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        應(yīng)用二重PCR技術(shù)檢測肉制品中的肉源性成分

        2019-02-18 07:08:56李慧潔蔣會敏賈小同李小艷王利娜尹皓月
        農(nóng)產(chǎn)品加工 2019年2期
        關(guān)鍵詞:條帶引物模板

        李慧潔,蔣會敏,賈小同,李小艷,王利娜,尹皓月,李 鈾

        (西北民族大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅蘭州 730124)

        隨著經(jīng)濟(jì)的發(fā)展,人們的消費(fèi)水平也逐步提高,消費(fèi)者對食品的安全性有了更高的要求,在國內(nèi)及國際貿(mào)易中,牛、羊肉中摻雜價格便宜的鼠、貓、兔、豬等肉類,以次充好的欺騙行為屢見不鮮,嚴(yán)重?fù)p害了消費(fèi)者的利益。在穆斯林國家和地區(qū),肉類食品的摻假不僅僅是經(jīng)濟(jì)問題,更是宗教問題。在市場中,牛、羊肉中摻雜價格便宜的鼠、貓、兔、豬等肉類,以次充好獲取高額利益,加之近年來瘋牛病、羊瘙癢癥等疾病的出現(xiàn),肉源性成分的鑒定刻不容緩。隨著PCR技術(shù)在摻假肉檢測中的引入,PCR法、多重PCR法和實(shí)時熒光PCR以其高靈敏度和強(qiáng)特異性逐漸成為肉類鑒別的主要分析方法[1-2]。其中,多重PCR法具有反應(yīng)體系中可擴(kuò)增出多段目的DNA片段[3]的優(yōu)勢,Tettelin H等人[4]已成功進(jìn)行了15多對引物的多重PCR。PCR技術(shù)是一種用于體外擴(kuò)增DNA片段的方法,其反應(yīng)原理類似于 DNA的半保留復(fù)制過程,它的特異性表現(xiàn)在與靶序列兩端互補(bǔ)的核苷酸引物上。人為地給試管中的待擴(kuò)增目標(biāo)DNA樣品提供合適的環(huán)境條件,如模板 DNA、核苷酸引物、DNA聚合酶和合適的緩沖液體系等反應(yīng)所需物質(zhì),通過控制反應(yīng)液溫度和反應(yīng)時間實(shí)現(xiàn)DNA變性、退火及延伸3個基本過程,然后重復(fù)3個反應(yīng)過程,在若干循環(huán)后實(shí)現(xiàn)DNA片段呈指數(shù)倍擴(kuò)增。多重PCR技術(shù)[5]就是指在單一PCR技術(shù)的基礎(chǔ)上進(jìn)行改進(jìn)的一種技術(shù),是將多條引物和多條模板混合在一個反應(yīng)體系中分別特異擴(kuò)增不同的目的條帶,或者多條引物和單一的模板DNA混合在同一反應(yīng)體系中擴(kuò)增同一模板的不同片斷,常用于對超長片斷的擴(kuò)增。和傳統(tǒng)單一的PCR技術(shù)相比,多重PCR技術(shù)具有高效性、系統(tǒng)性和經(jīng)濟(jì)簡便的特點(diǎn)。

        PCR技術(shù)具有上述突出優(yōu)點(diǎn),人們將這一技術(shù)應(yīng)用到不同的領(lǐng)域,使之迅速發(fā)展,取得了巨大的成果,如從事食品病原菌檢測的研究人員將這種技術(shù)引入到食品檢測領(lǐng)域。近年來,基于反應(yīng)的基本原理,許多學(xué)者對PCR技術(shù)進(jìn)行研究和改進(jìn),使之得到進(jìn)一步完善,并在此基礎(chǔ)上派生出了許多新的用途[6]。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        在市場上購買生鮮的牛肉、豬肉、雞肉和羊肉,保存于-4℃冰箱中。

        1.2 試劑與器材

        細(xì)胞裂解液、7.8 mol/L醋酸銨,異丙醇,1X TEL,Buffer TE,70%乙醇,dNTPS(2.5 mmol/L),瓊脂糖,蛋白酶K(100μg/mL),細(xì)胞裂解緩沖液,SDS 10%,胰RNA酶 20μg/mL,TE緩沖液(pH值8.0),酚,氯仿,異戊醇(25∶24∶1),冷無水乙醇,高壓滅菌鍋,以及PCR相關(guān)試劑(Premix Taq Version2.0,Takara,500μL)、PCR 儀 (MyGeneTML Series Peltire Thermal Cycler) 和電泳儀(瓊脂糖水平電泳)。

        1.3 試驗(yàn)步驟[7-21]

