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        殼聚糖酶解液的納濾分離技術(shù)研究

        2019-01-03 06:15:28于沛沛夏文水仲偉偉劉曉麗
        食品與機(jī)械 2018年11期
        關(guān)鍵詞:納濾聚合度解液

        于沛沛 夏文水 仲偉偉 劉曉麗 王 斌

        (1. 江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇 無錫 214122; 2. 江蘇省食品安全與質(zhì)量控制協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇 無錫 214122)

        殼寡糖是由乙酰氨基葡萄糖苷(GlcNAc)和/或氨基葡萄糖苷(GlcN)通過β-1,4糖苷鍵連接而成的聚合度為2~20的寡糖。殼寡糖具有多種優(yōu)越的生理功能和生物活性[1],尤其是聚合度為3~6的殼寡糖,因具有調(diào)節(jié)免疫[2]、抗衰老[3]、抗疲勞[4]、清除自由基[5]等功能而引起了廣泛的關(guān)注。

        由于殼寡糖分子中含有較多的氨基和羥基,其分子間或分子內(nèi)作用力較強(qiáng),分離純化相對困難。目前,殼寡糖的分離純化方法主要有:膜分離法、凝膠滲透色譜法、薄層色譜法和離子交換色譜法等。凝膠色譜法是根據(jù)被分離組分的分子尺寸大小進(jìn)行分離的一種方法,可利用此法將少量殼寡糖分離成不同組分,但較難實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)[6];薄層色譜法是根據(jù)各聚合度的寡糖極性不同,利用其在層析液中移動速度差異來進(jìn)行分離,由于殼寡糖極性較大,點樣承載量少,不適用于大量制備,一般常用來檢測和監(jiān)測反應(yīng)進(jìn)程[7];離子交換色譜法是以離子交換樹脂或化學(xué)鍵合離子交換劑為固定相,根據(jù)被分離組分的離子交換能力的不同或選擇性系數(shù)的差別實現(xiàn)分離,該方法分離成本較高,連續(xù)性較差,僅適合實驗室研究,難以放大生產(chǎn)[8]。

        目前工業(yè)上一般采用生物酶法對殼聚糖進(jìn)行降解后,進(jìn)行噴霧干燥而獲得殼寡糖,但得到的殼寡糖產(chǎn)品分子量分布較寬,其中含有一些未充分降解的殼聚糖大分子、殼聚糖水解酶、無機(jī)鹽、酸根離子及單糖、二糖等生物活性較低的糖等。因此,為得到聚合度為3~6的含量較高的殼寡糖產(chǎn)品,必須選擇合適的分離技術(shù)對酶解液進(jìn)行純化。

        膜分離技術(shù)是根據(jù)被分離物質(zhì)與膜孔徑大小的差異來實現(xiàn)分離的,目前在低聚果糖的分離純化領(lǐng)域應(yīng)用十分廣泛[9-10],但在殼寡糖的分離純化中應(yīng)用相對較少,工業(yè)化應(yīng)用尚未得到推廣。本研究擬從殼寡糖分離純化效果和工業(yè)化生產(chǎn)要求等方面綜合考慮,對殼聚糖酶解液在實驗室前期超濾[11]基礎(chǔ)上進(jìn)一步進(jìn)行納濾操作,提高產(chǎn)品純度,并對納濾操作參數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,研究操作壓力、操作溫度、料液pH值對殼聚糖酶解液納濾純化分離效果的影響,以確定納濾操作的最佳工藝參數(shù),為得到高活性的聚合度為3~6的殼寡糖的工業(yè)化分離純化提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        1.1.1 材料與試劑

        殼聚糖:Mw=5.8×105,脫乙酰度85.2%,水分11.2%,灰分0.62%,黏度60 cp,南通雙林海洋生物藥業(yè)有限公司;

        復(fù)合纖維素酶:355 U/mL,浙江金殼生物化學(xué)有限公司;

        高效硅膠板:10 cm×20 cm,青島海洋化工分廠;

        其他試劑:分析純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

        1.1.2 儀器與設(shè)備

        雷磁電導(dǎo)率儀:DDS307型,上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;

        紫外—可見分光光度計:UV1800型,日本島津科技有限公司;

