張振科,楊方玉,樊建輝,李建民,吳衛(wèi)光
(河南仰韶酒業(yè)有限公司,河南澠池472400)
大曲是由小麥、大麥、豌豆按照一定的比例,自然接種、人工控溫培育,含有豐富的微生物與多種酶類的塊狀制劑[1]。目前一般根據(jù)大曲培養(yǎng)工藝不同,將大曲分為高溫大曲、中高溫大曲以及中溫大曲[2]。大曲在白酒釀造中主要提供發(fā)酵力、糖化力、液化力以及釀造微生物,并提供決定酒體風格的呈香呈味的前驅(qū)物質(zhì)[3]。在白酒行業(yè)中,一直流傳著“曲是酒之骨”“有好曲就有好酒”這兩句話,由此可知大曲的質(zhì)量對白酒生產(chǎn)的重要性,為了提高大曲質(zhì)量,許多白酒科研工作者對大曲進行了大量研究工作。申孟林等[4]對大曲中微生物的分類以及作用進行了詳細的研究;朱文優(yōu)等[5]采用高通量測序技術(shù)和多元統(tǒng)計法對不同季節(jié)的高溫大曲真菌群落結(jié)構(gòu)以及演變進行了系統(tǒng)的研究;楊丹丹等[6]利用紫外誘變技術(shù)獲得一株高產(chǎn)糖化力的黑曲霉;熊翔等[7]對大曲工藝研究發(fā)現(xiàn),當小麥粉碎度57%、鮮曲含水量39%時,大曲質(zhì)量最優(yōu)。
目前,有關(guān)大曲質(zhì)量提升的研究,主要是在菌種選育和大曲培育工藝兩大方向[8-10]。大曲曲皮厚度直接影響著大曲的質(zhì)量,趙迎路等[13]對不同季節(jié)和不同原料兩個方面對大曲的曲皮質(zhì)量問題做了科學的研究;霍永建[14]對汾酒大曲曲皮的各種質(zhì)量問題做了詳細的總結(jié)概述;明紅梅等[15]對瀘型大曲研究發(fā)現(xiàn),曲皮的理化指標直接影響著大曲的整體質(zhì)量;而有關(guān)曲皮厚度對大曲質(zhì)量的影響還沒有相關(guān)研究報道。本次通過研究曲皮厚度對大曲質(zhì)量的影響,來進一步提升大曲質(zhì)量,以便為大曲生產(chǎn)提供理論參考。
1.1.1 樣品及試劑
樣品:未經(jīng)培育的大曲(仰韶酒廠提供)。
試劑:磷酸二氫鉀、硫酸鎂、蔗糖、磷酸銨、無水乙酸鈉、冰乙酸、可溶性淀粉、重鉻酸鉀、葡萄糖、氫氧化鈉、亞鐵氰化鉀、碘化鉀、碘、次甲基藍、甲基藍、酒石酸甲鈉、硫酸銅、胰蛋白胨、牛肉膏、氯化鈉、納他霉素、瓊脂粉、蛋白胨、酵母粉、氨芐青霉素、維生素B1,購于上海生工,均為AR級。
1.1.2 儀器設(shè)備
電熱干燥箱、蒸發(fā)皿、分析天平、容量瓶、滴定管、移液管、錐形瓶、燒杯、恒溫水浴鍋、玻璃棒、容量瓶、測量尺、滅菌鍋。
1.1.3 培養(yǎng)基
細菌培養(yǎng)基:葡萄糖15 g/L,胰蛋白胨5 g/L,牛肉膏5 g/L,NaCl 5 g/L,納他霉素1 g/L,瓊脂粉12 g/L,pH 7.0。
酵母培養(yǎng)基:酵母粉10 g/L,蛋白胨20 g/L,葡萄糖20 g/L,豆芽200 g/L,氨芐青霉素1 g/L,瓊脂粉12 g/L,pH 6.0。
霉菌培養(yǎng)基:去皮馬鈴薯200 g/L,葡萄糖20 g/L,蛋白胨 0.5 g/L,KH2PO45 g/L,MgSO4·7H2O 3 g/L,維生素B10.1 g/L,瓊脂粉12 g/L,氨芐青霉素1 g/L,自然pH值。
發(fā)酵培養(yǎng)基:蔗糖80 g/L,磷酸銨1.25 g/L,磷酸二氫鉀1.25 g/L,自然pH值。
1.1.4 其他溶液
次甲基藍指示劑(10 g/L):稱取1.0 g次甲基藍,加水溶解并定容至100 mL。
氫氧化鈉溶液(200 g/L):稱取20.0 g氫氧化鈉,加適量水溶解,待冷卻后定容至100 mL。
斐林試劑甲液:稱取15.6 g硫酸銅(CuSO4·5H2O)及0.05 g次甲基藍溶于蒸餾水中,并定容至1000 mL。
