江榮花,蘇 亮,任鵬程,孫琳珺,王 翔,劉 箐,董慶利,*
(1.上海理工大學(xué)醫(yī)療器械與食品學(xué)院,上海 200093;2.國(guó)家食品安全風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估中心,北京 100022)
食品安全標(biāo)準(zhǔn)的制定是風(fēng)險(xiǎn)管理的首要內(nèi)容,可用于監(jiān)控消費(fèi)者感染食源性致病菌的風(fēng)險(xiǎn)。近年來(lái)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌感染事件頻發(fā),部分國(guó)家均制定相應(yīng)的食品安全標(biāo)準(zhǔn),德國(guó)、荷蘭、加拿大、丹麥和法國(guó)規(guī)定“即食食品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌濃度不可超過(guò)2(lg (CFU/g))”,美國(guó)和意大利規(guī)定“25 g樣品中不得檢出單核細(xì)胞增生李斯特氏菌”[1],我國(guó)GB 29921—2013《食品中致病菌限量》規(guī)定“25 g熟肉樣品中不得檢出單核細(xì)胞增生李斯特氏菌”[2],而具體的熟肉類(lèi)別有待進(jìn)一步探究。
食品安全標(biāo)準(zhǔn)的制定需綜合考慮食品加工過(guò)程中的處理方式、污染和貯藏過(guò)程中食源性致病菌增殖的可能性以及消費(fèi)者的易感性等因素[3-5]。食品安全目標(biāo)(food safety objective,F(xiàn)SO)定義了消費(fèi)時(shí)危害的最大頻率或最高濃度,可結(jié)合檢出率-劑量(prevalence-dose,PD)曲線法進(jìn)行設(shè)定[6-7],可用作即食肉制品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的風(fēng)險(xiǎn)管理工具。食品安全期望?;诠S的執(zhí)行能力,而工廠執(zhí)行能力的體現(xiàn)需將FSO轉(zhuǎn)化為執(zhí)行目標(biāo)(performance objective,PO)、執(zhí)行標(biāo)準(zhǔn)(performance criteria,PC)和微生物標(biāo)準(zhǔn)(microbiological criteria,MC)等標(biāo)準(zhǔn),MC的性能一般用操作特征(operating characteristic,OC)曲線進(jìn)行描述。
低溫乳化香腸是以畜禽肉為主要原料,加入適當(dāng)輔料經(jīng)斬拌、灌裝、蒸煮和巴氏殺菌等加工工藝,中心溫度達(dá)到75~85 ℃并保持一定時(shí)間而制成的產(chǎn)品。其中,斬拌和灌裝過(guò)程的交叉污染、烘烤過(guò)程的失活以及貯藏過(guò)程中的生長(zhǎng)對(duì)終產(chǎn)品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的污染水平影響尤為顯著[8-9]。食品安全標(biāo)準(zhǔn)的制定可對(duì)食品加工鏈進(jìn)行控制,減少加工過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的污染以及單核細(xì)胞增生李斯特氏菌增長(zhǎng)至高濃度的可能性,從而降低食源性李斯特菌病發(fā)生的概率。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)合本課題組之前已完成的定量風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估結(jié)果[10]和PD曲線法設(shè)定低溫乳化香腸的FSO,進(jìn)而基于已設(shè)定的FSO進(jìn)行推算,制定相應(yīng)的PO、PC以及MC等食品安全標(biāo)準(zhǔn),最后用OC曲線對(duì)已制定的采樣方案和MC性能進(jìn)行評(píng)估,為微生物風(fēng)險(xiǎn)管理工作提供參考,完善風(fēng)險(xiǎn)管理體系。
