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        紫外誘變選育高產(chǎn)酒精及酸的釀酒酵母

        2019-02-14 02:24:08王犁燁陳新軍盧丕超劉維兵
        中國(guó)釀造 2019年1期
        關(guān)鍵詞:杜氏產(chǎn)酸小管

        王犁燁,陳新軍,盧丕超,劉維兵,高 飛,馬 珊,張 穎,武 運(yùn)*

        (1.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與藥學(xué)學(xué)院,新疆烏魯木齊 830052;2.新疆中信國(guó)安葡萄酒業(yè)有限公司,新疆 昌吉 832200;3.新疆維吾爾自治區(qū)科技項(xiàng)目服務(wù)中心,新疆 烏魯木齊 830011;4.吐魯番市質(zhì)量與計(jì)量檢測(cè)所,新疆 吐魯番 838000)

        酵母菌是泛指能發(fā)酵糖類(lèi)的各種單細(xì)胞真核微生物,主要分布在含糖質(zhì)較高的偏酸性環(huán)境[1]。酵母菌與人類(lèi)關(guān)系密切,是人類(lèi)實(shí)踐中應(yīng)用較早的一類(lèi)微生物,被運(yùn)用于釀造、食品、醫(yī)藥等方面[2]。通常從自然界分離得到的野生菌株在發(fā)酵性能和功能上都具有一定的局限性,因此研究人員通過(guò)對(duì)已知菌株進(jìn)行誘變,從基因?qū)用嫔细淖兘湍妇男再|(zhì)及功能,從而達(dá)到生產(chǎn)需要[3-6]。

        目前,常用的誘變方式包括物理方式和化學(xué)方式,紫外線誘變(ultraviolet mutagenesis,UV mutagenesis)是常見(jiàn)的物理誘變方式,廣泛用于微生物菌種的誘變處理,并且有著悠久的歷史[7-8]。紫外線能量低,對(duì)核酸造成的傷害比較單一,具有操作簡(jiǎn)便、效率高、安全性好、誘變效率高等優(yōu)點(diǎn),在避光條件下誘變結(jié)束后已產(chǎn)生突變的性狀不易恢復(fù),因此應(yīng)用較廣泛[9-10]。

        新疆地區(qū)生態(tài)環(huán)境獨(dú)特,區(qū)位優(yōu)勢(shì)明顯,是發(fā)展釀酒葡萄的理想產(chǎn)區(qū)[11]。但由于新疆夏季光照時(shí)間長(zhǎng),光照強(qiáng)度大,所以葡萄酸度低,對(duì)葡萄酒的品質(zhì)產(chǎn)生一定影響。試驗(yàn)以從葡萄表面篩選的釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)菌株Y6為出發(fā)菌,通過(guò)紫外誘變對(duì)其發(fā)酵性能進(jìn)行改造,以期獲得高產(chǎn)酒精及酸且發(fā)酵性能穩(wěn)定的目標(biāo)釀酒酵母菌株,通過(guò)微生物代謝來(lái)增加葡萄酒的酒精度和酸度,以期提高新疆葡萄酒品質(zhì)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        1.1.1 菌株

        出發(fā)釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)菌株Y6:新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與藥學(xué)學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室提供。

        1.1.2 化學(xué)試劑

        酵母浸粉、蛋白胨、瓊脂粉:北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;葡萄糖、無(wú)水乙醇:天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司;2,3,5-三苯基氯化四氮唑(2,3,5-triphenyltetrazolium chloride,TTC):上海藍(lán)季生物科技發(fā)展有限公司;溴甲酚綠:天津市北聯(lián)精細(xì)化學(xué)品開(kāi)發(fā)有限公司;馬鈴薯葡萄糖瓊脂:青島高科園海博生物技術(shù)有限公司;磷酸二氫鉀(KH2PO4)、硫酸鎂(MgSO4·7H2O):天津市光復(fù)科技發(fā)展有限公司;實(shí)驗(yàn)所用試劑均為分析純或生化試劑。

        1.1.3 培養(yǎng)基

        TTC上層培養(yǎng)基:0.05 g TTC,0.5 g葡萄糖,2 g瓊脂,100 mL蒸餾水,121℃滅菌15min。

        TTC下層培養(yǎng)基:10 g/L葡萄糖,2 g/L蛋白胨,5 g/L酵母浸粉,1 g/L KH2PO4,0.4 g/L MgSO4·7H2O,20 g/L瓊脂,1 000 mL蒸餾水,調(diào)pH值為5.5~5.7,121℃滅菌15 min。

        馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基:6 g/L馬鈴薯浸粉,20 g/L葡萄糖,20 g/L瓊脂,1 000 mL蒸餾水,調(diào)pH值為5.6~5.8,115℃滅菌20 min。

        酵母浸出粉胨葡萄糖(yeast extract peptone dextrose,YPD)培養(yǎng)基:20 g/L葡萄糖,20 g/L蛋白胨,10 g/L酵母浸粉,20 g/L瓊脂,1 000 mL蒸餾水,121℃滅菌15 min。

        溴甲酚綠培養(yǎng)基:6 g/L馬鈴薯浸粉,20 g/L葡萄糖,20 g/L瓊脂,0.1 g/L溴甲酚綠,1 000 mL蒸餾水,調(diào)pH值為6.0,115℃滅菌20 min。

        1.2 儀器與設(shè)備

        FA2014N分析天平:北京東南儀誠(chéng)實(shí)驗(yàn)室設(shè)備有限公司;LDZX-50KBS立式高壓滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠;HR40-A2生物安全柜:青島海爾特種電器有限公司;MJX-160-Z霉菌培養(yǎng)箱:上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;TU-1810紫外可見(jiàn)光光度計(jì):北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;FE20 PLUS pH計(jì):梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;PAL-1型手持糖度計(jì):北京陽(yáng)光億事達(dá)科技有限公司;Y15全自動(dòng)分析儀:美國(guó)Biosystem公司。

        1.3 試驗(yàn)方法

        1.3.1 酵母菌的活化和菌懸液的制備

        將菌株Y6接種于YPD液體培養(yǎng)基中,于28℃條件下培養(yǎng)24 h;然后以2%的接種量接入YPD液體培養(yǎng)基中,于28℃條件下培養(yǎng)24 h后,接種到Y(jié)PD固體培養(yǎng)基中;其次挑選出菌落大,表面光滑,呈乳白色的單菌落為出發(fā)菌,接種到Y(jié)PD固體培養(yǎng)基斜面上,在冰箱中保存;最后將斜面上的出發(fā)菌接種到Y(jié)PD液體培養(yǎng)基,在28℃條件下培養(yǎng)24 h,重復(fù)兩次制得菌懸液。

        1.3.2 Y6酵母生長(zhǎng)曲線的測(cè)定

        將在YPD液體培養(yǎng)基中活化好的菌株Y6菌懸液以5%的接種量接種到Y(jié)PD液體培養(yǎng)基中,在28℃條件下培養(yǎng),每間隔2 h取一次樣,在波長(zhǎng)600 nm處測(cè)定吸光度值,以空白培養(yǎng)基為對(duì)照,根據(jù)測(cè)得的吸光度值繪制菌株Y6的生長(zhǎng)曲線,確定菌株Y6的生長(zhǎng)對(duì)數(shù)期。

        1.3.3 紫外誘變?cè)囼?yàn)

        吸取4 mL處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的菌懸液放入培養(yǎng)皿中,將培養(yǎng)皿放在距30 W的紫外燈30 cm處進(jìn)行照射,照射時(shí)間分別為40 s、60 s、80 s、100 s、120 s、140 s、160 s,同時(shí)做空白對(duì)照組。照射結(jié)束后,分別將每個(gè)平板中的菌懸液稀釋1011倍并涂布在3個(gè)YPD固體培養(yǎng)基上,在28℃避光條件培養(yǎng)48 h,防止光復(fù)活,平板計(jì)數(shù),計(jì)算致死率,并隨機(jī)選取誘變后的酵母菌斜面保藏,進(jìn)行發(fā)酵實(shí)驗(yàn)[12]。致死率計(jì)算公式如下:

        式中:Z為致死率,%;X1為紫外線處理后的菌落數(shù),個(gè);X對(duì)照

        組的菌落數(shù),個(gè)。

        1.3.4 誘變菌株產(chǎn)酒精產(chǎn)酸能力初篩

        (1)TTC培養(yǎng)基篩選[13-15]

