹瀉,犢牛出生后應盡早吃食初乳,增強自身的抗病能力;避免犢牛受潮、受寒、飲用不潔的水;母牛妊娠期間給予豐富的蛋白質和維生素飼料,保持適當?shù)倪\動;做好接產工作,母牛分娩前后徹底清洗消毒;在大腸桿菌常發(fā)的地區(qū),可以根據(jù)血清型制備油乳劑滅活疫苗,從而進行犢牛的免疫預防。只有采取綜合的防控措施,才能避免犢牛腹瀉的發(fā)生,提高養(yǎng)殖效益。
參考文獻
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[8]赫鳴睿.某牛場犢牛大腸桿菌病的實驗室診斷與藥敏試驗[J].現(xiàn)代畜牧獸醫(yī),2019(01):39-43.
(責編:張宏民)