賈俊婷,袁典,汪琳,馬玉媛,章金剛,2
1.軍事科學(xué)院 軍事醫(yī)學(xué)研究院 衛(wèi)生勤務(wù)與血液研究所,北京100850;2.新鄉(xiāng)學(xué)院,河南 新鄉(xiāng)453000
豬內(nèi)源性反轉(zhuǎn)錄病毒(porcine endogenous retrovirus,PERV)是豬→人異種移植、豬源制品與生物活性材料中最受關(guān)注的病原體。它以前病毒DNA形式整合在所有豬的細(xì)胞基因組中,并隨細(xì)胞染色體復(fù)制而復(fù)制[1-2],可在體外感染多種人源細(xì)胞[3]。為消除PERV感染,眾多學(xué)者都希望建立無PERV豬群。但是,由于PERV存在的普遍性和廣泛性[4-5],篩選天然無PERV陰性豬體并非易事[6]。2015年,楊璐涵等利用CRISPR-Cas9技術(shù)將豬腎細(xì)胞PK15中62個(gè)PERV-pol基因失活[7];2017年再次實(shí)現(xiàn)將豬原代胚胎成纖維細(xì)胞中所有PERV失活,并進(jìn)一步通過體細(xì)胞核移植獲得了PERV完全失活的豬[8]。但該技術(shù)距離規(guī)?;瘧?yīng)用還有很遠(yuǎn)距離,并且還須對PERV失活基因編輯豬的生物安全性進(jìn)行長期監(jiān)測。
載脂蛋白B mRNA編輯酶催化多肽樣蛋白3(apolipoprotein B mRNA editing enzymecatalytic polypeptide-like 3,APOBEC3)是一種天然免疫抗病毒分子,在宿主抗病毒天然免疫應(yīng)答中發(fā)揮著重要作用[9-11]。豬體內(nèi)僅含有一種APOBEC3家族成員即豬APOBEC3F(pig APOBEC3F,pA3F)[12]。研究發(fā)現(xiàn),pA3F分子可通過其胞苷脫氨酶作用有效抑制PERV的復(fù)制[13-14]。然而,Jónsson等[15]上調(diào)PK15細(xì)胞中pA3F的表達(dá)量后與人胚腎HEK293細(xì)胞共培養(yǎng),PK15細(xì)胞中釋放的PERV仍可感染HEK293細(xì)胞,提示PERV可能對pA3F有一定的拮抗作用。揭示PERV在pA3F抗病毒作用下的免疫逃逸機(jī)制,對于尋找抗反轉(zhuǎn)錄病毒新的藥物作用靶標(biāo)有重要意義。
本研究中,我們構(gòu)建了pA3F基因的慢病毒表達(dá)載體,感染了PK15細(xì)胞,并篩選獲得穩(wěn)定表達(dá)pA3F的單克隆細(xì)胞株。
PK15細(xì)胞、HEK293T細(xì)胞、pBPLV-flag-pA3F質(zhì)粒均為本室保存;大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞、T4DNA連接酶均購自TaKaRa生物工程公司;限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ-HF、Phusion HF DNA聚合酶購自NEB公司;pLenti-Puro-3Flag載體、Trans-fect慢病毒包裝轉(zhuǎn)染試劑購自和元生物技術(shù)公司;普通質(zhì)粒提取試劑盒、瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒購自天根公司;去內(nèi)毒素質(zhì)粒提取試劑盒購自Qiagen公司;聚凝胺(polybrene)購自Sigma公司;DMEM Basic細(xì)胞培養(yǎng)基、Opti-MEM培養(yǎng)基均購自Gibco公司;胎牛血清購自Hyclone公司;蛋白酶抑制劑購自Roche公司;RIPA細(xì)胞裂解液購自碧云天公司;BCA蛋白定量試劑盒購自北京鼎國昌盛公司;羊抗兔、羊抗鼠熒光二抗均購自LICOR公司;4%~20%預(yù)制梯度膠購自南京金斯瑞公司;氯仿、異丙醇、無水乙醇、無水甲醇等購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑公司;蛋白預(yù)染marker購自Thermo fisher公司;封閉液購自Rockland公司;PVDF膜購自Merck Millipore公司;Flag標(biāo)簽 抗 體購自Cell Signaling Technology公司;豬β-actin抗體購自proteintech公司。