        采用劃線法將挑選出的突變菌株接種于TTC下層培養(yǎng)基中,在28℃條件下培養(yǎng)48 h后,在TTC下層培養(yǎng)基上覆蓋一層TTC上層培養(yǎng)基,并于28℃條件下培養(yǎng)3 h,觀察培養(yǎng)平皿中的顯色情況,從中篩選出產(chǎn)酒精能力強(qiáng)的突變菌株。

        (2)溴甲酚綠培養(yǎng)基篩選[16]

        先在培養(yǎng)皿中倒入一層剛好可以覆蓋培養(yǎng)皿底部的溴甲酚綠培養(yǎng)基,待其凝固后放入牛津杯,再在牛津杯外圍倒入一層溴甲酚綠培養(yǎng)基,培養(yǎng)基凝固后取出牛津杯,將TTC培養(yǎng)基篩選出的顏色較深的酵母菌株進(jìn)行活化,吸取0.1 mL菌液環(huán)接種于牛津杯空洞內(nèi),在28℃條件下培養(yǎng)24 h,觀察黃色圈,選擇菌落周?chē)霈F(xiàn)較大黃色圈的菌株進(jìn)行發(fā)酵能力試驗(yàn)。

        (3)菌株發(fā)酵能力測(cè)試[17]

        將前兩步篩選出的突變酵母菌株,以5%的接種量分別接種于裝有10 mL YPD液體培養(yǎng)基的試管中后,放入杜氏小管,并確保杜氏小管內(nèi)無(wú)氣泡,在28℃的條件下培養(yǎng),每12h觀察一次突變菌株產(chǎn)氣情況,記錄杜氏小管內(nèi)的填充度,了解誘變菌株的發(fā)酵性能。

        1.3.5 誘變菌株產(chǎn)酒精產(chǎn)酸能力復(fù)篩

        將葡萄汁于115℃滅菌20 min,分裝在5個(gè)三角瓶中,每瓶150 mL,測(cè)定葡萄汁的糖度為23.6°Bx,總酸為4.94 g/L。將上述篩選的誘變菌株和出發(fā)菌株同時(shí)以5%的接種量接種于葡萄汁中,在25℃條件下培養(yǎng)10 d,測(cè)定菌株產(chǎn)酒精和產(chǎn)酸能力,確定目標(biāo)菌株。

        1.3.6 遺傳穩(wěn)定性試驗(yàn)[18]

        將目標(biāo)菌株連續(xù)傳代培養(yǎng)5次,將每一代菌株以5%的接種量接種于糖度為23.6°Bx,總酸為4.94 g/L的葡萄汁中,在28℃條件下培養(yǎng)10 d,測(cè)定突變菌株的產(chǎn)酒精和產(chǎn)酸能力,從而驗(yàn)證菌株的突變性能是否能夠穩(wěn)定遺傳。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 菌株Y 6的生長(zhǎng)曲線

        圖1 菌株Y6的生長(zhǎng)曲線Fig.1 Growth curve of strain Y6

        微生物所處的生理狀態(tài)對(duì)誘變效果有很大影響,酵母菌處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期時(shí),其個(gè)體之間的形態(tài)、化學(xué)組成和生理特性等基本一致,數(shù)目以穩(wěn)定的幾何指數(shù)增長(zhǎng)且對(duì)環(huán)境因素的作用十分敏感[19-20]。在此階段進(jìn)行紫外輻照,可以增加基因突變、穩(wěn)定遺傳的幾率[21]。如圖1所示,菌株Y6在前4 h OD600nm值基本保持不變,此時(shí)菌株處于遲緩期;在4~16 h OD600nm值急速上升,菌株處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,在16 h后酵母菌進(jìn)入穩(wěn)定期。因此,選擇在10 h對(duì)菌株Y6進(jìn)行紫外誘變。

        2.2 最佳紫外誘變時(shí)間的確定

        圖2 不同輻照時(shí)間對(duì)菌株Y6致死率的影響Fig.2 Effect of different irradiation time on the lethality rate of strain Y6