PD曲線用于描述消費(fèi)時(shí)引起相似風(fēng)險(xiǎn)的不同致病菌檢出率和消費(fèi)劑量的組合,區(qū)分可容許和不可容許2 個(gè)區(qū)域,可測(cè)試檢出率和劑量的組合風(fēng)險(xiǎn)是否可容許[11]。應(yīng)用@Risk 5.5軟件(美國(guó)Palisade公司)建立消費(fèi)時(shí)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌檢出率Pf和每餐消費(fèi)劑量D之間的非線性關(guān)系[12],選用的概率方法按式(1)計(jì)算:
式中:R為每年李斯特菌病總事件數(shù);r為單位致病菌導(dǎo)致的發(fā)病率;Sall為高風(fēng)險(xiǎn)人群每年消費(fèi)總餐次。
1.2.1 FSO的制定
圖1 低溫乳化香腸加工過(guò)程單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的風(fēng)險(xiǎn)管理模式Fig. 1 L. monocytogenes risk management during low-temperature emulsified sausage processing
單核細(xì)胞增生李斯特氏菌從驗(yàn)收至消費(fèi)整個(gè)加工階段的風(fēng)險(xiǎn)管理如圖1所示,參考相關(guān)文獻(xiàn)[13]得知消費(fèi)時(shí)香腸樣品的單核細(xì)胞增生李斯特氏菌檢出率,同時(shí)根據(jù)本課題組已完成的香腸中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌定量風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估結(jié)果[10]確定消費(fèi)劑量。通過(guò)PD曲線測(cè)試該檢出率和消費(fèi)劑量組合是否可容許。應(yīng)用@Risk 5.5軟件擬合消費(fèi)時(shí)單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的濃度分布,同時(shí)整合可容許的檢出率制定FSO。
1.2.2 PO的制定
應(yīng)用Microsoft Excel 2010軟件進(jìn)行低溫乳化香腸加工過(guò)程各環(huán)節(jié)PO的推算,選用的計(jì)算方法如式(2)、(3)所示:
式中:ΣI為危害水平的累積增加量,包括致病菌的污染量和/或生長(zhǎng)量;ΣR為危害水平的累積減少量;Z為標(biāo)準(zhǔn)分?jǐn)?shù),計(jì)算方法如式(4)所示;S為默認(rèn)的標(biāo)準(zhǔn)差(S=0.2,樣品中致病菌均勻分布,如液體食品;S=0.4,樣品中致病菌中度均勻分布,如碎牛肉;S=0.8,樣品中致病菌不均勻分布,如固體食品[14])。
式中:μ、σ分別為致病菌濃度分布的均值、標(biāo)準(zhǔn)差。
1.2.3 PC的制定
PC為危害水平的減少量或最大可增加量,應(yīng)用Microsoft Excel 2010軟件對(duì)低溫乳化香腸加工過(guò)程各環(huán)節(jié)PC進(jìn)行推算,計(jì)算方法如式(5)所示[15]:
式中:H0為危害的初始水平,ΣI和ΣR如1.2.2節(jié)所述。
具體推算過(guò)程如等式(6)所示,貯藏是香腸加工過(guò)程的最終過(guò)程,因此貯藏過(guò)程的PO值可等于消費(fèi)時(shí)的FSO值。任一過(guò)程的PO值是下一過(guò)程的H0值,如斬拌過(guò)程的PO值等于灌裝過(guò)程的H0值(PO1=H0-2)。
根據(jù)1.2節(jié)中已建立的FSO或PO值,建立相應(yīng)的符合致病菌FSO和PO值的MC需做出以下假設(shè):其一,定義采集樣品批次內(nèi)致病菌的分布,一般假定為對(duì)數(shù)正態(tài)(lognormal)分布,分布的標(biāo)準(zhǔn)差采用缺省值:S=0.2,樣品中致病菌均勻分布,如液體食品;S=0.4,樣品中致病菌中度均勻分布,如碎牛肉;S=0.8,樣品中致病菌不均勻分布,如固體食品。其二,定義滿足FSO或PO的危害最大頻率或濃度。其三,定義不合格樣品不可接受的置信水平(Pd)。其四,定義樣品的分析單元大小[16]。
基于以上假定,樣品單元數(shù)(n)計(jì)算方法如式(7)所示:
式中:pa為一個(gè)樣品可接受的概率值,計(jì)算方法如式(8)所示:
