林艷云,陳憶婷,黃曉明,林峻*
(1.福州大學 至誠學院,福建福州 350001;2.福州大學 生物科學與工程學院,福建福州 350108)
真菌的種類繁多,既有對人類生產(chǎn)生活有益的真菌,同時也有對人類健康有害的病原真菌[1]。真菌與其他微生物共同作用,對生態(tài)環(huán)境具有重要的作用,能夠保持生態(tài)系統(tǒng)中有序的物質循環(huán)和能量流動[2]。真菌可以作為生態(tài)系統(tǒng)的分解者[3],具有生物防治病原體[4]、富集重金屬[5-6]、降解農(nóng)藥[7-8]等多種作用?,F(xiàn)今人們進一步加大對真菌資源的開發(fā)利用,例如利用黑曲霉代謝系統(tǒng)及產(chǎn)酶系統(tǒng)來生產(chǎn)檸檬酸[9]、木聚糖酶[10]、淀粉酶[11]等;米曲霉可作為發(fā)酵調味品的生產(chǎn)菌株[12],普遍用于蛋白酶和淀粉水解酶的生產(chǎn),同時它被美國食品與藥品管理局認定為安全微生物菌種[13];利用里氏木霉的代謝特點可將木質纖維轉化為生物質原料[14],生產(chǎn)可再生能源,不僅能實現(xiàn)對廢物的再利用,也能提供新型能源。對這些重要的生產(chǎn)用真菌的生產(chǎn)控制,科研人員不僅從代謝調控和發(fā)酵條件等方面進行優(yōu)化,也從基因工程的角度對其進行改造,如構建食品級木聚糖酶黑曲霉工程菌[15]。在對真菌進行基因改造時,難以避免需要對真菌基因組進行提取,而傳統(tǒng)的真菌基因組提取方法較為繁瑣,因此本文以黑曲霉513.88(Aspergillus niger 513.88),米曲霉 2397(Aspergillus oryzae 2397),尼崎青霉(Penicillium amagasakiense),里氏木霉(Trichoderma reesei)作為研究對象,研究并探討了一種能夠簡便快速提取真菌基因組,并且對其進行直接PCR擴增的方法,這能夠為真菌基因組的快速提取與擴增提供另一種思路。
黑曲霉513.88、米曲霉2397、尼崎青霉、里氏木霉,均由福州大學應用基因組學研究所提供。
1.2.1 主要儀器
臺式高速離心機(Eppendorf 5430),梯度PCR儀(Biosafer 9700),電熱恒溫水浴鍋(HWS12型),超微量核酸光度計(Nanodrop 2000),生化培養(yǎng)箱(BPC-70F),全自動凝膠成像分析儀(JS-680D)。
1.2.2 主要試劑
康為世紀2×Taq PCR mix,Takara 250 bp DNA Ladder Marker,λ-Hind Ⅲ digest DNA Marker,液氮,生工生物工程(上海)有限公司真菌基因組DNA快速提取試劑盒,A公司產(chǎn)細胞裂解液,B公司產(chǎn)細胞裂解液,實驗室自制細胞裂解液。
1.3.1 菌種培養(yǎng)
將菌種接種于PDA培養(yǎng)基中,30 ℃恒溫培養(yǎng),直至單菌落形成。
1.3.2 液氮研磨法提取基因組
收集瓊脂平板上的真菌菌體,在研缽中用液氮快速研磨,形成粉末,然后使用真菌基因組DNA快速提取試劑盒提取真菌DNA,對提取得到的產(chǎn)物做瓊脂糖凝膠電泳,進行進一步驗證。
1.3.3 裂解液提取基因組
用無菌槍頭挑取菌落,分別加入到50 μL A公司細胞裂解液、B公司細胞裂解液、實驗室自制裂解液中,進行裂解,其裂解條件為:A公司細胞裂解液(80 ℃,5 min),B公司細胞裂解液(80 ℃,15 min),實驗室自制裂解液(85 ℃,15 min)。
1.3.4 PCR引物
用于擴增在真菌中保守的18s rRNA基因的PCR引物設計如下:
18sF:5'-GAGCG GATAA CAATT TCACA CAGG-3'
18sR:5'-CGCCA GGGTT TTCCC AGTCA CGAC-3'
1.3.5 PCR
將裂解后的產(chǎn)物進行直接PCR,反應體系為:3 μL裂解產(chǎn)物,上游引物1μL,下游引物1 μL,引物濃度為 10 μmol/L,2×Taq PCR mix 25 μL,無菌水20 μL,PCR擴增循環(huán)程序為:預變性94 ℃,10 min;變性 94 ℃ 30 s,退火 53 ℃ 30 s,延伸 72 ℃90 s,35個循環(huán);72 ℃終延伸10 min。PCR結束后,取PCR反應液做瓊脂糖凝膠電泳,以便進一步驗證。