        由圖2可知,菌株Y6的致死率隨著紫外燈照射時(shí)間的延長(zhǎng)而急速上升,這表明照射時(shí)間對(duì)酵母菌株的致死率有重要影響。紫外線具有較強(qiáng)的殺菌能力和誘變能力,較高的致死率有利于優(yōu)良菌株的篩選,但如果照射時(shí)間過(guò)長(zhǎng),會(huì)使得一些高活性菌株致死,不利于篩選。通常正向突變一般都出現(xiàn)在70%~80%致死率中[22],因此試驗(yàn)選擇的最佳輻照時(shí)間為100 s,此時(shí)菌株致死率為76.52%,較符合酵母菌正向突變的理想致死率。

        2.3 誘變菌株產(chǎn)酒精產(chǎn)酸能力初篩

        2.3.1 TTC培養(yǎng)基篩選結(jié)果

        將紫外誘變100 s后的20株酵母菌株接種到TTC培養(yǎng)基上,顯色情況如表1所示。

        表1 20株紫外誘變酵母菌株在TTC培養(yǎng)基的篩選結(jié)果Table 1 Screening results of 20 yeast strains by ultraviolet mutation on the TTC media

        TTC作為一種顯色劑,能對(duì)酵母的代謝產(chǎn)物發(fā)生顯色反應(yīng),并且通過(guò)反應(yīng)顏色的深淺來(lái)判斷酵母中呼吸酶活力大小,即酵母產(chǎn)酒精能力的高低,通常情況下,產(chǎn)酒精能力越強(qiáng)的酵母菌株在顯色培養(yǎng)基上顯現(xiàn)的顏色越深。采用劃線法誘變菌株接種到TTC培養(yǎng)基上,結(jié)果如表1所示。由表1可知,菌株Y6-5、Y6-6、Y6-13、Y6-14、Y6-15、Y6-17、Y6-20顯色最為明顯,為深紅色,比出發(fā)菌株Y6的顏色更深,這說(shuō)明酵母菌株經(jīng)過(guò)紫外照射后,產(chǎn)酒精能力確實(shí)增強(qiáng)了。因此,將篩選出的菌株Y6-5、Y6-6、Y6-13、Y6-14、Y6-15、Y6-17、Y6-20進(jìn)行溴甲酚綠培養(yǎng)基篩選試驗(yàn)。

        2.3.2 溴甲酚綠培養(yǎng)基篩選結(jié)果

        將菌液注入牛津杯孔洞中,在溴甲酚綠培養(yǎng)基上培養(yǎng)24 h,結(jié)果如圖3所示。

        圖3 7株突變菌株在溴甲酚綠培養(yǎng)基篩選結(jié)果Fig.3 Screening results of 7 mutant strains on the bromocresol green media

        由圖3可知,菌株Y6-6、Y6-15、Y6-20牛津杯周?chē)狞S色圈明顯小于菌株Y6,這說(shuō)明菌株Y6-6、Y6-15、Y6-20這三株菌的產(chǎn)酸能力不如出發(fā)菌株Y6,而菌株Y6-5、Y6-13、Y6-14這三株菌牛津杯周?chē)狞S色圈明顯大于菌株Y6,表明這三株菌的產(chǎn)酸能力明顯大于菌株Y6。菌株Y6-17牛津杯周?chē)狞S色圈和菌株Y6大致相同,因此也做備選。將挑選菌株Y6-5、Y6-13、Y6-14、Y6-17菌株進(jìn)行后續(xù)的發(fā)酵試驗(yàn)。

        2.3.3 菌種發(fā)酵能力測(cè)試結(jié)果

        將杜氏小管排氣倒置放入接有菌株Y6-5、Y6-13、Y6-14、Y6-17的試管中,產(chǎn)氣結(jié)果如表2所示。

        由表2可知,當(dāng)培養(yǎng)12 h時(shí),菌株Y6-5、Y6-13、Y6-14產(chǎn)氣速度較快,CO2氣體充滿(mǎn)1/3杜氏小管;當(dāng)培養(yǎng)24 h時(shí),菌株Y6-13、Y6-14產(chǎn)生的CO2充滿(mǎn)50%杜氏小管,而菌株Y6-5已經(jīng)將杜氏小管充滿(mǎn);當(dāng)培養(yǎng)36 h時(shí),菌株Y6-5、Y6-13已經(jīng)充滿(mǎn)整個(gè)杜氏小管且在培養(yǎng)48 h時(shí),接有菌株Y6-5試管中的杜氏小管離開(kāi)底部漂浮在試管中,而菌株Y6-14、Y6-17仍不能充滿(mǎn)整個(gè)小管,但四支試管底部均存在大量菌體沉淀,說(shuō)明這四株誘變酵母的起酵能力為菌株Y6-5>菌株Y6-13>菌株Y6-14>菌株Y6-17。