        膜分離裝置:RO(NF)-UF-4050型,上海昊清環(huán)??萍加邢薰荆?/p>

        卷式超濾膜:HPS-10型,MWCO=10 kDa,膜面積0.4 m2,上海昊清環(huán)??萍加邢薰?;

        納濾膜名稱:1812型,截留分子質(zhì)量為500 Da,膜面積0.4 m2,上海昊清環(huán)??萍加邢薰?;

        高效液相色譜儀:1525型,美國沃特世公司。

        1.2 方法

        1.2.1 殼聚糖酶解液制備 酶解條件:復(fù)合纖維素酶添加量8 U/g,底物濃度5%,酶解溫度45 ℃,pH 4.5,酶解時間6 h,經(jīng)5 μm的微濾膜微濾處理后,參照文獻(xiàn)[11]進(jìn)行超濾處理。

        1.2.2 納濾最優(yōu)工藝條件的確定

        (1) 操作壓力:取1.5 L超濾液,控制料液濃度2%、操作溫度30 ℃、pH 5.0,分別在0.4~0.6 MPa壓力下,以納濾截留液的膜通量、氨基葡萄糖脫除率、電導(dǎo)率和pH值為指標(biāo),研究操作壓力對酶解液納濾純化效果的影響。

        (2) 操作溫度:取1.5 L超濾液,控制料液濃度2%、操作壓力0.5 MPa、pH 5.0,分別在25~40 ℃條件下,以納濾截留液的膜通量、氨基葡萄糖脫除率、電導(dǎo)率和pH值為指標(biāo),研究操作溫度對酶解液納濾純化效果的影響。

        (3) 初始pH值:取1.5 L超濾液,控制料液濃度2%、操作壓力0.5 MPa、操作溫度35 ℃,分別在初始pH 2.0~6.0條件下,以納濾截留液的膜通量、氨基葡萄糖脫除率、電導(dǎo)率和pH值為指標(biāo),研究初始pH值對酶解液納濾純化效果的影響。

        1.2.3 各指標(biāo)的測定

        (1) 膜通量的計算:

        (1)

        式中:

        J——膜通量,L/ (m2·h);

        V——透過液體積,L;

        A——有效膜面積,m2;

        t——時間,h。

        (2) 氨基葡萄糖的測定:采用Elson-Morgan法[12-13]。氨基葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線:y=8.583 4x+0.032 7,R2=0.995 5。其中y為A525 nm;x為氨基葡萄糖濃度(mg/mL)。

        (3) 電導(dǎo)率的測定:用電導(dǎo)率儀測定。

        (4) 殼寡糖平均分子質(zhì)量的測定:采用乙酰丙酮法[14]。

        (5) 分離產(chǎn)物TLC分析:用毛細(xì)吸管分別吸取5%的超濾前后的殼寡糖溶液1 μL,點于高效硅膠板上,各點之間間距0.5 cm,距底端距離1.0 cm,置于展開體系為異丙醇∶水∶氨水=60∶30∶4(體積比)的層析缸中,待展開距頂端為1.0 cm時取出并吹干。硅膠板上噴灑0.5%的茚三酮顯色劑,置于100 ℃烘箱中加熱5 min顯色。

        (6) 殼寡糖的HPLC分析:采用高效液相色譜檢測器[15],色譜條件:1525型高效液相色譜儀,蒸發(fā)光反射檢測器,Shodex Asahipak NH2P-50 4E(4.6 mmID×250 mmL)色譜柱;柱溫30 ℃;流動相為乙腈∶水=75∶25(體積比);流速1.0 mL/min;進(jìn)樣量10 μL;樣品濃度5%。

        1.2.4 數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計方法 進(jìn)行3次平行試驗,采用SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)差異顯著性分析,以P<0.05為差異顯著,結(jié)果均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用Origin 8.6軟件作圖。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 納濾分離條件

