武海峰 呂遠達 鄭海霞 趙明晶 王家慶
摘要:以德國鳶尾(Iris germanica. L)FRANS HALS葉片、球莖作為外植體,利用正交試驗設計研究探討不同激素及不同濃度組合對鳶尾愈傷組織的誘導、不定芽分化以及試管苗生根的影響,為鳶尾快速繁殖、種質(zhì)資源的保存及利用提供最優(yōu)的技術方法。結(jié)果表明,不同外植體滅菌時間也不同,葉片為3%次氯酸鈉3 min,球莖為3%次氯酸鈉5 min;鳶尾組培快繁的最適合外植體為球莖;鳶尾愈傷組織誘導和芽分化的最適培養(yǎng)基配方為MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L,生根培養(yǎng)基為MS+1\2MS+NAA 0.10 mg/L,試管苗移栽基質(zhì)采用泥炭∶珍珠巖=8∶2,成活率達90%以上。
關鍵詞:鳶尾(Iris germanica. L);組織培養(yǎng);外植體;植株再生
中圖分類號:Q949.71+8.28? ? ? ? ?文獻標識碼:A
文章編號:0439-8114(2019)23-0223-04
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2019.23.055? ? ? ? ? ?開放科學(資源服務)標識碼(OSID):
Research on tissue culture and plantlet regeneration of Iris germanica ‘FRANS HALS
WU Hai-feng1,LYV Yuan-da2,ZHENG Hai-xia1,ZHAO Ming-jing1,WANG Jia-qing1
(1.Shenyang Institute of Technology,F(xiàn)ushun 113122,Liaoning,China;
2.Institute of Fruit Tree Research,Guangdong Academy of Agricultural Sciences,Guangzhou 510640,China)
Abstract: Using the leaves and bulbs of Iris germanica 'FRANS HALS' as explants, orthogonal experiment was used to study the effects of different hormones and different concentration combinations on the induction of callus, adventitious bud differentiation and rooting of test-tube seedlings to provide an optimized method for rapid propagation, preservation and utilization of germplasm resources of the iris. The results showed that the sterilization time required for different explants was different. The leaves were 3% sodium hypochlorite for 3 min and the bulbs were 3% sodium hypochlorite for 5 min. The most suitable explants for appendix tissue culture were bulbs. The optimum medium for callus induction and bud differentiation of Iris was MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L; rooting medium was MS+1\2MS+NAA 0.10 mg/L; the substrate was peat∶ perlite=8∶2, and the survival rate was over 90%.