        1.3.1 二重PCR反應(yīng)體系建立

        (1) DNA提取。運(yùn)用Gentra Puregene Extraction Kit(Gentra Systems Inc.)提供的方法提取肉制品混合物DNA,提取的DNA保存在TE溶液里,作為PCR反應(yīng)的模板。用紫外分分光度計(jì)測試DNA濃度。

        (2) 引物設(shè)計(jì)。從文獻(xiàn)里分別查到豬(Cytb)、牛 (Cytb)、雞 (12S rRNA)、羊 (Cytb) 的引物序列,由Takara公司合成(Takara,中國),保存于-20℃冰箱中。

        (3) 單重 PCR擴(kuò)增。

        單重PCR中不同動物擴(kuò)增的目的基因名稱與大小、擴(kuò)增的引物序列、長度和退火遞度詳見表1,單重PCR反應(yīng)體系詳見表2,單重PCR反應(yīng)程序詳見表3。

        1.3.2 二重PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化

        表1 引物的DNA序列、預(yù)擴(kuò)增片段長度、引物名稱、退火梯度

        表2 單重PCR反應(yīng)體系

        表3 單重PCR反應(yīng)程序

        按照擴(kuò)增的目標(biāo)基因大小,將4種動物兩兩組合,即豬牛、牛雞、牛羊、豬雞,豬羊。由于雞和羊大小近似,不容易區(qū)別,因此二重PCR不考慮雞羊組合。

        為獲得最佳的二重PCR反應(yīng)體系,首先嘗試了不同的引物濃度、DNA濃度和Premix Taq的濃度,具體PCR反應(yīng)體系如下:

        (1) 2種動物的上、下游引物各為1μL,Premix Taq 12.0μL,2種模板DNA各加3.5μL,ddH2O 2μL,體系總體積為25.0μL。

        (2) 2種動物的上、下游引物各為1μL,Premix Taq 12.0μL,2種模板DNA各加6.0μL,ddH2O 2μL,體系總體積為30.0μL。

        (3) 2種動物的上、下游引物各為1μL,Premix Taq 12.0μL,2種模板DNA各加3.0μL,ddH2O 3μL,體系總體積為25.0μL。

        (4) 2種動物的上、下游引物各為0.5μL,Premix Taq12.5μL,2種模板DNA各加3.0μL,ddH2O4.5μL,體系總體積為25.0μL。

        (5) 2種動物的上、下游引物各為0.5μL,Premix Taq 12.0μL,2種模板DNA各加3.0μL,ddH2O 5μL,體系總體積為25.0μL。

        同時為獲得二重PCR中不同引物組合的最佳退火溫度,試驗(yàn)中為每組引物設(shè)置55~64℃的溫度梯度,因此每組動物需要10個重復(fù),為避免加樣時試劑的損失,配置Mastermix時按照12個樣本量的試劑量加樣。

        最佳退火溫度的確立——二重PCR反應(yīng)體系見表2。

        表2 最佳退火溫度的確立——二重PCR反應(yīng)體系

        2 結(jié)果與分析

        2.1 二重PCR反應(yīng)體系建立結(jié)果

        經(jīng)電泳結(jié)果檢測得出,豬、牛、雞和羊的PCR擴(kuò)增片段大小分別為204,472,131,119 bp。由于雞和羊的擴(kuò)增片段大小過于接近(131和119bp),電泳圖上不易區(qū)分,因此試驗(yàn)中的二重PCR體系使用了5種動物組合,分別為牛和豬、牛和雞、牛和羊、豬和雞、豬和羊。最終確立的二重PCR為25μL體系,包含12.5μL的Premix Taq,每條引物0.4μmol/L,以及每種動物DNA 3~4μL。二重PCR反應(yīng)條件為預(yù)變性94℃ 3 min,35個循環(huán):94℃ 30 s,55℃30 s,72℃ 30 s;延伸72℃ 5 min。

        2.2 二重PCR體系優(yōu)化結(jié)果

        豬羊、豬雞二重PCR結(jié)果見圖1。

        圖1 豬羊、豬雞二重PCR結(jié)果

        圖1 左側(cè)中從上到下,分別是500 bp Marker、豬羊模板DNA 1~8、1 000 bp Marker。從圖中清楚可見豬羊模板DNA 1~3均出現(xiàn)了2條不同的明亮條帶,說明這3個豬羊DNA擴(kuò)增較為成功。豬羊模板DNA 4~8均沒有出現(xiàn)條帶。圖中擴(kuò)增的8個豬羊DNA模板,有3個擴(kuò)增成功,說明在上述反應(yīng)體系下擴(kuò)增,豬羊的二重PCR擴(kuò)增成功的概率較高,該反應(yīng)體系可以用于擴(kuò)增豬羊DNA。