        2.1.1 操作壓力對納濾分離效果的影響 由圖1可知,膜通量隨操作壓力的增強(qiáng)而增大,但壓力越大,膜通量下降速率也越快。納濾后期,在0.5,0.6 MPa下,膜通量均穩(wěn)定在20 L/(m2·h) 左右。這是由于隨壓力增強(qiáng),溶質(zhì)對流遷移到膜表面的速率增大,濃差極化層壓實或增厚,導(dǎo)致膜通量迅速衰減。由圖2可知,納濾截留液pH值隨運行時間的延長而逐漸上升,最終穩(wěn)定在pH 5.0左右,不同操作壓力下截留液pH值變化不明顯。由圖3可知,氨基葡萄糖脫除率隨操作壓力的增強(qiáng)而增大,并隨運行時間的延長逐漸上升,35 min 后趨于平緩,0.5,0.6 MPa下氨基葡萄糖脫除率均在81%左右。由圖4可知,在各壓力條件下,納濾前期截留液電導(dǎo)率均隨運行時間延長而下降,且操作壓力越大,電導(dǎo)率越低。納濾后期,截留液電導(dǎo)率差別不明顯。綜合以上結(jié)果,雖然操作壓力越大,氨基葡萄糖的脫除效果越好,但納濾后期,對鹽和氫離子的脫除效果差別不大;且操作壓力再加大,由濃差極化造成的膜污染導(dǎo)致通量衰減越快,膜污染層不斷壓實,膜孔逐漸減小,會造成膜的不可逆污染。隨時間的延長,在0.5,0.6 MPa下膜通量均在20 L/(m2·h)左右,運行效率較高。因此,從膜的使用壽命和純化效果綜合考慮,確定操作壓力為0.5 MPa。

        圖1 膜通量隨運行時間的變化

        圖2 pH值隨運行時間的變化

        圖3 氨基葡萄糖脫除率隨運行時間的變化

        圖4 電導(dǎo)率隨運行時間的變化

        2.1.2 操作溫度對納濾分離效果的影響 由圖5、6可知,膜通量隨溫度升高而增大,這是由于溫度升高使溶液中的分子熱運動加劇,溶液動力黏度減小[16-17],溶質(zhì)擴(kuò)散系數(shù)增加,膜通量增加;不同操作溫度下,截留液pH值差別不明顯,pH值隨運行時間的延長而逐漸上升,最終穩(wěn)定在5.0左右;由圖7可知,隨溫度升高,氨基葡萄糖脫除率增大,但在納濾后期,35,40 ℃下的氨基葡萄糖脫除率無顯著性差異(P>0.05),最終穩(wěn)定在85%左右;由圖8可知,在各溫度條件下,截留液電導(dǎo)率均隨運行時間延長先逐漸減小后趨于平緩,溫度越高,截留液電導(dǎo)率越低,但溫度過高容易使寡糖發(fā)生褐變,也使得能耗增加。在35,40 ℃下的氨基葡萄糖脫除率無顯著性差異(P>0.05),且在35 ℃時,膜通量約為20 L/(m2·h),運行效率較高。因此,在保證較高的氨基葡萄糖脫除效率和膜通量前提下,確定操作溫度為35 ℃。

        圖5 膜通量隨運行時間的變化

        圖6 pH值隨運行時間的變化

        圖7 氨基葡萄糖脫除率隨運行時間的變化

        圖8 電導(dǎo)率隨運行時間的變化

        2.1.3 料液初始pH值對納濾分離效果的影響 如圖9所示,膜通量隨料液初始pH值的增大而減小,且隨運行時間的延長,膜通量呈緩慢下降的趨勢;由圖10可知,pH值為2.0,3.0,4.0的制備液隨納濾運行時間的延長,截留液pH值逐漸上升,最終穩(wěn)定在pH 5.0左右,而pH值為5.0,6.0的制備液在整個納濾過程中,截留液pH值基本保持不變;由圖11 可知,氨基葡萄糖脫除率隨料液初始pH值的升高而逐漸上升后趨于穩(wěn)定;圖12中溶液電導(dǎo)率隨運行時間延長而不斷下降,最終趨于穩(wěn)定。這是由于改變?nèi)芤簆H值能夠改變?nèi)芤褐芯垭娊赓|(zhì)的構(gòu)型和分散性,從而減小或防止對膜的污染[18],使膜通量增加。酸性條件下,殼寡糖氨基質(zhì)子化帶正電荷,分子之間存在靜電排斥,pH越低,分子之間作用力越強(qiáng)[19],分子結(jié)構(gòu)折疊越少,越容易透過,隨pH升高,寡糖分子上的電荷減少,排斥力減弱,分子間形成氫鍵,在氫鍵的作用下相互卷曲、折疊,在膜表面產(chǎn)生堆積,導(dǎo)致膜通量下降,氨基葡萄糖脫除率降低,脫鹽效果變差。韓永萍等[17]、董惠忠等[20]通過調(diào)節(jié)溶液pH值來提高膜分離效果,也得到相似結(jié)論??紤]到膜的最低耐受pH值為2.0,長時間在此條件下進(jìn)行納濾操作可能會造成膜的不可逆性損壞,且pH值2.0,3.0時氨基葡萄糖脫除率差別不大,因此,綜合純化效果與實際生產(chǎn)要求,將納濾料液初始pH值確定為3.0。