Key words: Iris germanica. L; tissue culture; explant; plantlet regeneration
德國鳶尾(Iris germanica. L)是鳶尾科鳶尾屬多年生草本,單子葉常綠植物。鳶尾葉片碧綠青翠,花形大而奇特[1],宛若翩翩彩蝶,是庭園中的重要花卉之一,也是優(yōu)美的盆花、切花和花壇用花,其花色非常豐富,也可用作地被植物,有些鳶尾種類的鳶尾是優(yōu)良的鮮切花材料。鳶尾花卉品種有幾千種,在北美和西歐鮮切花及優(yōu)良庭園品種的推廣多是通過快速繁殖供應市場[2]。一般情況下,鳶尾主要靠根莖傳統(tǒng)的方法繁殖,但此方法繁殖效率低、品種混雜,遠遠不能滿足市場需求,嚴重影響了經(jīng)濟效益[3,4]。通過植物組織培養(yǎng)不僅可以快速繁殖優(yōu)質(zhì)種苗,還可以很高效地解決傳統(tǒng)繁殖中產(chǎn)生的問題。參考國內(nèi)外有關德國鳶尾組織培養(yǎng)的報道可以發(fā)現(xiàn),德國鳶尾繁殖的研究結(jié)果較少且差異較大,德國鳶尾組織培養(yǎng)存在污染率高、不定芽誘導困難、繁殖效率低等問題[5-7]。國內(nèi)德國鳶尾試管苗未實現(xiàn)商業(yè)化生產(chǎn)[8]。本研究以優(yōu)良耐寒純種德國鳶尾新品種FRANS HALS為試材,探討建立組培快繁體系的適宜條件,為其試管苗的工廠化生產(chǎn)提供理論依據(jù)。
1? 材料與方法
1.1? 材料
德國鳶尾(Iris germanica. L)FRANS HALS由沈陽工學院園藝設施中心研究室提供。
1.2? 方法
1.2.1? 鳶尾外植體的選取? 選擇生長健壯的植株幼嫩葉片以及球莖作為外植體,首先用自來水沖洗干凈,剪去殘葉、根系,于10%洗衣粉溶液中浸泡30 min,并不斷攪拌,再用流水沖洗干凈,在純凈水中沖洗3次,置于超凈工作臺上。在接種前于75%乙醇中浸泡30 s,無菌水沖洗3次,再用0.3%次氯酸鈉溶液浸泡3~5 min后,無菌水沖洗3~5次,用無菌濾紙吸干水分,將外植體切割成1 cm×1 cm小塊作為接種的外植體。每個處理9瓶,每瓶3個外植體,重復3次。培養(yǎng)7 d后調(diào)查污染情況,污染率=(污染外植體數(shù)/接種外植體數(shù))×100%,死亡率=(死亡外植體數(shù)/接種外植體數(shù))×100%。鳶尾球莖初代培養(yǎng)情況見圖1。
1.2.2? 愈傷組織誘導和不定芽分化培養(yǎng)基的篩選? 取備用的外植體,消毒滅菌后,將外植體分別接入事先采用正交試驗設計方案(表1)配制好的初代培養(yǎng)基中,進行誘導愈傷和分化。將其放入人工氣候培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),所設光溫濕條件均為最適宜條件。不同外植體部位(葉片、球莖)分別接種外植體20塊,每瓶2個外植體,重復3次,15 d繼代1次,20 d后統(tǒng)計出愈率。出愈率=(有愈傷組織形成的外植體數(shù)/接種外植體數(shù))×100%。40 d后觀察記錄芽分化情況,統(tǒng)計分化率。分化率=(有芽形成的外植體數(shù)/接種的愈傷組織塊數(shù))×100%。鳶尾球莖愈傷組織與繼代單株不定芽分化情況見圖2。
1.2.3? 生根培養(yǎng)? 生根培養(yǎng)以NAA作為誘導激素,具體設計如表1所示。將2~3 cm長的健壯芽切割下來,使之成為單株無根苗,然后接種至不同生根培養(yǎng)基上,每種培養(yǎng)基接種20個芽,15 d后觀察根生長狀況,統(tǒng)計生根率。生根率=(有根形成的芽數(shù)/接種芽數(shù))×100%。當繼代的組培苗長到3~5 cm時選取健壯的小苗切割接種到生根培養(yǎng)基中,然后放入人工氣候培養(yǎng)箱中培養(yǎng),觀察生長狀況,當根長達到3 cm的時候,可將其進行出瓶移栽。鳶尾試管苗的生根情況見圖3。
