姚麗萍, 陳紫薇, 張曉梅, 許正宏*, 陸茂林
(1.江南大學(xué) 藥學(xué)院,江蘇 無(wú)錫 214122;2.江蘇省微生物研究所有限公司,江蘇 無(wú)錫 214063)
L-絲氨酸 (L-serine)是人類非必需氨基酸之一,主要應(yīng)用于醫(yī)藥、化工及食品等多種相關(guān)領(lǐng)域。此外,L-絲氨酸作為生物體內(nèi)重要的一碳單位,是嘧啶、嘌呤等有機(jī)物的主要供體[1-2]。L-絲氨酸具有廣泛的市場(chǎng)前景及開(kāi)發(fā)潛力[3]。
目前,L-絲氨酸生產(chǎn)方法主要有化學(xué)合成法、蛋白水解法及微生物發(fā)酵法等[4-8]。其中,微生物發(fā)酵法與化學(xué)合成法及蛋白水解法相比,具有綠色環(huán)保、高效、產(chǎn)物易分離提取等優(yōu)點(diǎn)[3]。近年來(lái),微生物直接發(fā)酵法生產(chǎn)L-絲氨酸的研究主要集中在大腸桿 菌 (Escherichia coli) 及 谷 氨 酸 棒 桿 菌(Corynebacterium glutamicum)上[9-12]。 谷氨酸棒桿菌SYPS-062 33a ΔSSA-PS是本實(shí)驗(yàn)室經(jīng)代謝改造構(gòu)建的能發(fā)酵蔗糖高產(chǎn)L-絲氨酸的菌株,其利用全合成培養(yǎng)基搖瓶發(fā)酵120 h,L-絲氨酸產(chǎn)量達(dá)25.31 g/L。利用廉價(jià)原料發(fā)酵一直是生物工程領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)[13-14],糖蜜作為制糖工業(yè)的副產(chǎn)物,含有大量可發(fā)酵糖類,同時(shí)含有大量的微生物生長(zhǎng)所需的微量營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),且價(jià)格低廉,可作為微生物發(fā)酵的替代原料。Wang等[15]利用Bacillus sp.XZL9發(fā)酵糖蜜可以獲得74.7 g/L的乳酸;Kotzamanidis等[16]以糖蜜為原料,利用Lactobacillus delbrueckii NCIMB 8130發(fā)酵生產(chǎn)乳酸,產(chǎn)量達(dá)88.0 g/L;Xu等[17]以糖蜜為原料,利用Corynebacterium glutamicum發(fā)酵產(chǎn)L-賴氨酸,產(chǎn)量達(dá)34.5 mmol/L。但在將糖蜜作為微生物發(fā)酵原料時(shí),需進(jìn)行預(yù)處理,以去除其中可能影響微生物發(fā)酵的膠體、鈣質(zhì)、灰分等[18-19]。
本文考察了不同的糖蜜預(yù)處理方法、添加量對(duì)谷氨酸棒桿菌SYPS-062 33a ΔSSA-PS生長(zhǎng)及產(chǎn)L-絲氨酸的影響,并初步探討了糖蜜對(duì)絲氨酸合成相關(guān)途徑中關(guān)鍵酶基因轉(zhuǎn)錄水平的影響,為該菌株高效發(fā)酵生產(chǎn)L-絲氨酸奠定基礎(chǔ)。
甘蔗糖蜜:由山東正信集團(tuán)提供,總糖量48.20%。
重組谷氨酸棒桿菌(Corynbacterium glutamicum SYPS-062 33aΔSSA-PS)為江南大學(xué)藥學(xué)院制藥工程研究室構(gòu)建并保藏。
1.1.2 培養(yǎng)基 種子培養(yǎng)基(g/L):
A:無(wú)水葡萄糖 20,115℃,7 min進(jìn)行滅菌。
B:BHI 37, (NH4)2SO410,MgSO4·7H2O 0.5,K2HPO40.2,NaH2PO40.3,自然 pH,115 ℃,7 min 進(jìn)行滅菌。
A+B混勻使用。
發(fā)酵全合成培養(yǎng)基(g/L):蔗糖 100,(NH4)2SO430,KH2PO43,MgSO4·7H2O 0.5,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.02,MnSO4·H2O 0.02,原兒茶酸 0.03,生物素 0.5×10-3,硫酸硫胺素 4.5×10-3。滅菌條件:115 ℃,7 min。添加糖蜜時(shí),通過(guò)換算隨后替代蔗糖加入或者添加一定量的糖蜜,定容,分裝,滅菌。
