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        不同地區(qū)大曲中可培養(yǎng)細(xì)菌的分離與鑒定

        2019-05-31 05:19:34滿都拉鄭逸飛孫子羽陳忠軍
        食品研究與開發(fā) 2019年11期
        關(guān)鍵詞:大曲白酒菌落

        滿都拉,鄭逸飛,孫子羽,陳忠軍

        (內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院 釀酒工程系,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010018)

        大曲是指以小麥、大麥和豌豆等為主要原料,經(jīng)粉碎、制坯和培菌制成的釀酒糖化劑和發(fā)酵劑,為長方體形狀的粗酶制劑[1],是一種囊括多種微生物和微生物酶的“多酶多菌共酵體系”[2]。在白酒生產(chǎn)中,大曲作為糖化發(fā)酵劑被大量使用,在某些類型的白酒生產(chǎn)中添加量甚至高達(dá)50%以上。大曲的產(chǎn)地、配方、原料、生產(chǎn)時間以及生產(chǎn)工藝的不同,會導(dǎo)致大曲的理化性質(zhì)不同[3-4]。這些理化性質(zhì)的差異,會導(dǎo)致微生物種類的差異[5-6],直接影響成品酒的酒體風(fēng)格及品質(zhì)。業(yè)內(nèi)一直有“曲為酒之骨”的說法,可見大曲在白酒生產(chǎn)過程中的重要性。

        大曲含有多種微生物,包括霉菌,酵母,細(xì)菌和少量放線菌,在這些微生物的共同作用下,使淀粉轉(zhuǎn)化成了酒精,并產(chǎn)生了復(fù)雜的風(fēng)味。研究顯示大曲中主要的細(xì)菌有 Lactobacillus、Bacillus、Staphylococcus 和Enterobacteriaceae 等屬[5-8]。其中 Bacillus 屬細(xì)菌可以產(chǎn)生淀粉酶和蛋白酶,能夠水解原料中淀粉和蛋白質(zhì),在白酒的風(fēng)味方面有極重要的作用[9]。大曲的香氣是一種復(fù)合型香氣物質(zhì),是在多種微生物共同作用下,經(jīng)過培菌發(fā)酵和入庫貯存兩個階段形成的[10]。相當(dāng)部分的香氣來源是細(xì)菌,例如生成濃香型白酒風(fēng)味主要香味成分己酸乙酯前體物質(zhì)己酸[11],乙酸和乳酸等[12]。

        不同地區(qū)的大曲的細(xì)菌種類及組成有較大差別,不同產(chǎn)區(qū)的大曲原料組成、工藝、氣候不同,是影響大曲中的細(xì)菌種類的重要因素。大曲作為白酒的主要原料之一,欲開發(fā)新產(chǎn)品,或者改良大曲,控制大曲中的細(xì)菌是一重要環(huán)節(jié)。為推動大曲細(xì)菌菌群的研究,本文以不同地區(qū)大曲為研究對象,比較研究不同地區(qū)大曲中可培養(yǎng)細(xì)菌的種類,為進(jìn)一步研究大曲與白酒風(fēng)味形成機(jī)理及改良大曲提供材料及參考。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        3種大曲分別采自四川成都、山東濟(jì)寧和遼寧錦州某酒廠;胰蛋白胨、酵母提取粉、瓊脂(生物試劑):北京奧博星生物技術(shù)有限公司;氯化鈉(優(yōu)級純):國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;革蘭氏染液試劑盒:杭州微生物試劑有限公司;三羥甲基氨基甲烷(trihydroxymethylaminomethane,Tris,≥99 %)、乙二胺四乙酸(ethylenediaminetetraacetic acid,EDTA,≥99%):西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;冰醋酸(分析純):天津化學(xué)試劑有限公司;DNA Marker(D2000):天根生化科技(北京)有限公司;16SrDNA 引物(27f 與 1942R)及聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)試劑盒:生工生物(上海)有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        SW-CJ-2DF 雙人單面凈化工作臺:蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;DPX-9162B-1 恒溫培養(yǎng)箱:上海?,攲嶒炘O(shè)備有限公司;DYY-6D 臥式電泳儀、WD-9403X藍(lán)光觀察儀:北京六一生物科技有限公司;ABI Veriti96PCR 儀:賽默飛世爾科技公司;SCIENTZ-IID 超聲破碎儀:寧波新芝生物科技股份有限公司;NU-C200RE 離心機(jī):NuAire Laboratory Equipment;pH 計(PB-10):北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;DHG-9023A 烘干箱:上海篤特科學(xué)儀器有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 培養(yǎng)基及溶液配制