式中:x為微生物限量(lg (CFU/g));μ為微生物濃度分布的均值(lg(CFU/g));σ為微生物濃度分布的標(biāo)準(zhǔn)差;cumulative為一個(gè)邏輯值:當(dāng)Normdist返回累積分布時(shí),設(shè)置為1;當(dāng)Normdist返回為頻率分布時(shí),設(shè)置為0。
OC曲線可用于描述MC的性能,應(yīng)用Minitab 17軟件(美國(guó)Minitab公司)可建立基于樣本單元數(shù)(n)和可允許的陽(yáng)性樣品數(shù)(c)的OC曲線;另一類(lèi)基于生產(chǎn)者和消費(fèi)者可接受安全水平的OC曲線[17]可用式(9)進(jìn)行計(jì)算:
式中:Pa為一個(gè)批次樣品可接受的概率值;x、μ和σ如1.3節(jié)所述。
應(yīng)用@Risk 5.5軟件擬合貯藏后樣品中致病菌濃度(μ, σ),將μ的擬合值帶入式(9)中計(jì)算出相應(yīng)的Pa值,應(yīng)用Microsoft Excel 2010軟件對(duì)μ-Pa的相關(guān)性進(jìn)行描述。
圖2 消費(fèi)時(shí)低溫乳化香腸中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的濃度分布Fig. 2 Probability distribution of L. monocytogenes upon consumption of low-temperature emulsified sausage
基于已完成的低溫乳化香腸加工過(guò)程中定量風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估結(jié)果[10],整合消費(fèi)時(shí)樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌分布和樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的檢出率可評(píng)估出樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的限量值m,如圖2所示。將圖2中2 組限量值轉(zhuǎn)化為劑量D(D=m×M,M為每餐香腸消費(fèi)量(g)),并將劑量值(D)和檢出率(P)組合帶入圖3中進(jìn)行驗(yàn)證,由圖3可知,2 組PD組合(分別為P=1.35%、D=-2.92(lg CFU)和P=1.35%、D=2.02(lg CFU))均在可容許區(qū)域內(nèi)。因此,圖2中限量值可設(shè)置為低溫乳化香腸的FSO。
圖3 低溫乳化香腸消費(fèi)時(shí)的PD等值線Fig. 3 Prevalence-dose equivalence curve upon consumption of low-temperature emulsified sausage
基于斬拌和灌裝過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的交叉污染,低溫乳化香腸的FSO可設(shè)定為消費(fèi)時(shí)低溫乳化香腸中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌污染水平不可超過(guò)0.36(lg(CFU/g))或消費(fèi)時(shí)污染單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的低溫乳化香腸需低于1.35%。未整合斬拌和灌裝過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的交叉污染時(shí),低溫乳化香腸的FSO可設(shè)定為消費(fèi)時(shí)低溫乳化香腸中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌污染水平不可超過(guò)-4.58(lg(CFU/g))或消費(fèi)時(shí)污染單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的低溫乳化香腸需低于1.35%。由整合和未整合交叉污染的FSO設(shè)定結(jié)果可知,未整合斬拌和灌裝過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌交叉污染的FSO值明顯低于整合交叉污染的結(jié)果,低估了低溫乳化香腸的食用風(fēng)險(xiǎn)。