斐林試劑乙液:稱取50 g酒石酸鉀鈉及54 g氫氧化鈉溶于蒸餾水中,再加入4 g亞鐵氰化鉀,完全溶解后,用蒸餾水定容至1000 mL。
葡萄糖標準溶液(2.5 g/L):稱取經(jīng)103~105℃烘干至恒重的無水葡萄糖2.5 g(精確至0.0001 g),用水溶解,并定容至1000 mL。此溶液現(xiàn)用現(xiàn)配。
碘液:稱取11.0 g碘、22.0 g碘化鉀,置于研缽中,加少量水研磨至碘完全溶解,用水稀釋定容至500 mL,為原碘液,貯存于棕色瓶中。使用時,吸取2.0 mL,加20.0 g碘化鉀,用水溶解定容至500 mL,為稀碘液,貯存于棕色瓶中。
pH4.6乙酸-乙酸鈉緩沖液:2 mol/L冰乙酸:取118 mL冰乙酸用水稀釋至1000 mL;2 mol/L乙酸鈉:稱取272 g乙酸鈉(CH3COONa·3H2O)溶于水,稀釋至1000 mL。將兩溶液等體積混合,即為醋酸-醋酸鈉緩沖液,緩沖溶液的pH值應(yīng)以酸度計校正。
20 g/L可溶性淀粉溶液:用分析天平準確稱取100~105℃干燥2 h的可溶性淀粉2 g(精確到0.001 g),于50 mL燒杯中用少量水調(diào)勻后,倒入盛有70 mL沸水的150 mL燒杯中,并用20 mL水洗凈50 mL小燒杯,洗液合并其中,用微火煮沸至透明,冷卻后用水定容至100 mL。
1.2.1 大曲實驗室培養(yǎng)
取車間制作好的大曲,每次實驗平行3次,置于生化培養(yǎng)箱中。培養(yǎng)箱設(shè)置條件:起始溫度28℃,以2℃/d的條件保持升溫7 d,升溫到42℃,保持5 d,再以2℃/d的條件保持升溫7 d,升溫到頂火56℃,頂溫保持5 d,以3℃/d的條件保持降溫7 d,降到溫度35℃,保持5 d;發(fā)酵周期為36 d,確保大曲在實驗室培養(yǎng)箱中發(fā)酵條件和周期與生產(chǎn)車間保持一致。為確保達到不同厚度的曲皮(≤0.5 cm、0.5~0.8 cm、0.8~1.2 cm、1.2~1.5 cm、≥1.5 cm),以及大曲質(zhì)量,培養(yǎng)過程注意事項:前期培養(yǎng)箱濕度控制在95%左右,培養(yǎng)時間3~8 d,即可達到不同曲皮厚度的范圍(0.2~1.4 cm),培養(yǎng)8~14 d時,培養(yǎng)箱濕度控制在80%左右,培養(yǎng)14 d后,培養(yǎng)箱濕度控制在40%~70%之間,每天都打開培養(yǎng)箱排水分與空氣交換5 min。
1.2.2 大曲固體浸出液制備
根據(jù)測得大曲試樣的水分,稱取相當于絕干試樣量5 g,精確至0.001 g,放入250 mL燒杯中,加10 mL乙酸-乙酸鈉緩沖溶液,再加水,用玻璃棒攪拌均勻,定容至100 mL。將上述燒杯置于35℃恒溫水浴中保溫浸漬1 h,保溫期間每間隔15 min攪拌1次。使用脫脂棉過濾,收集濾液,備用。
1.2.3 大曲理化指標的測定方法[11]
1.2.3.1 糖化力測定
(1)吸取25 mL 20 g/L淀粉溶液于50 mL容量瓶中,加pH4.6的緩沖溶液5 mL,將容量瓶于35℃水浴中保溫10 min,加5.00 mL固體曲浸出液,立即混勻計時,35℃水浴中保溫60 min,迅速加入15 mL 0.1 moL/L的NaOH溶液,終止酶解反應(yīng)。冷卻至室溫后,用水定容至50 mL,搖勻,得到糖化液。(2)同時作一空白試驗:吸取25 mL 20 g/L淀粉溶液,置于50 mL容量瓶中,加pH4.6緩沖溶液5 mL。先加入15 mL 0.1 moL/L的NaOH溶液,再準確加入5.00 mL曲浸出液,用水定容至50 mL,搖勻。(3)吸取斐林試劑甲液、乙液各5 mL于150 mL三角瓶中,加入5 mL制備好的糖化液,用滴定管加入一定量1.0 g/L葡萄糖標準溶液(使隨后滴定時其用量不超過1 mL),置電爐上加熱煮沸2 min,在沸騰狀態(tài)下繼續(xù)滴加葡萄糖標準溶液至藍色消失而呈淡黃色,記錄葡萄糖標準溶液的總用量。后面的滴定操作應(yīng)在1 min內(nèi)完成。同時作一空白試驗。(4)空白試驗取斐林試劑甲液、乙液各5 mL于三角瓶中,加入5 mL制備好的空白液,以下操作同試樣操作。