        LB 固體培養(yǎng)基:1.0%胰蛋白胨、0.5%酵母提取粉、1.0%氯化鈉、2%瓊脂、pH 7.0、121℃滅菌 20 min;50×TAE 緩沖液:24.2% Tris、5.71 %冰醋酸(mL/mL)、3.72%EDTA;1×TAE 緩沖液:稀釋 50×TAE 緩沖液。

        1.3.2 樣品處理

        中間部位縱向切塊約100 g,包含曲皮到曲心的全部內(nèi)容物,用研缽研碎后得大曲粉。

        1.3.3 樣品pH 值測定

        將1.0 g 大曲粉溶于100.0 mL 蒸餾水中,使用pH計測定pH 值。

        1.3.4 樣品含水量測定

        將10 g 大曲粉置于平皿中,稱重,烘至恒重,稱重,計算含水量。

        1.3.5 樣品密度測定

        將大曲塊用保鮮膜包裹做防水處理,置于裝有50.0 mL 水的100 mL 量筒中,使大曲塊完全沒入水面之下,讀取量筒水面高度,與初始液面高度的差值即為大曲塊體積,稱重獲得大曲塊質(zhì)量,計算密度。

        1.3.6 可培養(yǎng)細(xì)菌分離

        取大曲粉1.0 g 溶于無菌水中,振蕩混勻溶解;于試管中分別加注9.0 mL 蒸餾水滅菌后冷卻;在無菌操作臺使用移液槍吸取1.0 mL 樣本溶液于試管中,混勻,之后依次從前一試管中吸取1.0 mL 液體加入下一試管中混勻,稀釋到 10-5。選取 10-3、10-4、10-5,使用經(jīng)過滅菌的涂布棒在培養(yǎng)基上進(jìn)行涂布后置于30℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)16 h。

        1.3.7 可培養(yǎng)細(xì)菌純化

        待稀釋涂布培養(yǎng)基菌落出現(xiàn)后,使用接菌環(huán)分別挑取每個平板上所有形態(tài)及顏色不同的單菌落進(jìn)行劃線,同時對這些菌落進(jìn)行記錄和編號;將培養(yǎng)皿置于30℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)16 h。平板中長出菌落后,挑取單菌落再次純化,重復(fù)3 次,3 次后若出現(xiàn)其他菌落,則繼續(xù)進(jìn)行純化,直到無雜菌出現(xiàn)。

        1.3.8 可培養(yǎng)細(xì)菌細(xì)胞形態(tài)觀察

        滴一滴香柏油于載玻片的菌斑上,置于顯微鏡載物臺上觀察;調(diào)節(jié)顯微鏡直到視野內(nèi)出現(xiàn)清晰的單細(xì)胞,記錄革蘭氏染色特征,記錄菌體特征。

        1.3.9 菌體收集

        將純化后的細(xì)菌接種于液體LB 培養(yǎng)基中,30℃震蕩培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,使用紫外分光光度計檢驗菌液 OD600值達(dá)到 2.0 左右時,15 000 r/min 離心 1 min 獲得菌泥。

        1.3.10 細(xì)胞破碎

        分別利用兩種方式破碎細(xì)胞,反復(fù)凍融法:-80℃冷凍+90℃水浴反復(fù)凍融3 次;超聲破碎法:350 W 超聲破碎,5 s 工作+5 s 間歇,超聲破碎總工作時長15 min,全過程30 min。

        1.3.11 16SrRNA 擴(kuò)增及電泳

        PCR 條件為:第一階段,94.0℃持續(xù) 10.0 min。第二階段,95.0℃持續(xù)0.5 s 后55.0℃持續(xù)0.5 s,再在72.0℃持續(xù)1 min 30 s。第二階段循環(huán)30 次。第三階段,72.0℃持續(xù) 10 min 后 16.0℃持續(xù)。PCR 完成后,將PCR 產(chǎn)物按順序加入瓊脂糖凝膠點樣孔中進(jìn)行電泳,電壓為120 V,電泳時間30 min。完成后置于藍(lán)光觀察儀下觀察條帶,根據(jù)Marker 確定片段長度。

        1.3.12 PCR 產(chǎn)物測序及系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建

        將PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物送至生工生物(上海)有限公司進(jìn)行測序。序列返回后,登錄NCBI 網(wǎng)站利用BLAST工具進(jìn)行序列比對。利用MEGA7 軟件中的Neighbor joining Tree 方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