表1 低溫乳化香腸加工過(guò)程中各環(huán)節(jié)PO及PC的設(shè)定Table 1 Setting of PO and PC during low-temperature emulsi fi ed sausage processing
如表1所示,以烘烤過(guò)程為例,基于斬拌和灌裝過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的交叉污染,香腸烘烤時(shí)的PO可設(shè)定為烘烤時(shí)低溫乳化香腸中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌污染水平不可超過(guò)-2.32(lg(CFU/g))或烘烤時(shí)污染單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的低溫乳化香腸需低于23.3%;未整合斬拌和灌裝過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的交叉污染時(shí),香腸烘烤時(shí)的PO可設(shè)定為烘烤時(shí)低溫乳化香腸中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌污染水平不可超過(guò)-7.26(lg(CFU/g))或烘烤時(shí)污染單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的低溫乳化香腸需低于23.3%。
基于制定的PO值,相應(yīng)的香腸烘烤時(shí)的PC設(shè)定結(jié)果為:整合交叉污染時(shí),烘烤過(guò)程中需確保6.56(lgCFU)的單核細(xì)胞增生李斯特氏菌減少量;未整合交叉污染時(shí),烘烤過(guò)程中需確保5.33 (lg CFU)的單核細(xì)胞增生李斯特氏菌減少量。另以貯藏過(guò)程為例,香腸貯藏時(shí)的PC設(shè)定結(jié)果為:整合交叉污染時(shí),貯藏過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的增加量不可超過(guò)5.68(lgCFU);未整合交叉污染時(shí),貯藏過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的增加量不可超過(guò)4.54(lgCFU)。由整合和未整合交叉污染的PO及PC設(shè)定結(jié)果可知,整合斬拌和灌裝過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌交叉污染的PO及PC更為嚴(yán)格。
表2 低溫乳化香腸加工過(guò)程中各環(huán)節(jié)的采樣方案Table 2 Sampling plans for different steps of low-temperature emulsi fi ed sausage processing
如表2所示,以貯藏過(guò)程為例,香腸貯藏時(shí)的MC制定結(jié)果為:整合交叉污染時(shí),樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的濃度分布為μ=-3.27(lg(CFU/g)),σ=1.64,分析單元大小為25 g,獨(dú)立采樣所得樣品單元為222,允許的陽(yáng)性樣品單元為0,單核細(xì)胞增生李斯特氏菌限量值為0.36(lg(CFU/g));未整合交叉污染時(shí),樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的濃度分布為μ=-7.48(lg(CFU/g)),σ=1.31,分析單元大小為25 g,獨(dú)立采樣所得樣品單元為222,允許的陽(yáng)性樣品單元為0,單核細(xì)胞增生李斯特氏菌限量值為-4.58(lg(CFU/g))。由表2可知,驗(yàn)收、烘烤和貯藏過(guò)程中,未整合交叉污染的采樣數(shù)高于整合交叉污染的結(jié)果,因此,考慮生產(chǎn)成本和經(jīng)濟(jì)性,整合交叉污染的過(guò)程耗費(fèi)的人力和物力更少。
以灌裝和烘烤過(guò)程為例,綜合表1、2可知,烘烤過(guò)程結(jié)束時(shí),低溫乳化香腸污染單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的最大污染水平低于灌裝過(guò)程,同時(shí)基于理論推導(dǎo)可知,烘烤過(guò)程檢出單核細(xì)胞增生李斯特氏菌陽(yáng)性的低溫乳化香腸數(shù)低于灌裝過(guò)程(0.233×12<0.013×224)。