固體曲糖化力的定義為:在35℃,pH4.6時,1 g絕干曲1 h內(nèi)酶解可溶性淀粉為葡萄糖的質(zhì)量。其計算公式為:
式中:X為糖化力,mg葡萄糖/g曲·h;V0為空白試驗葡萄糖標準溶用量,mL;V為試樣測定葡萄糖標準溶液用量,mL;ρ為葡萄糖標準溶液濃度,g/mL;ms為以絕干曲計的試樣稱取量,5.00 g;t為酶解時間,h;結(jié)果保留整數(shù)。
1.2.3.2 液化力測定
吸取25.0 mL 20.0 g/L可溶性淀粉和5 mL的pH4.6緩沖溶液于100 mL試管中,于35℃水浴中保溫10 min后,加入5.0 mL試樣浸出液,充分搖勻,立即計時。繼續(xù)于35℃保溫,定時取出1滴反應(yīng)液于加有碘液的白磁點滴板空穴內(nèi),觀察變色情況。當?shù)庖侯伾辉俑淖儠r即為反應(yīng)終點,立即記錄液化時間。
固體曲液化力的定義為:在35℃,pH4.6時,1 g絕干曲液化可溶性淀粉的質(zhì)量。其計算公式為:
式中:X為液化力,g淀粉/g曲·h;25.0為可溶性淀粉溶液用量,mL;0.020為可溶性淀粉溶液濃度,g/mL;0.25為5 mL浸出液相當于絕干曲計的試樣量,g;t為液化時間,min;結(jié)果保留小數(shù)點后2位。
1.2.3.3 發(fā)酵力測定
用移液管吸取發(fā)酵培養(yǎng)液50 mL于150 mL三角瓶中,塞上棉塞,外包油紙,在0.1 MPa壓力下蒸汽滅菌30 min。然后,在無菌條件下,向三角瓶內(nèi)接入相當于1.0 g絕干曲的曲粉,稱量并記錄發(fā)酵培養(yǎng)前三角瓶和內(nèi)容物的總質(zhì)量。之后將三角瓶置于培養(yǎng)箱中30℃培養(yǎng)72 h。其中每8 h稱量1次。每次稱量前輕輕搖動使二氧化碳逸出。如此反復稱量直至衡量為止,即發(fā)酵完畢。
發(fā)酵力指1 g絕干曲在上述規(guī)定條件下,發(fā)酵糖化液產(chǎn)生二氧化碳的質(zhì)量。其計算公式為:
式中:X為發(fā)酵力,g CO2/g曲;m1為發(fā)酵之前發(fā)酵瓶和內(nèi)容物總質(zhì)量,g;m2為發(fā)酵完畢發(fā)酵瓶和內(nèi)容物總質(zhì)量,g;m為絕干曲的接入試樣質(zhì)量,g;結(jié)果保留到小數(shù)點后2位。
1.2.4 大曲微生物菌落的培養(yǎng)
稱取適量的大曲,將其徹底粉碎,溶于無菌水中,采用梯度稀釋法,將預培養(yǎng)樣品分別稀釋至10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7,吸取每一梯度樣品1 mL分別涂布于酵母培養(yǎng)基、細菌培養(yǎng)基以及霉菌培養(yǎng)基,選擇合適稀釋倍數(shù)的稀釋液,每個稀釋度做3個平行。細菌分離培養(yǎng)基置于37℃恒溫培養(yǎng)3 d,酵母和霉菌分離培養(yǎng)基置于28℃恒溫培養(yǎng)3~5 d,分別統(tǒng)計記錄菌落總數(shù)[12]。
1.2.5 驗曲小組對不同厚度曲皮大曲感官評比
將實驗室培養(yǎng)不同厚度曲皮的大曲分類,在不參考不同厚度大曲理化指標前提下,由酒廠驗曲小組5名成員對大曲整體感官打分評比,評分滿分50分,評分越高大曲感官質(zhì)量越好。
