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        雌激素通過雌激素受體α上調(diào)載脂蛋白M的表達(dá)

        2018-11-15 02:21:34魏江于洋羅光華張俊徐寧張曉膺蘇州大學(xué)附屬第三醫(yī)院綜合實(shí)驗(yàn)室江蘇常州3003瑞典Lund大學(xué)臨床化學(xué)系S85
        現(xiàn)代醫(yī)藥衛(wèi)生 2018年21期

        魏江,于洋,羅光華,張俊,徐寧,張曉膺(.蘇州大學(xué)附屬第三醫(yī)院綜合實(shí)驗(yàn)室,江蘇常州3003;.瑞典Lund大學(xué)臨床化學(xué)系S-85)

        載脂蛋白M(ApoM)主要存在于高密度脂蛋白(HDL)中,少部分存在于低密度脂蛋白(LDL)和極低密度脂蛋白中[1]。其有8股反向β折疊片段,從而形成疏水性結(jié)合域,這樣就與一些親脂小蛋白分子結(jié)合,如視黃醇、肉豆蔻酸及1-磷酸鞘氨醇(S1P),從而發(fā)揮相應(yīng)作用。ApoM能促進(jìn)前β-HDL顆粒形成及成熟,而β-HDL的主要功能是促進(jìn)細(xì)胞內(nèi)膽固醇的外流,從而發(fā)揮其抗動脈粥樣硬化功能[2]。ApoM是S1P的主要載體,并調(diào)節(jié)S1P的代謝,維持機(jī)體內(nèi)皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能的完整性[3]。ApoM與S1P結(jié)合具有抗炎作用[4]。加入外源性的ApoM-S1P抑制腫瘤壞死因子-α的誘導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞炎癥作用[5]。作者前期研究發(fā)現(xiàn),雌激素能體內(nèi)外上調(diào)ApoM的表達(dá),但具體機(jī)制尚不清楚[6]。本研究將進(jìn)一步探討雌激素調(diào)節(jié)ApoM基因轉(zhuǎn)錄的具體分子機(jī)制。

        1 材料與方法

        1.1 材料 HepG2肝癌細(xì)胞株和人乳腺癌細(xì)胞系(MCF-7)購自美國ATCC公司;DMEM培養(yǎng)基、無酚紅DMEM培養(yǎng)基、RPMI-1640培養(yǎng)基、胎牛血清、活性炭處理的胎牛血清和LipofectamineTM2000轉(zhuǎn)染試劑購自美國Gibco公司;雌二醇和牛血清清蛋白結(jié)合雌激素(E2-BSA)購自美國 Sigma公司;雌激素受體α(ER-α)拮抗劑MPP購自英國Tocris公司。質(zhì)粒pGL3-basic和雙熒光報(bào)告系統(tǒng)購自美國Promega公司;Gel Extraction Kit試劑盒和質(zhì)粒提取試劑盒購自美國OMEGA公司的;LightShift?Chemiluminescent凝膠電泳遷移實(shí)驗(yàn)(EMSA)試劑盒購自美國Pierce公司;染色質(zhì)免疫共沉淀(CHIP)試劑盒購自美國Thermofisher公司??俁NA提取試劑盒K352購自上海申能博彩科技有限公司。首鏈cDNA合成試劑盒購自立陶宛Ferments公司。引物及探針均由上海生工生物工程有限公司合成。兔抗人ApoM多克隆抗體由瑞典隆德大學(xué)臨床化學(xué)系制備??谷藛慰寺】贵w和辣根標(biāo)記羊抗兔免疫球蛋白(IgG)二抗購自美國Santa Cruz公司。ECL化學(xué)發(fā)光檢測試劑盒購自北京康為世紀(jì)生物科技有限公司。總蛋白提取試劑盒購自上海炎彬化工科技有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 細(xì)胞培養(yǎng)按常規(guī)培養(yǎng)HepG2細(xì)胞,用含10%活性炭處理的胎牛血清的無酚紅DMEM稀釋消化后離心的細(xì)胞,按5×104μL-1孔接種至6孔培養(yǎng)板,常規(guī)培養(yǎng)24 h后,用磷酸鹽緩沖溶液(PBS)洗滌3次,再加入無酚紅DMEM培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24 h,第3天PBS洗滌后,加入含不同濃度17β-雌二醇共價(jià)衍生物(E2-BSA)的無酚紅DMEM培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,提取細(xì)胞總RNA及蛋白待測。拮抗劑試驗(yàn)與濃度試驗(yàn)與之類似,區(qū)別為第3天洗滌后,加入雌二醇(10 μmol∕L)或 E2-BSA(100 nmol∕L)及 ER-α MPP(1 μmol∕L),繼續(xù)培養(yǎng) 24 h,提取細(xì)胞總 RNA 待測。