2.4.1 基于樣本單元數(shù)和可接受水平限量值的OC曲線
圖4 基于樣本單元數(shù)和可接受水平限量值的OC曲線Fig. 4 OC curves based on the number of samples tested and the maximum number of those samples that may exceed the specified level
以驗(yàn)收過(guò)程為例,圖4A中,假設(shè)樣品中10%缺陷率的限量,則Pa=0.04,表明檢測(cè)缺陷率為10%的樣品時(shí),100 次檢測(cè)中有4 次可能得到30 份檢樣中有0 份檢樣為陽(yáng)性的情況,因而接受;但若100 次檢測(cè)中有96 次得到30 份檢樣中有大于等于0 份檢樣為陽(yáng)性的情況,則拒絕(Pd=0.96)。未整合交叉污染的場(chǎng)景如圖4B所示,假設(shè)樣品中10%缺陷率的限量時(shí),Pa=0.18>0.04,Pd=0.82<0.96,因此,相同樣品單元缺陷率的批次在整合交叉污染的場(chǎng)景下被視為“可接受”的概率較低,因此整合交叉污染的采樣方案更為嚴(yán)格。
圖4反映了在特定可接受限量條件下,不同加工過(guò)程的可接受概率從100%降至0%時(shí)對(duì)某批產(chǎn)品可接受或不可接受的判別力。批次的樣品單元(n)越大,OC曲線越陡峭,采樣方案越接近理想狀態(tài)。因此,整合交叉污染的場(chǎng)景下(圖4A),不同加工過(guò)程采樣方案的嚴(yán)格性排序?yàn)楣嘌b>貯藏>驗(yàn)收>烘烤>斬拌;未整合交叉污染的場(chǎng)景下(圖4B),不同加工過(guò)程采樣方案的嚴(yán)格性排序?yàn)橘A藏>烘烤>驗(yàn)收。
2.4.2 基于生產(chǎn)者和消費(fèi)者可接受安全水平的OC曲線
以貯藏過(guò)程為例,整合交叉污染的貯藏過(guò)程O(píng)C曲線和相應(yīng)的消費(fèi)者及生產(chǎn)者可接受安全水平的濃度分布情況如圖5a~c所示,圖5a展示了95%拒絕水平(消費(fèi)者可接受安全水平)和95%可接受水平(生產(chǎn)者可接受安全水平)下單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的平均污染水平,圖5b反映了消費(fèi)者的可接受安全水平,平均污染水平為-0.53(lg(CFU/g))的批次有95%的概率被拒絕,同時(shí)99%點(diǎn)對(duì)應(yīng)的濃度水平0.36(lg(CFU/g))可設(shè)定為FSO值,確保99%的樣品單元不超過(guò)FSO值,圖5c展示了生產(chǎn)者的可接受安全水平,平均污染水平為-1.04(lg(CFU/g))的批次有95%的概率被接受。
圖5 基于生產(chǎn)者和消費(fèi)者可接受安全水平的OC曲線Fig. 5 OC curves of the acceptable level for safety of producer and consumer
未整合交叉污染的貯藏過(guò)程O(píng)C曲線和相應(yīng)的消費(fèi)者和生產(chǎn)者的可接受安全水平的濃度分布情況如圖5d~f所示,圖5d為95%拒絕水平和95%可接受水平下單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的平均污染水平分布,圖5e為消費(fèi)者的可接受安全水平分布,平均污染水平為-5.46(lg(CFU/g))的批次有95%的概率被拒絕,同時(shí)99%點(diǎn)對(duì)應(yīng)的濃度水平-4.58 (lg(CFU/g))設(shè)定為FSO值,圖5f為生產(chǎn)者的可接受安全水平分布,平均污染水平為-5.99(lg(CFU/g))的批次有95%的概率被接受。由整合和未整合交叉污染的貯藏過(guò)程O(píng)C曲線對(duì)比結(jié)果可知,未整合交叉污染的場(chǎng)景高估了消費(fèi)者風(fēng)險(xiǎn)(-5.46<-0.53,食品批次應(yīng)該被拒絕時(shí)卻被接受),同時(shí)低估了生產(chǎn)者風(fēng)險(xiǎn)(-5.99<-1.04,食品批次應(yīng)該被接受時(shí)卻被拒絕)。