以pBPLV-flag-pA3F質(zhì)粒為模板,用引物F(5'-TGAACCGTCAGATCGAATTCGCCACCATGGA TCCTCAGCGCCTG-3')和R(5'-TCATCGTCATCCT TGTAGTCGAATTCTCTCGAGTCACTTCTTGATGAT G-3')PCR擴(kuò) 增pA3F基因,膠回收純化PCR產(chǎn)物。pA3F基因PCR產(chǎn)物和pLenti-Puro-3Flag空載體分別經(jīng)EcoRⅠ單酶切,酶切產(chǎn)物純化后進(jìn)行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)氨芐西林抗性篩選后,采用菌落PCR篩選陽性克隆,挑取陽性單菌落培養(yǎng),提取質(zhì)粒后測序鑒定。
將生長狀態(tài)良好的HEK293T細(xì)胞接種于10 cm細(xì)胞培養(yǎng)皿,次日細(xì)胞匯合度達(dá)70%~90%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染前1 h,去除原有細(xì)胞培養(yǎng)基,更換為Opti-MEM培養(yǎng)基。將待轉(zhuǎn)染的pLenti-PuropA3F-3Flag重組質(zhì)?;蚩蛰d體與包裝質(zhì)粒(pLP1、pLP2、pLP/VSVG組成的packaging mix)以1∶1的比例溶于Opti-MEM培養(yǎng)基,總體積為500 μL,輕輕混勻,靜置5 min;將Trans-fect慢病毒包裝轉(zhuǎn)染試劑溶于Opti-MEM培養(yǎng)基,總體積為500μL,輕輕混勻,靜置5 min;將轉(zhuǎn)染試劑稀釋液滴加到質(zhì)粒稀釋液中,邊加邊輕輕混勻,室溫放置20 min;去除細(xì)胞培養(yǎng)基,將配好的DNA-轉(zhuǎn)染試劑混合液緩慢加到細(xì)胞層表面,輕輕混勻;培養(yǎng)6~8 h后去除培養(yǎng)基,添加10 mL含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng);分別于轉(zhuǎn)染后48、72 h收集細(xì)胞上清,3500 r/min離心10 min,用0.22μm濾膜過濾上清到超速離心管中;4℃、30 000 r/min離心2 h,棄上清,用預(yù)冷的DPBS重懸沉淀,分裝后保存于-70℃冰箱。
將生長狀態(tài)良好的HEK293T細(xì)胞以1×105/孔接種于24孔板,細(xì)胞貼壁后加入待測病毒,每個(gè)病毒樣品各加3個(gè)孔,病毒量分別為0.1、1和10 μL,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),12~20 h后換液,去掉含病毒的培養(yǎng)基,72 h后提取細(xì)胞基因組DNA,通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR測定病毒載體特定元件WPRE的拷貝數(shù)。病毒滴度(transducing units/mL,TU/mL)=(平均每基因組整合的病毒序列拷貝數(shù)×感染時(shí)細(xì)胞數(shù)目×1000)/加入的病毒體積(mL)。
將生長狀態(tài)良好的PK15細(xì)胞以2×105/皿接種于共聚焦小皿中,待細(xì)胞達(dá)到30%~40%匯合度時(shí)棄去培養(yǎng)基,用PBS緩沖液洗滌3~5次,按照MOI=100,將一定體積的pLenti-Puro-pA3F-3Flag病毒液或?qū)φ詹《疽杭尤牍簿劢剐∶?,每皿加?μg/mL聚凝胺,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每30 min均勻搖晃共聚焦小皿,2 h后補(bǔ)加1.5 mL含10%胎牛血清的正常培養(yǎng)基,感染12~24 h后棄去培養(yǎng)基,每皿加入2 mL含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,于37℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