1.2.1 EDTA法 糖蜜預(yù)先加水稀釋成質(zhì)量比為1∶1的混合溶液,用1 mol/L的HCl調(diào)pH至7.0,于沸水中加熱30 min,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)100×10-6的EDTA以加速重金屬物質(zhì)的沉積。將混合物于室溫下靜置24 h,然后12 000 r/min離心20 min,取上清進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 硫酸法 糖蜜預(yù)先加水稀釋成質(zhì)量比為1∶1的混合溶液,用1 mol/L的H2SO4調(diào)pH至3.0。將混合物于室溫下靜置24 h,然后12 000 r/min離心20 min,取上清。將上清用10 mol/L的NaOH調(diào)pH至5.5,取上清進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
大部分互聯(lián)網(wǎng)汽車金融公司規(guī)模較小,業(yè)務(wù)范圍難以全面鋪開(kāi),所以更多地是針對(duì)汽車金融的細(xì)分市場(chǎng),如二手車買(mǎi)賣中涉及的貸款。專注細(xì)分市場(chǎng)可以有效地滿足客戶的不同需求,提高客戶體驗(yàn)感,有助于深層次地挖掘客戶。
1.2.3 磷酸法 糖蜜預(yù)先加水稀釋成質(zhì)量比為1∶1的混合溶液,用1 mol/L的H2PO4調(diào)pH至3.0。于沸水中加熱30 min,將混合物于室溫下靜置24 h,然后12 000 r/min離心20 min,取上清。將上清用10 mol/L 的 Ca(OH)2調(diào)pH 至 5.5,12 000 r/min 離心30 min,取上清進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.4 活性炭法 糖蜜預(yù)先加水稀釋成質(zhì)量比為1∶1的混合溶液,于60℃下靜置24 h,經(jīng)活性炭吸附處理后,12 000 r/min離心30 min,上清進(jìn)行抽濾,除雜,濾液進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.5 澄清法 糖蜜預(yù)先加水稀釋成質(zhì)量比為1∶1的混合溶液,利用聚丙烯酰胺(PAM)作為糖蜜預(yù)處理的澄清劑,于100 mL的糖蜜溶液中分別加入5 mL的21.9 g/L乙酸鋅溶液和10.6%的亞鐵氰化鉀,于室溫下靜置過(guò)夜,促進(jìn)澄清劑沉積。混合物于12 000 r/min離心20 min,取上清進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.6 陽(yáng)離子交換樹(shù)脂法 糖蜜預(yù)先加水稀釋成質(zhì)量比為1∶1的混合溶液,100 mL糖蜜溶液中加入20 g陽(yáng)離子交換樹(shù)脂,混合體系于恒溫振蕩器中,250 r/min,30 ℃振蕩 6 h,12 000 r/min離心 20 min,上清用10 mol/L NaOH調(diào)pH至5.5,取上清進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.3.1 發(fā)酵前處理 分別測(cè)定原糖蜜及不同預(yù)處理后的糖蜜的總糖含量,調(diào)總糖含量至10%。
1.3.2 谷氨酸棒桿菌活化 甘油管接種劃線于固體種子培養(yǎng)基平板,30℃培養(yǎng)3~4 d。
1.3.3 種子培養(yǎng) 接種一環(huán)平板種子于液體種子培養(yǎng)基,30℃,120 r/min培養(yǎng) 28 h,使其 OD562=25。
1.3.4 發(fā)酵培養(yǎng) 將種子液接入發(fā)酵培養(yǎng)基中,使其初始 OD562=1,30 ℃,120 r/min培養(yǎng) 120 h,每 12 h取一次樣,進(jìn)行數(shù)據(jù)測(cè)定。
RNA提取采用RNA抽提試劑盒 (上海生工生物有限公司);逆轉(zhuǎn)錄和qRT-PCR分別采用RayScriptcDNA SynthesisKit和 PowerqPCR PreMix試劑盒(上海捷瑞生物公司)。
選擇16s(RNA)作為內(nèi)參基因,并設(shè)計(jì)相應(yīng)的擴(kuò)增引物。根據(jù)C.glutamicum ATCC 13032的基因序列,使用DNAMEN軟件設(shè)計(jì)EMP途徑相關(guān)基因的引物,如表1所示。
生物量測(cè)定:取100 μL發(fā)酵液用1 mol/L HCl稀釋到適宜質(zhì)量濃度,利用分光光度計(jì)于波長(zhǎng)562 nm處測(cè)定。