        表2 4株突變酵母菌株杜氏小管試驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of Duchenne tubule tests for 4 mutant strains

        2.4 誘變菌株復(fù)篩結(jié)果

        將5株菌株分別接種到葡萄汁后,其產(chǎn)酒精及產(chǎn)酸情況如表3所示。

        表3 4株突變酵母菌株與出發(fā)菌株Y6產(chǎn)酒精及產(chǎn)酸情況Table 3 Production of alcohol and acid by 4 mutant yeast strains and original strain Y 6

        由表3可知,與出發(fā)菌株Y6相比,誘變菌株的產(chǎn)酸產(chǎn)酒精能力明顯增強(qiáng),與初篩結(jié)果一致。4株誘變菌株產(chǎn)酒精能力依次為菌株Y6-5>菌株Y6-17>菌株Y6-14>菌株Y6-13;4株誘變菌株的產(chǎn)酸情況也存在差別,其能力強(qiáng)弱依次為:菌株Y6-5>菌株Y6-17>菌株Y6-14>菌株Y6-13,但菌株產(chǎn)主要有機(jī)酸種類(lèi)基本一致,為L(zhǎng)-乳酸、酒石酸以及蘋(píng)果酸。由此可以猜測(cè)菌株經(jīng)過(guò)紫外照射后,雖然改變了菌株產(chǎn)酸能力的強(qiáng)弱,但產(chǎn)主要有機(jī)酸種類(lèi)不會(huì)發(fā)生改變。在國(guó)標(biāo)GB 15037—2006《葡萄酒》中限定葡萄酒中揮發(fā)酸≤1.2 g/L,以上菌株均符合要求。因此,將菌株Y6-5確定為目標(biāo)菌株。

        2.5 遺傳穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果

        將突變菌株Y6-5培養(yǎng)5代,把每一代菌液接種到葡萄汁中發(fā)酵10 d,發(fā)酵液的酒精度和總酸分析結(jié)果見(jiàn)圖4。

        由圖4可知,第四代菌株產(chǎn)酒精能力最強(qiáng)為12.33%vol,第二代菌株產(chǎn)酸能力最強(qiáng)為2.15 g/L。雖然5代菌株的產(chǎn)酸和產(chǎn)酒精能力存在差距,但產(chǎn)酸能力都維持在2.1 g/L左右且揮發(fā)酸含量在0.35 g/L左右,產(chǎn)酒精能力都維持在12%vol左右。結(jié)果表明,突變菌株Y6-5的高產(chǎn)酸和酒精性能可以穩(wěn)定地遺傳。

        圖4 突變菌株Y6-5產(chǎn)酒精(A)及產(chǎn)酸(B)能力遺傳穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果Fig.4 Genetic stability tests results of mutant strain Y 6-5 with the capacity of producing alcohol(A)and producing acid(B)

        3 結(jié)論

        本研究以在葡萄表面篩選出的釀酒酵母菌株Y6為出發(fā)菌,在確定了照射功率為30 W和照射距離為30 cm的基礎(chǔ)上,通過(guò)單因素試驗(yàn)確定最佳照射時(shí)間為100 s。利用TTC培養(yǎng)基試驗(yàn)、溴甲酚綠培養(yǎng)基試驗(yàn)以及杜氏小管試驗(yàn)將照射后挑選的20株突變菌株進(jìn)行篩選,最后再經(jīng)葡萄汁發(fā)酵試驗(yàn)獲得一株突變菌株Y6-5,其產(chǎn)酸能力和產(chǎn)酒精能力都明顯高于出發(fā)菌株的Y6。將突變菌株Y6-5培養(yǎng)5代,分別接種到葡萄汁中待發(fā)酵結(jié)束后,該突變菌株產(chǎn)酸2.1 g/L,產(chǎn)酒精12.3%vol,較出發(fā)菌株Y6分別提高了201.41%和28.13%,并且遺傳性能穩(wěn)定,可以用來(lái)提高新疆葡萄酒品質(zhì)。

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