1.2.4? 組培苗的移栽與馴化? 當根長達到3 cm以上,芽長3~4 cm時,采用閉口全光照煉苗。1周后,打開瓶蓋,進行開口煉苗,并按時旋轉(zhuǎn)封口膜,2 d后,將封口膜取下并向三角瓶內(nèi)注入少量水,放于通風處。3 d后,取出組培苗移植到不同配比的基質(zhì)中進行煉苗,基質(zhì)體積比分別是泥炭∶珍珠巖=8∶2、黑土∶珍珠巖=7∶3、田園土∶黑土=7∶3。塑料薄膜覆蓋保濕,并用遮陽網(wǎng)遮光,15 d后調(diào)查移栽成活率。成活率=(成活苗數(shù)/移栽總苗數(shù))×100%。
1.2.5? 培養(yǎng)基的配制及培養(yǎng)條件? 以MS培養(yǎng)基為基礎培養(yǎng)基,每升加瓊脂7.5 g,蔗糖30 g,加入不同梯度激素,pH調(diào)至5.8,分裝于100 mL玻璃三角瓶中,加膜扎緊封口,然后放入高壓滅菌鍋中,121 ℃下滅菌20 min。放在溫度為(26±1) ℃,光照強度為2 000 lx的環(huán)境條件下培養(yǎng),光照12 h/d。
2? 結(jié)果與分析
2.1? 不同3%次氯酸鈉消毒時間對外植體接種的影響
由表2可知,隨3%次氯酸鈉處理時間的增加,外植體污染率顯著降低,處理5 min和處理8 min的污染率均較低,分別為18.5%和14.8%,處理3 min的死亡率則較低,為7.4%,而處理10 min時,對外植體損傷較大,死亡率為29.6%,顯著高于處理3 min,因此,采用3%次氯酸鈉消毒葉片的最佳處理時間為3 min。
由于鳶尾球莖在地下取出,雜菌比較多,因此3%次氯酸鈉處理時間應比葉片延長。由表3可知,處理5 min和處理8 min的污染率均較低,分別為29.6%和22.2%;處理10 min時對外植體損傷較大,死亡率為25.9%,顯著高于處理5 min,而處理5 min的死亡率則較比處理8 min低,為11.1%。因此,采用3%次氯酸鈉消毒球莖的最佳處理時間為5 min。
2.2? 不同培養(yǎng)基對外植體誘導愈傷組織的影響
按照正交設計進行8組試驗,發(fā)現(xiàn)2種激素對于鳶尾的外植體誘導作用差異很大。從表4分析結(jié)果可知,在初代培養(yǎng)過程中,葉片、球莖兩種外植體均能誘導產(chǎn)生愈傷組織,并且兩種外植體愈傷組織誘導率都很高,但球莖高于葉片;從正交試驗的結(jié)果分析中可以得出最優(yōu)外植體為球莖。正交表中最好的方案為6號試驗,也就是A2B1C2組合。鳶尾快速增殖的最佳培養(yǎng)基配方為MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L。
2.3? 生根培養(yǎng)
當增殖苗長至3 cm左右時,在無菌條件下,切下帶少量愈傷組織的單芽,接種于預備好的生根培養(yǎng)基中,觀察其生長情況。10 d左右開始生根,20 d后根長1~2 cm,4號培養(yǎng)基上根系生長速度較快。調(diào)查各培養(yǎng)基中根系生長情況,各培養(yǎng)基均有生根,具體情況見表5。因此,確定最佳生根培養(yǎng)基為4號培養(yǎng)基,即MS+1\2MS+NAA 0.10 mg/L。
2.4? 煉苗移栽
待根生長到3~5 cm時,將小苗進行煉苗、移栽、定植。移栽前首先要進行透氣訓練,然后將組培苗根系所黏附的培養(yǎng)基沖洗干凈,經(jīng)過馴化的組培苗,葉片已形成角質(zhì)層,可以有效地防止體內(nèi)水分的蒸發(fā),抵抗外界雜菌的侵染。這時可以將其移栽到常用的基質(zhì)上,進行常規(guī)管理。移栽結(jié)果表明,試管苗在珍珠巖中移栽成活率最高,達90%。
3? 討論
德國鳶尾組織培養(yǎng)的外植體常采用莖尖或花的器官[9],不僅存活率低,而且對母株的傷害比較大,因此不適宜作離體培養(yǎng)的外植體[10]。本試驗利用葉片、球莖為外植體進行德國鳶尾組織培養(yǎng),與莖尖為外植體相比,球莖作初代培養(yǎng)的外植體具有取材方便、材料豐富、消毒方便、不損傷母本植株、能保存母本品種優(yōu)良性狀等優(yōu)點。