收集細(xì)胞,用預(yù)冷的PBS漂洗3次后離心棄掉上清,用50μL含蛋白酶抑制劑的RIPA細(xì)胞裂解液重懸和裂解細(xì)胞沉淀,并進(jìn)行超聲波破碎,4℃、14 000 r/min離心5 min,收集上清;用BCA蛋白定量試劑盒測定蛋白濃度,加入適當(dāng)體積5×上樣緩沖液,混勻并煮沸10 min;每個(gè)樣品各取80μg進(jìn)行SDS-PAGE后轉(zhuǎn)印至PVDF膜,用封閉液于室溫孵育1 h;去除封閉液,用1∶1000稀釋的小鼠抗Flag抗體或抗內(nèi)參蛋白抗體孵育PVDF膜,4℃輕搖過夜;用TBST液洗膜3次,每次10 min;用1∶10 000稀釋的羊抗小鼠熒光二抗室溫孵 育PVDF膜1 h,TBST液 洗 膜3次,每 次10 min;用紅外熒光掃描成像系統(tǒng)掃膜成像。
將慢病毒感染的PK15細(xì)胞接種于6孔板中,細(xì)胞貼壁后用含2.5μg/mL嘌呤霉素的完全培養(yǎng)基(含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基)進(jìn)行藥物篩選培養(yǎng),18 d后出現(xiàn)細(xì)胞集落;消化細(xì)胞集落后計(jì)數(shù),用含2.5μg/mL嘌呤霉素的完全培養(yǎng)基稀釋至細(xì)胞密度約為1×103/mL;96孔板細(xì)胞培養(yǎng)板的第3~11排每孔添加0.1 mL含2.5μg/mL嘌呤霉素的完全培養(yǎng)基,將上述單細(xì)胞懸液接種于第2排,0.2 mL/孔,從中吸取0.1 mL細(xì)胞懸液接種于第3排,混合后,從第3排中吸取0.1 mL接種于第4排,以此類推,直至第11排,挑選只有1~2個(gè)細(xì)胞的孔進(jìn)而挑選單克隆細(xì)胞;待單細(xì)胞生長成為集落后依次轉(zhuǎn)入48、24和6孔板增殖培養(yǎng)。
以pBPLV-flag-pA3F質(zhì)粒為模板擴(kuò)增得到PCR產(chǎn)物,瓊脂糖凝膠電泳可見1000~2000 bp的特異性條帶(圖1),與pA3F基因(約1254 bp)大小相符,初步確定擴(kuò)增到pA3F基因。純化的PCR產(chǎn)物與pLenti-Puro-3Flag空載體分別經(jīng)EcoRⅠ酶切后進(jìn)行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,菌落PCR篩選陽性克隆并測序鑒定,結(jié)果顯示與GenBank公布的pA3F基因序列一致,確定pLenti-Puro-pA3F-3Flag重組質(zhì)粒構(gòu)建成功。
將pLenti-Puro-pA3F-3Flag重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,同時(shí)設(shè)空載體轉(zhuǎn)染細(xì)胞和正常培養(yǎng)細(xì)胞分別作為陰性對照和空白對照。48 h后提取細(xì)胞蛋白,Western印跡檢測pA3F蛋白的表達(dá)。結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染pLenti-Puro-pA3F-3Flag質(zhì)粒的細(xì)胞在相對分子質(zhì)量43×103~55×103的蛋白marker條帶之間有單一蛋白條帶,與pA3F-3Flag融合后的預(yù)測蛋白大?。?8×103)相符,而對照組均未見目的蛋白條帶(圖2)。表明構(gòu)建的pLenti-Puro-pA3F-3Flag重組質(zhì)??梢栽贖EK293T細(xì)胞中表達(dá)pA3F蛋白。
在HEK293T細(xì)胞中包裝pLenti-Puro-pA3F-3Flag重組質(zhì)粒和空載體,分別命名為Lenti-pA3F和Lenti-Control,測得病毒濃縮液滴度分別為1.32×108和1.34×109TU/mL。將Lenti-pA3F和Len?ti-Control感染PK15細(xì)胞(MOI=100),96 h后收集細(xì)胞,Western印跡檢測Lenti-pA3F感染組細(xì)胞為pA3F高表達(dá),Lenti-Control感染組細(xì)胞pA3F不表達(dá)(圖3)。