氨基酸含量和糖濃度的測(cè)定:將不同時(shí)間的發(fā)酵液于4℃、14 000 r/min離心10 min,上清液用于氨基酸含量和糖濃度的測(cè)定。發(fā)酵液中蔗糖和果糖及氨基酸含量均采用HPLC測(cè)定[20-21]。糖蜜中總糖和葡萄糖含量采用菲林試劑法測(cè)定[19]。
表1 相關(guān)基因的引物Table 1 Primers list
糖蜜作為制糖工業(yè)的副產(chǎn)物,可作為微生物發(fā)酵的替代原料[19]。作為微生物發(fā)酵原料時(shí),糖蜜需進(jìn)行預(yù)處理,去除其中的膠體、鈣質(zhì)、灰分等。不同的預(yù)處理方法使得糖蜜組分及含量具有一定的差異。采用不同方法對(duì)糖蜜進(jìn)行預(yù)處理,預(yù)處理前后糖蜜中的總糖和葡萄糖含量如表2所示。糖蜜采用硫酸預(yù)處理后,促使多糖水解形成單糖形式,菌體可直接利用葡萄糖含量比預(yù)處理前增加了4.51倍。采用活性炭法、澄清法和陽(yáng)離子交換樹(shù)脂法對(duì)糖蜜進(jìn)行預(yù)處理后,總糖及葡萄糖含量與未處理時(shí)變化不大。采用磷酸預(yù)處理糖蜜可去除大量的灰分和膠體成分,去除雜質(zhì)較徹底,但同時(shí)也損耗了大量的糖類物質(zhì),與余煒等[18]研究結(jié)果一致。
搖瓶發(fā)酵考察糖蜜對(duì)重組菌生長(zhǎng)及生產(chǎn)L-絲氨酸的影響,以總糖為10%的糖蜜代替全合成發(fā)酵培養(yǎng)基中的蔗糖為碳源進(jìn)行發(fā)酵性能測(cè)定,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表3所示。采用硫酸法、EDTA法和澄清法預(yù)處理的糖蜜對(duì)重組菌的菌體生長(zhǎng)較為有利,而磷酸法和樹(shù)脂法處理的糖蜜則對(duì)其生長(zhǎng)不利。但所有預(yù)處理后的糖蜜作為唯一碳源時(shí)均不利于該重組菌積累L-絲氨酸。總體而言,硫酸法處理的糖蜜對(duì)重組菌生長(zhǎng)和產(chǎn)酸較好。以糖蜜為原料時(shí),谷氨酸棒桿菌發(fā)酵產(chǎn)賴氨酸也有相似的結(jié)果[19]。
表2 不同方法處理后糖蜜中糖類含量變化Table 2 Concentration of sugar by different methods of molasses
表3 不同預(yù)處理方法對(duì)重組菌株生長(zhǎng)及L-絲氨酸產(chǎn)量的影響Table 3 Effects of different methods of molasses on cell growth and L-serine production
進(jìn)一步考察了硫酸法預(yù)處理的糖蜜的不同添加量對(duì)重組菌生長(zhǎng)及L-絲氨酸生產(chǎn)的影響,結(jié)果如表4所示。蔗糖中添加少量糖蜜有利于菌株生長(zhǎng)和產(chǎn)物積累,當(dāng)培養(yǎng)基中糖蜜的糖量為1%,蔗糖量為9%時(shí)為最好。這可能是由于糖蜜中含有的多種營(yíng)養(yǎng)因子(生物素、維生素等可在一定的質(zhì)量分?jǐn)?shù)范圍內(nèi)促進(jìn)微生物生長(zhǎng)和產(chǎn)物合成。
進(jìn)一步考察了低質(zhì)量分?jǐn)?shù)糖蜜對(duì)重組菌生長(zhǎng)和L-絲氨酸生產(chǎn)的影響,結(jié)果如圖1所示。當(dāng)全合成培養(yǎng)基中添加糖蜜總糖量為0.24%的硫酸預(yù)處理糖蜜時(shí),重組菌生物量最高,OD562可達(dá)76.37,且L-絲氨酸產(chǎn)量最高,可達(dá)32.76 g/L,糖酸轉(zhuǎn)化率為0.33 g/g(表5),比對(duì)照組提高了29.44%。上述結(jié)果充分說(shuō)明了糖蜜在該重組菌生長(zhǎng)和產(chǎn)物合成中更多發(fā)揮了促進(jìn)劑的作用,而非作為碳源。
表4 糖蜜和蔗糖為混合碳源對(duì)菌株生長(zhǎng)和L-絲氨酸產(chǎn)量的影響Table 4 Effects of the carbon of molasses and sucrose on cell growth and L-serine production