激素對細胞的分化起著重要的調(diào)節(jié)作用,生長素和細胞分裂素的比例控制著細胞的分化和器官的形成,高質(zhì)量濃度細胞分裂素與低質(zhì)量濃度的生長素有利于芽的形成;反之則促進生根。6-BA是植物組織培養(yǎng)常用的細胞分裂素[11],NAA是常用的生長素,本研究在MS中加入NAA和6-BA濃度配比的培養(yǎng)基,外植體均能發(fā)生愈傷組織。愈傷組織誘導和芽分化均在同一種培養(yǎng)基上進行。鳶尾葉片與球莖外植體分化芽的能力取決于培養(yǎng)基中生長素和細胞分裂素的濃度比例。本試驗中,愈傷組織的分化率在兩種激素的不同濃度組合間存在很大的差異。
在煉苗試驗過程中,試管苗的成活率受諸多因素的影響,鳶尾移栽成活率在很大程度上取決于栽培基質(zhì),3種不同栽培基質(zhì)對植株成活率影響不同。應選擇易取得、好用、通風排水佳、不易酸化腐爛和易植且便宜的栽培基質(zhì)。
4? 結(jié)論
本試驗以德國鳶尾葉片、球莖為研究對象,研究不同激素及其不同濃度組合對鳶尾葉片、球莖愈傷組織的誘導、不定芽分化及其生根的影響。試驗結(jié)果表明,外植體選擇過程中,以球莖作為外植體繁殖系數(shù)最大,成活率最高。鳶尾快速增殖的最佳培養(yǎng)基配方為MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L,生根培養(yǎng)基為MS+1\2MS+NAA 0.10 mg/L,試管苗煉苗基質(zhì)為泥炭∶珍珠巖=8∶2,成活率達90%以上。該研究結(jié)果為鳶尾快速繁殖試管苗的有效途徑,可為鳶尾種苗的工廠化生產(chǎn)提供一定的依據(jù)。
參考文獻:
[1] 黃蘇珍,謝明云,佟海英,等.荷蘭鳶尾(Iris xiphium L.var. hybridum)的組織培養(yǎng)[J].植物資源與環(huán)境,1999,8(3):48-52.
[2] 黃蘇珍,郭維明.中國鳶尾屬觀賞植物資源的研究與利用[J].中國野生植物資源研究,2003,22(1):4-7.
[3] BRIAN M. The Iris[M].London:B T Batsford Ltd,1981.
[4] 黃? 潔,馬登萍.德國鳶尾的組織培養(yǎng)試驗[J].青海農(nóng)林科技,2008(1):25-26.
[5] 黃蘇珍,韓玉林,謝明云,等.德國鳶尾的組織培養(yǎng)[J].江蘇林業(yè)科技,2000,27(6):37-44.
[6] WANG Y X,JEKNI?Z,ERNST R C,et al. Improved plant regeneration from suspension cultured cells of Iris germanica L.[J].Hort science,1999,34(7):1271-1276.
[7] 黃蘇珍,韓玉林,謝明云,等.雜種鳶尾的組織培養(yǎng)與植株再生[J].植物生理學通訊,2003,39(6):638.
[8] 郭晉燕,張金政,孫國峰,等.根莖鳶尾園藝學研究進展[J].園藝學報,2006,33(5):1149-1156.
[9] 陳? 晨,畢曉穎,盧明艷.德國鳶尾組織培養(yǎng)快速繁殖技術研究[J].沈陽農(nóng)業(yè)大學學報,2010,41(1):27-32.
[10] BERGER F,WAITES W M,LEIFERT C. An improved surface disinfection method for shoot explants from Iris rhizomesinfected with bacterial soft rot(Erwinia carotovora subsp. carotovora)[J].The journal of horticultural science & biotechnology,1994,69(3):491-494.
[11] 宗憲春,許向陽,張? 賀,等.潘那利番茄葉片組織培養(yǎng)及植株再生研究[J].東北農(nóng)業(yè)大學學報,2011,42(4):62-65.