近年來(lái)食品安全事件頻發(fā),基于制定科學(xué)合理的食品安全標(biāo)準(zhǔn)的理念,國(guó)際食品微生物標(biāo)準(zhǔn)委員會(huì)(International Commission on Microbiological Specifications for Foods,ICMSF)提出適當(dāng)保護(hù)水平(appropriate level of protection,ALOP)的概念,定義為:成員國(guó)制定并認(rèn)為適當(dāng)?shù)男l(wèi)生或植物檢疫措施以保護(hù)本國(guó)人、動(dòng)物或植物的生命或健康的保護(hù)水平[1]。ALOP可以用于衡量食品衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)的科學(xué)合理性,屬于國(guó)家水平上的公眾健康目標(biāo),范圍較為寬泛、抽象,因此在食品工廠設(shè)定FSO方面,并不是一個(gè)有效方式[18-19]。因此,ICMSF提出FSO的概念,用于連接ALOP和食品供應(yīng)鏈的目標(biāo)點(diǎn)。
FSO定義為在能夠提供適當(dāng)保護(hù)水平的基礎(chǔ)上,消費(fèi)時(shí)食品中微生物危害的最大頻率和/或最高濃度[1]。FSO的設(shè)置需結(jié)合消費(fèi)前食品加工鏈中所有控制點(diǎn)污染的可能性和影響,因此,食品法典委員會(huì)提出PO和PC的概念,PO定義為:在確保FSO或ALOP實(shí)現(xiàn)的基礎(chǔ)上,消費(fèi)前食品加工鏈的某階段食品中危害的最大頻率和/或最高濃度。PC定義為:通過(guò)采取一項(xiàng)或多項(xiàng)控制措施,控制食品中有害因素的發(fā)生頻率和濃度,以滿足PO和/或FSO的要求[20]。基于微生物學(xué)檢測(cè)驗(yàn)證PO和PC需建立相應(yīng)的MC。
MC定義為:基于單位質(zhì)量、體積、面積或批次中微生物(包括寄生蟲(chóng))和/或其毒素/代謝產(chǎn)物的有無(wú)或數(shù)量判定某一產(chǎn)品或食品批次的可接受性[21-22]。MC的主要內(nèi)容包括:樣品中致病菌的濃度分布(μ, σ);適宜于食物鏈特定環(huán)節(jié)的微生物限量;定義采集樣本數(shù)量和大小的采樣方案[23]。歐盟法規(guī)設(shè)立了2 類(lèi)MC:食品安全標(biāo)準(zhǔn)和加工衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)。食品安全標(biāo)準(zhǔn)是某一產(chǎn)品或食品批次應(yīng)用于市場(chǎng)銷(xiāo)售的可接受性;加工衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)表明產(chǎn)品加工過(guò)程運(yùn)作的可接受性[24]。一般用OC曲線描述MC的性能。
OC曲線是指基于測(cè)試的樣本單元數(shù)、樣品單元的比例或批次等份和特定的可接受水平(如最大可容忍缺陷率)判定批次樣本可接受的概率曲線。OC曲線主要用2 個(gè)指標(biāo)進(jìn)行描述:樣本單元數(shù)(n)和可允許的陽(yáng)性樣本單元數(shù)(c),這類(lèi)OC曲線主要用于評(píng)估采樣方案的性能[1,25]。另一類(lèi)整合樣品批次中致病菌濃度分布的OC曲線可用于評(píng)估MC的性能,MC性能的評(píng)估依據(jù)主要是檢驗(yàn)食品批次是否滿足FSO或PO[11]。
FSO的制定方法主要包括正序法、倒序法和PD曲線?;诹餍胁W(xué)數(shù)據(jù)的正序法是國(guó)家水平上較好的風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估方法。正序法一般使用反向劑量效應(yīng)模型進(jìn)行評(píng)估,假定特定的交叉污染路徑為唯一影響消費(fèi)時(shí)食品中致病菌污染水平的因素,因此模型進(jìn)行參數(shù)設(shè)置時(shí),輸入值的不確定性和變異性較小,但是數(shù)據(jù)質(zhì)量要求較高[21-22]?;谑称饭?yīng)鏈數(shù)據(jù)的倒序法是國(guó)際水平上較好的風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估方法。