        1.4 含水量及密度的計算

        1.4.1 含水量的計算

        通過測定大曲初始質(zhì)量(m1)和烘干恒重質(zhì)量(m2),以下面公式計算大曲含水量(%)。

        式中:M 為含水量,%;m1為初始質(zhì)量,g;m2為烘至恒重時質(zhì)量,g。

        1.4.2 密度的計算

        通過測定大曲質(zhì)量(m)和該質(zhì)量的體積(v),以下面公式計算大曲密度(g/cm3)。

        式中:ρ 為密度,g/cm3;m 為質(zhì)量,g;v:體積,cm3。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 不同地區(qū)大曲基本理化指標(biāo)

        不同地區(qū)大曲pH 值、含水量及密度等基本理化指標(biāo)見表1。

        由表1可知四川成都大曲pH 值為6.99,含水量為9.89%,密度為0.71 g/cm3。山東濟(jì)寧大曲pH 值為6.16,含水量為10.00%,密度為0.68 g/cm3。遼寧錦州大曲pH值為6.58,含水量為11.65%,密度為0.86 g/cm3。山東濟(jì)寧大曲的pH 值最低,密度最低,四川成都大曲含水量最低,遼寧錦州大曲的密度和含水量最高。

        表1 不同大曲基本理化指標(biāo)Table 1 Physical and chemical indicators of three dfferent Daqu

        2.2 不同地區(qū)大曲中細(xì)菌的分離

        3種大曲樣本中共分離出37 株可培養(yǎng)細(xì)菌。經(jīng)過進(jìn)一步確認(rèn),四川成都大曲中分離出5 株,山東濟(jì)寧大曲中分離出4 株,遼寧錦州大曲分離出6 株形態(tài)不同的菌株,結(jié)果如表2所示。

        表2 3種大曲中可培養(yǎng)細(xì)菌細(xì)胞及菌落形態(tài)Table 2 The cell and colony morphology of the isolates from Daqu

        續(xù)表2 3種大曲中可培養(yǎng)細(xì)菌細(xì)胞及菌落形態(tài)Continue table 2 The cell and colony morphology of the isolates from Daqu

        2.3 分離菌株16SrRNA擴(kuò)增及系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建

        所分離微生物經(jīng)細(xì)胞破碎及PCR 擴(kuò)增后得到長度約1 500 bp 序列,符合擴(kuò)增目的產(chǎn)物長度。經(jīng)測序后,與數(shù)據(jù)庫中序列比對后,建立的系統(tǒng)發(fā)育樹如圖1所示。

        圖1 不同地區(qū)大曲中分離細(xì)菌的系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.1 The phylogenetic tree of cultivable bacteria in Daqu from different regions

        從圖1中可知,四川成都大曲中可培養(yǎng)細(xì)菌發(fā)育樹分為兩個大簇。第一大簇包括Bacillu 和Staphylococcus 兩個屬。其中 Bacillus 屬中包括一株 B.licheniformis(DQA-3A5A)和兩株Bacillus 屬的細(xì)菌(DQA-3A3 和 DQA-4C3R),Staphylococcus 屬中一株菌屬于S.saprophyticus(DQA-3A7B)。第二大簇中僅有一個Pantoea 屬菌株(DQA-3A9R2);山東濟(jì)寧大曲中可培養(yǎng)細(xì)菌發(fā)育樹同樣分兩個大簇。第一大簇中包括Bacillus 和Enterococcus 兩個屬,其中Bacillus 屬中包括 B.wiedmannii(DQB-A1BB)和 B.tequilensis(DQB-5A6R)兩個菌株,Enterococcus 屬中僅有一株E.lactis(DQB-5A2B)。第二大簇中僅包括一個Pseudomonas屬的細(xì)菌(DQB-5A1B);遼寧錦州大曲中可培養(yǎng)系統(tǒng)發(fā)育樹也可分為兩個大簇。第一大簇中包括Acinetobacter 和 Enterococcuss 兩個屬,其中 DQC-B1、DQCC1 和 DQC-C2 均屬 Acinetobacter,DQC-B4 屬于 Enterococcuss 屬的E.faecalis。第二大簇中兩株菌(DQCA1 和 DQC-B3)均屬于 Enterobacter 屬細(xì)菌。