        圖9 膜通量隨運行時間的變化

        圖10 pH值隨運行時間的變化

        圖11 氨基葡萄糖脫除率隨運行時間的變化

        圖12 電導(dǎo)率隨運行時間的變化

        2.2 納濾后殼寡糖各指標(biāo)分析

        在操作壓力0.50 MPa、操作溫度35 ℃、料液pH 3.0條件下,對殼聚糖超濾液進(jìn)行納濾操作,圖13為納濾前后殼寡糖的薄層色譜圖,根據(jù)殼二糖標(biāo)準(zhǔn)品判斷,從上到下依次為氨基葡萄糖、聚合度為2~6寡糖。從圖13可以看出,納濾截留液中氨基葡萄糖顯色點非常淺,說明其含量很少,進(jìn)一步對殼寡糖的納濾截留液和透過液進(jìn)行HPLC分析,從圖14 可以看出,截留液的HPLC圖中有5個峰出現(xiàn),出峰時間7.102 min時為氨基葡萄糖,往后依次為殼二糖、殼三糖、殼四糖、殼五糖、殼六糖,氨基葡萄糖峰面積小,說明其含量低。從圖15可以看出,透過液中只有雜質(zhì)和氨基葡萄糖,無其他聚合度的殼寡糖出現(xiàn),說明此納濾膜對聚合度為2及以上的寡糖不能透過。從表1中可以看出,納濾后樣品中氨基葡萄糖含量為1.21%,脫除率為85.52%,灰分由1.12%降為0.15%,脫鹽率達(dá)95.54%,聚合度為3~6寡糖含量為70.25%,最終產(chǎn)品得率為70.12%,1%殼寡糖水溶液pH值為4.92。

        表1 納濾分離前后殼寡糖主要理化指標(biāo)

        1. 殼二糖標(biāo)品 2. 納濾截留液 3. 納濾原液 4. 納濾透過液

        圖14 納濾截留液高效液相色譜圖

        圖15 納濾透過液高效液相色譜圖

        3 結(jié)論

        本研究在前期采用相對截留分子質(zhì)量為10 kDa的卷式超濾膜,對殼聚糖酶解液進(jìn)行超濾的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步利用高效率、低成本的納濾技術(shù)對殼聚糖酶解液進(jìn)行分離純化,即用相對截留分子質(zhì)量為500 Da的卷式納濾膜進(jìn)行納濾,確定了最佳的操作參數(shù)為:操作壓力0.50 MPa、操作溫度35 ℃、濾液pH 3.0。納濾后測定產(chǎn)品成分:氨基葡萄糖含量為1.21%、灰分為0.15%、聚合度為3~6寡糖的含量提高到70.25%、最終產(chǎn)品得率為70.12%。研究結(jié)果表明,在前期超濾操作的基礎(chǔ)上,對殼聚糖酶解液進(jìn)一步進(jìn)行納濾操作,能有效地提高產(chǎn)品中聚合度為3~6寡糖的含量,且膜分離技術(shù)操作簡單,是工業(yè)化純化殼寡糖的理想工藝技術(shù)。本試驗選擇截留分子質(zhì)量為500 Da的納濾膜,可以有效去除氨基葡萄糖,但對殼二糖去除作用不強(qiáng),需進(jìn)一步選擇不同孔徑或材料的膜,提高產(chǎn)品中聚合度為3~6寡糖的含量。后續(xù)將對殼寡糖在納濾分離過程中的傳質(zhì)機(jī)理,不同分離條件對寡糖分子微觀結(jié)構(gòu)的影響等作進(jìn)一步探討。

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