倒序法構(gòu)建的模型較為復(fù)雜,因此模型中所需數(shù)據(jù)的獲得具有很大挑戰(zhàn)性。模型的輸入值較多,因此累積在風(fēng)險(xiǎn)特征描述階段的不確定性和變異性較大,但是特定致病菌的陽(yáng)性檢出率和濃度數(shù)據(jù)較易獲得[26]。暴露量主要受交叉污染過(guò)程中介質(zhì)數(shù)量、介質(zhì)類(lèi)型及污染路徑等因素影響,因此FSO的制定需使用細(xì)胞數(shù)定義風(fēng)險(xiǎn)。對(duì)比采用正序法和倒序法制定FSO,PD曲線使用食品消費(fèi)劑量代替食品中致病菌的濃度或陽(yáng)性檢出率進(jìn)行制定更為全面[6]。
本研究中采用PD曲線,同時(shí)整合消費(fèi)時(shí)樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的分布和樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的檢出率對(duì)低溫乳化香腸的FSO進(jìn)行制定,結(jié)果表明,整合和未整合交叉污染的結(jié)果均在可容許區(qū)域內(nèi),因此2 種場(chǎng)景均可用于低溫乳化香腸FSO的制定。Havelaar等[6]研究結(jié)果表明,F(xiàn)SO的定義需修正為考慮食品中致病菌污染的變異性和不確定性、食品中致病菌的陽(yáng)性檢出率和濃度分布,因此建議采用PD曲線用于FSO的制定。Gkogka等[27]研究并比較了正序法和倒序法2 種風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估方法制定荷蘭雞肉的FSO,結(jié)果表明,2 種方法得到的FSO值具有顯著性差異(P<0.05),可能因?yàn)榉椒ú煌蚩傻玫降臄?shù)據(jù)有限影響了FSO的制定,與Konstantinos等[26]的研究相似。關(guān)于低溫乳化香腸FSO制定方法的選用可為風(fēng)險(xiǎn)管理者提供借鑒。
食源性致病菌的交叉污染是指制作表面污染致病菌的食品時(shí)操作不當(dāng)污染到其他食品[28]。香腸加工過(guò)程的斬拌和灌裝過(guò)程交叉污染現(xiàn)象尤為嚴(yán)重。本研究表明,對(duì)比未整合交叉污染的食品安全標(biāo)準(zhǔn)制定結(jié)果,整合交叉污染的結(jié)果更為嚴(yán)格,且過(guò)程中耗費(fèi)的人力物力更少。單核細(xì)胞增生李斯特氏菌廣泛存在于香腸加工環(huán)境中,同時(shí)可在香腸貯藏環(huán)境中生長(zhǎng),因此關(guān)于香腸樣品中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的檢出報(bào)道頻發(fā)[29-31]。香腸加工過(guò)程中,斬拌機(jī)或灌裝機(jī)等設(shè)備清洗不當(dāng)或操作人員衛(wèi)生不合格均會(huì)造成單核細(xì)胞增生李斯特氏菌的交叉污染。Gkogka等[27]采用Spearman相關(guān)系數(shù)對(duì)影響FSO制定的因素進(jìn)行敏感性分析,結(jié)果表明交叉污染是影響FSO制定的重要因素(Spearman相關(guān)系數(shù)為0.39)。關(guān)于香腸加工過(guò)程中單核細(xì)胞增生李斯特氏菌交叉污染的研究可為香腸加工過(guò)程中完整的風(fēng)險(xiǎn)管理研究提供借鑒。
本實(shí)驗(yàn)研究交叉污染對(duì)低溫乳化香腸加工過(guò)程中食品安全標(biāo)準(zhǔn)制定的影響,結(jié)果表明,整合交叉污染的標(biāo)準(zhǔn)制定結(jié)果更為嚴(yán)格,且過(guò)程中耗費(fèi)的人力物力更少。評(píng)估制定的采樣方案和MC,結(jié)果表明,整合交叉污染的采樣方案較為嚴(yán)格,未整合交叉污染的場(chǎng)景高估了消費(fèi)者風(fēng)險(xiǎn),同時(shí)低估了生產(chǎn)者風(fēng)險(xiǎn)。比較了已制定的食品安全標(biāo)準(zhǔn)、GB 29921—2013和其他國(guó)家食品安全標(biāo)準(zhǔn),為微生物風(fēng)險(xiǎn)管理工作提供參考。