        圖1右下側(cè)中從上到下,分別是1 000 bp Marker、豬雞模板DNA 1~6。其中,豬雞模板DNA1~2出現(xiàn)2條明顯不同的條帶,圖中6個豬雞模板,有2個擴(kuò)增成功,說明該反應(yīng)體系可以用于研究擴(kuò)增豬雞DNA。

        雞羊DNA二重PCR結(jié)果見圖2。

        圖2 雞羊DNA二重PCR結(jié)果

        圖2 中所有的1 000 bp Marker與500 bp Marker跑的效果均較好,說明膠片制作效果較好。圖2左側(cè)為雞DNA的擴(kuò)增結(jié)果,DNA條帶明亮位于1 000 bp Marker的 100~200 bp,位于 500 bp Marker的 100~150 bp,可以判斷出雞擴(kuò)增長度為120 bp左右。圖2右側(cè)為羊DNA的擴(kuò)增結(jié)果,DNA條帶明亮位于1 000 bp Marker的 100~200 bp,位于 500 bp Marker的 100~150 bp,可以判斷出雞擴(kuò)增長度為130 bp左右。

        豬牛DNA,雞牛DNA,牛羊DNA二重?cái)U(kuò)增結(jié)果見圖3。

        圖3 豬牛DNA,雞牛DNA,牛羊DNA二重?cái)U(kuò)增結(jié)果

        圖3 中所有的1 000 bp Marker與500 bp Marker跑得效果均較好,說明膠片制作效果較好。圖3左側(cè)為豬牛DNA擴(kuò)增的DNA條帶,從上到下分別為豬牛DNA 1~9,其中豬牛DNA 1~5均只有1條DNA條帶,說明這5個的豬牛DNA擴(kuò)增失?。回i牛DNA 6~9均有2條明亮的DNA條帶,說明這4個DNA在該反應(yīng)體系下擴(kuò)增較為成功。圖3右上為牛羊DNA擴(kuò)增的條帶,從上到下分別為牛羊DNA 1~4,這4個DNA均擴(kuò)增出了2條明亮的DNA條帶,說明在上述反應(yīng)體系下擴(kuò)增較為成功。圖3右下為雞牛DNA擴(kuò)增條帶,從上到下分別為雞牛DNA 1~5,這5個DNA均擴(kuò)增出了2條明亮的DNA條帶,說明在此反應(yīng)體系下擴(kuò)增較為成功。

        5種動物的二重PCR結(jié)果見圖4。

        圖4 5種動物的二重PCR結(jié)果

        3 結(jié)論

        運(yùn)用單重PCR技術(shù)擴(kuò)增牛、豬、雞、羊的DNA,并對每個樣品做梯度PCR,以尋找各對引物最接近的適宜的退火溫度,為后期二重PCR試驗(yàn)做準(zhǔn)備。豬、牛、雞、羊的退火溫度范圍接近,由于雞羊目的條帶大小十分相同,在電泳圖上不易于區(qū)分,因此在二重PCR時不考慮作為模板DNA。

        在二重PCR中通過對PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化,尤其是針對6種不同的動物模版組合(牛豬、牛雞、牛羊、豬雞、豬羊、雞羊),設(shè)置退火溫度梯度55~64℃范圍后,對6種二重PCR的電泳圖進(jìn)行了比較,最終確立了55℃為最佳退火溫度。并且6種動物模版組合中,由于雞羊組合的目標(biāo)條帶大小近似(119 bp和131 bp),電泳圖上不宜區(qū)分,因此最終選擇了5種二重PCR:牛豬、牛雞、牛羊、豬雞、豬羊,其反應(yīng)體系均為25μL總體積,上下引物各1μL,模版DNA 3~4 μL,Premix Taq 12.5 μL。反應(yīng)條件為預(yù)變性94℃3 min,35個循環(huán):94℃30 s,55℃ 30 s,72℃ 30 s;延伸72℃ 5 min。

        引物特異性和融合溫度在多重PCR試驗(yàn)中是非常關(guān)鍵的,因其成功取決于在單重PCR條件下引物與其各自靶標(biāo)選擇性退火的能力,包括反應(yīng)體系、循環(huán)次數(shù)和退火溫度。故引物設(shè)計(jì)是PCR發(fā)展中十分重要的一步,需包含足夠的種內(nèi)保守序列和密切相關(guān)的Tm的種間多態(tài)性。

        快速檢測出更多肉品的種類和摻假,仍然是我國學(xué)者研究的重點(diǎn)對象,運(yùn)用多重PCR方法似乎是最為快速的一種方式,它具有極高的準(zhǔn)確性,為此希望通過該方法建立一種快速、高效和同時檢測肉制品中多種肉源性成分的方法,為肉類摻假提供更為有利的證據(jù)。

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