圖1 低質(zhì)量濃度糖蜜添加對(duì)菌體生長(zhǎng)和L-絲氨酸產(chǎn)量的影響Fig.1 Effects of different molasses addition on cell growth and L-serine production
表5 糖蜜添加量對(duì)菌體糖酸轉(zhuǎn)化率和生產(chǎn)強(qiáng)度的影響Table 5 Effects ofdifferentmolassesaddition on productivity and yield of L-serine
在全合成培養(yǎng)基和添加總糖為0.24%的硫酸預(yù)處理糖蜜后的發(fā)酵過(guò)程結(jié)果表明(圖2),添加少量的糖蜜對(duì)菌株生長(zhǎng)的遲滯期無(wú)明顯影響,發(fā)酵至84~120 h時(shí),菌株的生長(zhǎng)速度較對(duì)照組好,發(fā)酵至120 h時(shí),實(shí)驗(yàn)組OD562可達(dá)76.37,較對(duì)照組提高了23.82%;L-絲氨酸產(chǎn)量可達(dá)32.76 g/L,較對(duì)照組(25.31 g/L)提高了 29.44%。
圖2 重組菌在不同發(fā)酵培養(yǎng)基中的發(fā)酵過(guò)程Fig.2 Fermentation process of different mediums by the recombinant strain
谷氨酸棒桿菌以蔗糖為碳源,經(jīng)糖酵解(EMP)途徑,以3-磷酸甘油酸為前體合成L-絲氨酸。EMP途徑與菌體生長(zhǎng)有密切關(guān)系,實(shí)驗(yàn)表明微量糖蜜的添加對(duì)菌體生長(zhǎng)和積累L-絲氨酸均有促進(jìn)作用,為此考察了添加總糖量為0.24%的糖蜜 (不同預(yù)處理方法)對(duì)EMP途徑相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄水平的影響,結(jié)果如圖3所示。添加少量添加糖蜜可促進(jìn)EMP途徑中相關(guān)酶基因的轉(zhuǎn)錄水平,這可能是促進(jìn)產(chǎn)物積累的主要原因之一。在實(shí)驗(yàn)組(糖蜜處理方法:未處理、活性炭法、硫酸法)中,甘油酸激酶的編碼基因pgk的轉(zhuǎn)錄水平提高最顯著,分別提高了2.68、7.11和9.83倍。在實(shí)驗(yàn)組(糖蜜處理方法:澄清法、磷酸法、陽(yáng)離子交換樹(shù)脂法)中,甘油醛-3-磷酸脫氫酶的編碼基因gap的轉(zhuǎn)錄水平提高最顯著,分別提高了5.67、7.05和3.34倍。EMP途徑的上調(diào)可能是由于糖蜜中含有大量的有機(jī)酸(檸檬酸、蘋(píng)果酸和琥珀酸等)、吡啶、金屬離子(Ca2+、K+、Mg2+、Zn2+、Fe3+、Mn2+)[22]。吡啶衍生物是維生素、酶的重要組成部分,金屬離子可參與酶促反應(yīng),提高酶活,增加蛋白表達(dá),蛋白質(zhì)表達(dá)量與基因轉(zhuǎn)錄水平在全局層面上有較高的相關(guān)性[23-24]。添加糖蜜提高EMP途徑相關(guān)基
圖3 qRT-PCR分析糖蜜對(duì)EMP途徑相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄的影響Fig.3 Analysis of the effect of molasses on transcription of genes encoding in EMP by qRT-PCR
本文考察了糖蜜預(yù)處理方法及糖蜜添加量對(duì)C.glutamicum SYPS-062 33a ΔSSA-PS 發(fā)酵產(chǎn) L-絲氨酸過(guò)程的影響。以質(zhì)量分?jǐn)?shù)為9%蔗糖和1%糖蜜總糖為混合碳源有利于菌體生長(zhǎng)及產(chǎn)L-絲氨酸。在以10%蔗糖作為碳源時(shí),添加總糖為0.24%的硫酸法預(yù)處理糖蜜時(shí),對(duì)重組菌株的生長(zhǎng)及產(chǎn)L-絲氨酸最有利。同時(shí),低質(zhì)量分?jǐn)?shù)糖蜜的添加提高了EMP途徑關(guān)鍵基因(pgi、pfkA、glpX、gap 及 pgk)的轉(zhuǎn)錄水平。在優(yōu)化的發(fā)酵條件下,發(fā)酵120 h,菌體生物量OD562、L-絲氨酸產(chǎn)量和糖酸轉(zhuǎn)化率分別為76.37、32.76 g/L和0.33 g/g蔗糖,較對(duì)照組分別提高了23.82%、29.44%和29.44%。