        3 討論與結(jié)論

        不同原料、生產(chǎn)環(huán)境及生產(chǎn)時間對大曲中微生物均有影響[5-6,13]。本研究中從四川成都大曲中分離出細(xì)菌中有3 株屬于Bacillus 屬,其中DQA-3A5A 是一株B.licheniformis。報道顯示該類細(xì)菌可以分泌多種具有淀粉水解能力的酶,促進(jìn)淀粉轉(zhuǎn)變?yōu)榭砂l(fā)酵糖類,作為酒精發(fā)酵階段產(chǎn)生底物[2]。另外,Bacillus 屬細(xì)菌可在固態(tài)發(fā)酵過程中代謝產(chǎn)生苯乙醛、糠醛、庚醇、呋喃扭爾、4-甲基-2,6-二叔丁基-苯酚、吲哚、2-戊基呋喃、三甲基吡嗪、2,3-丁二醇、異戊酸、苯甲醛、2-甲基-2-丁烯酸、四甲基吡嗪、β-苯乙醇和苯乙酸等多種風(fēng)味物質(zhì)[14]。因此,Bacillus 屬細(xì)菌在白酒固態(tài)發(fā)酵過程中起到的重要作用。DQA-3A9R2 是一株P(guān)antoea 屬細(xì)菌,該屬細(xì)菌多見于植物中,是一類條件致病菌。劉洋等[15]在超級水稻種子中發(fā)現(xiàn)該類細(xì)菌是超級水稻種子中的主要優(yōu)勢菌種,所以該類微生物或由谷物原料帶入。DQA-3A7B 是一株S.saprophyticus,是肉類發(fā)酵食品中的常見微生物之一[16]。竇曉等在研究瀘香型大曲中也發(fā)現(xiàn)了該類微生物[17]。

        在山東濟(jì)寧大曲中發(fā)現(xiàn)B.wiedmannii 和B.tequilensis 兩株芽孢桿菌屬細(xì)菌。芽孢桿菌(B.wiedmannii)在大曲中是一類極重要的細(xì)菌,占菌群數(shù)量的50%以上。B.tequilensis可分泌 β-1,3-1,4-葡聚糖酶,該酶可以對β-葡聚糖進(jìn)行分割,破碎禾本植物種子的胚乳細(xì)胞壁,使禾本植物胚乳中的淀粉充分釋放出來參與發(fā)酵,在固態(tài)發(fā)酵過程中起重要輔助作用[18]。乳酸菌(Lactobacillus)是大曲中的常見菌[19]。E.lactis(DQB-5A2B)屬乳酸菌,在固態(tài)發(fā)酵的過程中,如果乳酸菌生成適量乳酸,通過蒸餾進(jìn)入酒體后,有利于改善白酒的風(fēng)味。這種情況下,乳酸菌可歸屬于白酒釀造有益細(xì)菌[20]。但是,如果料醅中的乳酸菌過多,活力較強(qiáng),加上環(huán)境溫度等條件適宜,將會產(chǎn)生過多的乳酸,生成乳酸乙酯較多,導(dǎo)致白酒的口感較差,此時的乳酸菌可被視為有害細(xì)菌[21]。Pseudomonas(DQB-5A1B)屬細(xì)菌一般是條件致病菌,經(jīng)常導(dǎo)致制曲工人出現(xiàn)皮膚感染等職業(yè)病。遼寧錦州產(chǎn)大曲中發(fā)現(xiàn)多株Acinetobacter 屬,其中 DQC-B1,DQC-C1 和 DQC-C2 均為 A.johnsonii,該屬細(xì)菌廣泛存在于環(huán)境中,耐受性較強(qiáng)。報道顯示,Acinetobacter 屬主要出現(xiàn)在管路和器械的表面中[22]。E.faecalis(DQC-B4)多見于植物發(fā)酵食品中,例如泡菜等,也是一種條件致病菌。在植物發(fā)酵食品有害微生物安全分析研究中發(fā)現(xiàn),E.faecalis 在葉菜類和果菜類食品中檢出數(shù)較多[23]。

        綜上所述,不同地區(qū)、原料對大曲中可培養(yǎng)微生物影響較大,芽孢桿菌是常見的一類存在于大曲中的微生物,能夠提供多種酶類,是發(fā)酵有益菌。但在傳統(tǒng)制曲過程中一些治病或非發(fā)酵細(xì)菌也在本研究中發(fā)現(xiàn)。因此,優(yōu)化生產(chǎn)工藝提高有益微生物量,降低不利微生物的繁殖是進(jìn)一步優(yōu)化傳統(tǒng)大曲的一個研究方向。

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