1.3.6 PCR結果測序及產(chǎn)物序列比對
將PCR產(chǎn)物送交安徽通用生物系統(tǒng)有限公司進行Sanger測序,并使用Blast生物信息學分析工具,對測序得到的DNA序列進行分析。
經(jīng)液氮研磨,真菌基因組DNA快速提取試劑盒提取得到的產(chǎn)物,其瓊脂糖凝膠電泳結果如圖1、圖2所示。由圖可知,該試劑盒能夠成功提取到4種真菌的基因組DNA,但里氏木霉和米曲霉2397有拖帶現(xiàn)象,提示所提取的基因組DNA有部分降解。
圖1 黑曲霉513.88基因組DNA抽提結果
圖2 里氏木霉、尼崎青霉、米曲霉2397基因組DNA抽提結果
液氮研磨產(chǎn)物經(jīng)試劑盒提取后進行PCR擴增,結果如圖3所示。4種真菌均有目的條帶,里氏木霉、尼崎青霉、黑曲霉513.88的擴增條帶明亮,試劑盒抽提效果好,但是米曲霉2397 PCR擴增條帶較暗,可見該試劑盒對米曲霉2397基因組提取效果不佳。
圖3 液氮研磨產(chǎn)物PCR擴增結果
對黑曲霉513.88進行裂解液處理并直接PCR后,產(chǎn)物電泳結果如圖4所示。目的條帶為1 634 bp,1、2、3泳道在1 500~2 250 bp有清晰條帶,可見使用3種裂解液都能提取到黑曲霉513.88的基因組DNA并成功進行后續(xù)的PCR擴增。
圖4 黑曲霉513.88基因組直接PCR擴增結果
經(jīng)過Sanger法測序,測序得到單峰峰圖,對該測序結果在NCBI網(wǎng)站進行Blast比對,與Aspergillus niger的基因組序列相似度為99%,PCR擴增產(chǎn)物可以確定為黑曲霉的基因組DNA。
PCR電泳產(chǎn)物檢測結果如圖5所示。電泳結果沒有目的條帶,可見此法并不適用于米曲霉的基因組提取與擴增。
圖5 米曲霉2397基因組直接PCR擴增結果
尼崎青霉PCR產(chǎn)物電泳檢測結果如圖6所示。電泳結果沒有條帶,可見此法并不適用于尼崎青霉的基因組提取與擴增。
圖6 尼崎青霉基因組直接PCR擴增結果
分別采用3種裂解液裂解里氏木霉,其基因組PCR擴增結果如圖7所示。第1、2、3泳道在1 500~2 250 bp有條帶。但使用實驗室自制裂解液提取的基因組擴增產(chǎn)物條帶明亮,A公司細胞裂解液裂解效果次之,B公司細胞裂解液基因組擴增產(chǎn)物電泳條帶最暗。
圖7 里氏木霉基因組直接PCR擴增結果
里氏木霉PCR產(chǎn)物經(jīng)過Sanger法測序,測序得到單峰峰圖,在NCBI網(wǎng)站上進行測序結果比對,該菌的基因組序列與Trichoderma reesei的基因組序列相似度為99%,PCR擴增產(chǎn)物可以確定為黑曲霉基因組DNA。
PCR擴增能否成功,其重點在于提取的真菌基因組DNA質量的高低。真菌的細胞壁富含多糖等特殊成分,抗逆性強,而要提取到高質量的真菌基因組DNA,關鍵問題就在于破壁的成功。實驗室常用的破壁方法包括液氮研磨法、尿素裂解法、凍融法、打擊震蕩法、氯化芐法和酶消化法等。對于某些真菌,因其細胞壁較為“柔軟”,采用酶消化法就可以實現(xiàn)對真菌的破壁處理,并提取到基因組DNA。但是對于絕大多數(shù)的真菌,由于其細胞壁的結構與成分的特殊性,具有較強的耐受性,為了達到良好的破壁效果,就需要應用其他物理方法如超聲波、高壓等共同作用。本方法采用市售常見細胞裂解液對真菌細胞進行直接裂解,結果顯示黑曲霉513.88和里氏木霉這兩種重要的真菌可以在細胞裂解液處理后實現(xiàn)直接PCR擴增,但是對米曲霉2397和尼崎青霉沒有效果。多糖是構成真菌細胞壁的主要成分,對于不同類群的真菌,細胞壁中多糖的類型也會有所不同[16],可能是由于米曲霉2397和尼崎青霉細胞壁多糖對裂解液成分不敏感,造成破壁困難。同時對于真菌細胞壁來講,細胞壁各成分所占比例與細胞生活周期有關,而細胞壁成分比例的高低又會影響到破壁的難易,當細胞尚處于幼嫩階段,較容易破壁,反之較難破壁[17],從而導致后續(xù)PCR擴增失敗。本研究結果表明,市售的常見細胞裂解液,可以對部分真菌物種實現(xiàn)直接裂解和PCR擴增,若善加利用,可以減少真菌破壁的繁瑣操作,從而簡化對真菌進行基因工程改造的步驟,進一步提高改造的效率。