將實驗室培養(yǎng)的同一曲皮厚度范圍內(nèi)大曲粉碎,制備出大曲固體浸出液,按照液化力測定方法測定不同曲皮厚度的液化力,結(jié)果見圖1。曲皮厚度在1.2~1.5 cm之間時,大曲液化力達到最大值,為2.2 g淀粉/g曲·h;當大曲曲皮厚度小于0.5 cm時,液化力的平均值只有0.8 g淀粉/g曲·h;曲皮厚度大于1.5 cm時,液化力平均值為2.1 g淀粉/g曲·h。隨著曲皮厚度的增加,大曲液化力也隨著變強,但是大曲曲皮變厚的同時大曲的火圈也會加重,所以曲皮大于1.5 cm后,大曲的液化力沒有再增強,反而有一定的變?nèi)酢?/p>
圖1 曲皮厚度與液化力關(guān)系
將實驗室培養(yǎng)的同一曲皮厚度范圍內(nèi)大曲粉碎,制備出大曲固體浸出液,按照糖化力測定方法測定不同曲皮厚度的糖化力,結(jié)果見圖2。曲皮厚度在1.2~1.5 cm之間時,大曲糖化力達到最大值,為1170 mg葡萄糖/g曲·h;當大曲曲皮厚度小于0.5 cm時,糖化力的平均值只有550 mg葡萄糖/g曲·h;曲皮厚度在0.5~0.8 cm時,糖化力平均值為820 mg葡萄糖/g曲·h;曲皮厚度在0.8~1.2 cm時,糖化力平均值為980 mg葡萄糖/g曲·h;曲皮厚度大于1.5 cm時,糖化力平均值為1010 mg葡萄糖/g曲·h。隨著曲皮厚度的增加,大曲糖化力也隨著變強,但是大曲曲皮變厚的同時大曲的火圈也會加重,霉菌再往大曲內(nèi)部生長變得困難,所以曲皮厚度大于1.5 cm以后,大曲的糖化力沒有再增強,反而有一定的變?nèi)酢?/p>
圖2 曲皮厚度與糖化力關(guān)系
將實驗室培養(yǎng)的同一曲皮厚度范圍內(nèi)大曲粉碎,制備出大曲固體浸出液,按照發(fā)酵力測定方法測定不同曲皮厚度的發(fā)酵力,結(jié)果見圖3。當大曲曲皮厚度小于0.5 cm時,發(fā)酵力的平均值為1.4 g CO2/g曲;曲皮厚度在0.5~0.8 cm時,發(fā)酵力平均值為1.5 g CO2/g曲;曲皮厚度在0.8~1.2 cm時,發(fā)酵力平均值為1.6 g CO2/g曲;曲皮厚度在1.2~1.5 cm之間,大曲發(fā)酵力為1.5 g CO2/g曲;曲皮厚度大于1.5 cm時,發(fā)酵力平均值為1.6 g CO2/g曲。隨著曲皮厚度的增加,大曲發(fā)酵力并沒有變化,可能與酵母菌的生長繁殖習性有關(guān),因為酵母菌主要繁殖方式是芽殖和裂殖,在大曲培養(yǎng)過程中酵母菌很難往大曲內(nèi)部生長,主要分布在大曲的曲皮最外邊,所以大曲發(fā)酵力大小受曲皮厚度的影響不大。
2.4.1 曲皮厚度對霉菌的影響
圖3 曲皮厚度與發(fā)酵力關(guān)系
將實驗室培養(yǎng)的同一曲皮厚度范圍內(nèi)大曲粉碎,按照微生物菌落培養(yǎng)方法,結(jié)果見圖4。由圖4可知:當曲皮厚度在1.2~1.5 cm時,霉菌菌落數(shù)達到最大值,為8.6×104cfu/g;曲皮厚度小于0.5 cm時,霉菌菌落數(shù)為4.2×104cfu/g;曲皮厚度在0.5~0.8 cm時,霉菌菌落數(shù)為5.9×104cfu/g;曲皮厚度在0.8~1.2 cm時,霉菌菌落數(shù)為7.1×104cfu/g;曲皮厚度大于1.5 cm時,霉菌菌落數(shù)為8.3×104cfu/g。隨著曲皮厚度的增加,大曲霉菌菌落數(shù)呈先增加再減少的過程,這個過程與大曲的液化力、糖化力變化一致。
圖4 曲皮厚度與霉菌菌落關(guān)系
2.4.2 曲皮厚度對酵母菌的影響
將實驗室培養(yǎng)的同一曲皮厚度范圍內(nèi)大曲粉碎,按照微生物菌落培養(yǎng)方法,結(jié)果見圖5。