圖1 pA3F基因擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳圖譜
圖2 Western印跡檢測pLenti-Puro-pA3F-3Flag質(zhì)粒在HEK293T細(xì)胞中的表達(dá)
將Lenti-pA3F感染的PK15細(xì)胞接種于96孔板中,通過嘌呤霉素壓力篩選并結(jié)合有限稀釋法篩選穩(wěn)定表達(dá)pA3F的單克隆細(xì)胞。Western印跡顯示,篩選到的PK15細(xì)胞單克隆株2C和2D均可檢測到pA3F的表達(dá),單克隆株2D的pA3F表達(dá)水平明顯高于2C(圖4)。
APOBEC3屬于胞苷酸脫氨酶家族,是宿主內(nèi)存在的一種具有抗多種病毒作用的天然抗病毒分子[16]。已證實(shí)其家族成員A3F與A3G均可有效阻止內(nèi)源性與外源性反轉(zhuǎn)錄病毒的復(fù)制,對Vif缺陷的人免疫缺陷病毒1型(HIV-1)的抑制尤為明顯。Vif缺陷的HIV-1病毒株在非允許細(xì)胞中復(fù)制時(shí),A3F/A3G可被包裝入新裝配的子代病毒粒子中,在新感染的細(xì)胞中通過使HIV-1反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生的負(fù)鏈cDNA發(fā)生C→U突變,導(dǎo)致病毒基因組DNA量下降,并抑制病毒的復(fù)制與感染[17-19]。但是慢病毒所含的Vif蛋白可通過屏蔽A3F/A3G的病毒結(jié)合區(qū)域,從而阻止A3F/A3G包裝進(jìn)入病毒體內(nèi);也可以通過泛素-蛋白酶體途徑降解A3F/A3G[20-23],導(dǎo)致其無法及時(shí)包裝進(jìn)入新生的子代病毒粒子中,從而使子代病毒負(fù)鏈cDNA上的C免遭脫氨作用。
圖3 Western印跡檢測慢病毒感染PK15細(xì)胞中pA3F的表達(dá)
圖4 Western印跡檢測慢病毒感染PK15細(xì)胞單克隆株中pA3F的表達(dá)
PERV本身并不編碼Vif蛋白,在自然宿主體內(nèi)逃逸pA3F作用的機(jī)制尚不清楚。結(jié)合文獻(xiàn)及前期結(jié)果,推測PERV中可能存在其他某種蛋白具備Vif樣活性,或借助某種機(jī)制促成了pA3F在發(fā)揮作用前被降解,由此逃逸了pA3F的抗病毒作用。為篩選與pA3F互作的病毒效應(yīng)蛋白及宿主細(xì)胞關(guān)鍵蛋白,須首先構(gòu)建穩(wěn)定表達(dá)pA3F的PK15細(xì)胞系。
慢病毒載體基于HIV-1發(fā)展而來,具有基因轉(zhuǎn)染效率高、宿主范圍廣、對人致病性低、可同時(shí)感染分裂期和非分裂期細(xì)胞、可整合入基因組實(shí)現(xiàn)長時(shí)間表達(dá)等特點(diǎn),這些獨(dú)特優(yōu)勢使其在分子、細(xì)胞生物學(xué)等領(lǐng)域得到廣泛認(rèn)可和應(yīng)用[24]。本研究中使用的pLenti-Puro-3Flag載體為四質(zhì)粒系統(tǒng),是目前被廣泛使用的慢病毒載體系統(tǒng),具有較高的感染性和安全性。我們采用常規(guī)分子克隆技術(shù)構(gòu)建pLenti-Puro-pA3F-3Flag質(zhì)粒,將該質(zhì)粒與包裝載體共轉(zhuǎn)染HEK293T細(xì)胞,包裝成可感染PK15細(xì)胞的Lenti-pA3F慢病毒,并通過嘌呤霉素壓力篩選并結(jié)合有限稀釋法篩選穩(wěn)定高表達(dá)pA3F的PK15細(xì)胞單克隆株。此外,研究期間還曾嘗試使用另2種慢病毒載體(pLOV-EF1a-PuroR-CMV-EGFP-P2A-3FLAG載 體 和pBPLV載體)進(jìn)行pA3F假病毒的包裝,但包裝的病毒液感染效率明顯低于用pLenti-Puro-3Flag載體包裝的慢病毒(未發(fā)表數(shù)據(jù))。
穩(wěn)定表達(dá)pA3F的PK15細(xì)胞單克隆株的建立,為進(jìn)一步深入研究PERV在pA3F作用下的免疫逃逸機(jī)制奠定了基礎(chǔ)。