在大曲培養(yǎng)過程中,曲皮厚度變化對酵母菌菌落數(shù)沒有影響,這與酵母菌的繁殖方式有關(guān),大曲內(nèi)部酵母菌很少,主要是分布在曲皮表面。曲皮厚度小于0.5 cm時,酵母菌菌落數(shù)為4.3×105cfu/g;曲皮厚度在0.5~0.8 cm時,酵母菌菌落數(shù)為4.62×105cfu/g;曲皮厚度在0.8~1.2 cm時,酵母菌菌落數(shù)為5.6×105cfu/g;曲皮厚度在1.2~1.5 cm之間時,大曲酵母菌菌落數(shù)為5.3×105cfu/g;曲皮厚度大于1.5 cm時,酵母菌菌落數(shù)為5.8×105cfu/g。
圖5 曲皮厚度與酵母菌菌落關(guān)系
2.4.3 曲皮厚度對細菌的影響
將實驗室培養(yǎng)的同一曲皮厚度范圍內(nèi)大曲粉碎,按照微生物菌落培養(yǎng)方法,結(jié)果見圖6。當大曲曲皮厚度小于0.5 cm時,細菌菌落數(shù)為2.34×106cfu/g;曲皮厚度在0.5~0.8cm時,細菌菌落數(shù)為2.36×106cfu/g;曲皮厚度在0.8~1.2cm時,細菌菌落數(shù)為2.3×106cfu/g;曲皮厚度在1.2~1.5 cm之間時,大曲細菌菌落數(shù)為2.7×106cfu/g;曲皮厚度大于1.5 cm時,細菌菌落數(shù)為2.4×106cfu/g。
圖6 曲皮厚度與細菌菌落關(guān)系
不同厚度曲皮感官評比結(jié)果見表1,由表1可知,大曲厚度在0.5~0.8 cm時,大曲評比得分最高。
大曲曲皮厚度≤0.5 cm時,大曲液化力為0.8 g淀粉/g曲·h,糖化力為550 mg葡萄糖/g曲·h,發(fā)酵力為1.4 g CO2/g曲,霉菌菌落數(shù)為4.2×104cfu/g,酵母菌落數(shù)為4.3×105cfu/g,細菌菌落數(shù)為2.34×106cfu/g,大曲感官評分46.6分。
表1 大曲感官驗證評比結(jié)果
大曲曲皮厚度為0.5~0.8cm時,大曲液化力為1.6 g淀粉/g曲·h,糖化力為820 mg葡萄糖/g曲·h,發(fā)酵力為1.5 g CO2/g曲,霉菌菌落數(shù)為5.9×104cfu/g,酵母菌落數(shù)為4.62×105cfu/g,細菌菌落數(shù)為2.36×106cfu/g,大曲感官評分49.5分。
大曲曲皮厚度為0.8~1.2 cm時,大曲液化力為1.9 g淀粉/g曲·h,糖化力為980 mg葡萄糖/g曲·h,發(fā)酵力為1.6 g CO2/g曲,霉菌菌落數(shù)為7.1×104cfu/g,酵母菌落數(shù)為5.6×105cfu/g,細菌菌落數(shù)為2.3×106cfu/g,大曲感官評分48.7分。
大曲曲皮厚度為1.2~1.5 cm時,大曲液化力為2.2 g淀粉/g曲·h,糖化力為1170 mg葡萄糖/g曲·h,發(fā)酵力為1.5 g CO2/g曲,霉菌菌落數(shù)為8.6×104cfu/g,酵母菌落數(shù)為5.3×105cfu/g,細菌菌落數(shù)為2.7×106cfu/g,大曲感官評分47.1分。
大曲曲皮厚度≥1.5 cm時,大曲液化力為2.1 g淀粉/g曲·h,糖化力為1010 mg葡萄糖/g曲·h,發(fā)酵力為1.6 g CO2/g曲,霉菌菌落數(shù)為8.3×104cfu/g,酵母菌落數(shù)為5.8×105cfu/g,細菌菌落數(shù)為2.4×106cfu/g,大曲感官評分46.1分。
綜合本單位優(yōu)質(zhì)大曲理化指標要求(液化力大于1.5 g淀粉/g曲·h,糖化力大于700 mg葡萄糖/g曲·h,發(fā)酵力大于1.2 g CO2/g曲,大曲感官評分高于45分)和生產(chǎn)車間實際管理成效,大曲曲皮厚度應(yīng)該控制在0.5~0.8 cm之間。