        1.2.2 逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)和熒光定量PCR RT-PCR步驟按照Ferments公司試劑盒及其說明書進(jìn)行。熒光定量PCR在LightCycler熒光定量PCR儀上完成。本研究所需引物及探針見表1。反應(yīng)條件為95℃3min;95℃5s,60℃15s,共40個循環(huán);40℃1min。

        1.2.3 蛋白免疫印跡法(Western blotting)檢測ApoM的表達(dá) 將蛋白與十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)蛋白上樣緩沖液混勻,置100℃5 min進(jìn)行蛋白變性,冰上放置。取變性樣本10 μL上樣(總蛋白上樣量20 μg),電泳,以250 mA電流2 h轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜上。含3%BSA的加吐溫-20磷酸鹽緩沖溶液(PBST)緩沖液中室溫封閉1 h后,用ApoM多克隆抗體4℃孵育過夜,1×PBST洗膜3次后,加二抗室溫孵育2 h后,采用增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光法(ECL)發(fā)光檢測。

        1.2.4 pCDNA3.1-ER-α表達(dá)載體的構(gòu)建 以人全序列基因?yàn)槟0澹O(shè)計(jì)含Xho I和EcoR I酶切位點(diǎn)的引物。從MCF-7細(xì)胞中抽提總RNA,RT-PCR擴(kuò)增ER-α基因。PCR 條件:94 ℃ 5 min;94℃ 30 s,54 ℃ 30 s,72 ℃2 min,30個循環(huán);72℃ 10 min;16℃ 保存。1% 瓊脂糖凝膠電泳分離目的基因。將ER-α回收產(chǎn)物和pCDNA3.1載體用限制性內(nèi)切酶Xho I與EcoRI進(jìn)行雙酶切,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,并用Gel Extraction Kit試劑盒進(jìn)行產(chǎn)物回收。將ER-α目的基因片段和pCDNA3.1載體進(jìn)行連接,并將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞大腸桿菌DH5α,接種于氨芐抗性的LB固體培養(yǎng)基上進(jìn)行篩選。挑取單克隆,提取質(zhì)粒,經(jīng)Xho I和EcoRI酶切進(jìn)行鑒定。鑒定正確的質(zhì)粒送上海生物工程有限公司測序驗(yàn)證。

        1.2.5 ApoM啟動子區(qū)(野生型和點(diǎn)突變型)熒光素酶表達(dá)載體(pGL3-ApoM)的構(gòu)建 (1)根據(jù)基因信息學(xué)設(shè)計(jì)預(yù)測了ApoM啟動子區(qū)可能存在不同ER-α結(jié)合位點(diǎn),設(shè)計(jì)了擴(kuò)增引物,分別添加了BglⅡ和HindⅢ酶切位點(diǎn)(表2)。以全基因組為模板,PCR方法獲得不同長度ApoM啟動子片段。PCR條件:94℃5 min;94℃30 s,65 ℃ 30 s,72 ℃ 2 min,30 個循環(huán);72 ℃ 10 min;16℃保存。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)雙酶切后連接入pGL3-basci載體中,陽性克隆經(jīng)酶切鑒定及DNA測序鑒定。(2)點(diǎn)突變載體的構(gòu)建,設(shè)計(jì)欲定點(diǎn)突變的引物。正義引物:5′-TTAATAAACTCTAATATACTCACTGCCCAAATTTTGT TTGTTTTT-3′,反義引物:5′-AAAAACAAACAAAACAG TGAGTATATTAGAGTTTATTAA-3′。以構(gòu)建好的ApoM P3質(zhì)粒做模板,PCR擴(kuò)增目的基因。PCR條件:94℃5 min;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 7 min,18 個循環(huán);72℃10 min;16℃保存。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)DpnI酶酶切后連接入pGL3-basci載體中,陽性克隆經(jīng)酶切鑒定及DNA測序鑒定。將測序正確的重組質(zhì)粒分別命名為P1、P2、P3和 P4。

        1.2.6 細(xì)胞轉(zhuǎn)染和雙熒光素酶活性檢測 (1)細(xì)胞轉(zhuǎn)染:將 MCF-7按 2×104μL-1接種于24孔板,培養(yǎng)24 h后,用Lipofectamine 2000試劑盒進(jìn)行轉(zhuǎn)染。對照組pGL-3-BASIC、pcDNA3.0和pRL-SV40共轉(zhuǎn)染。實(shí)驗(yàn)組為不同啟動子區(qū)長度的pGL-3-ApoM、pcDNA3.0-ER-α和pRL-SV40共轉(zhuǎn)染。(2)熒光素酶活性測定:轉(zhuǎn)染48 h后,加入裂解液裂解細(xì)胞,收集上清液,并用于熒光素酶活性測定,按照試劑說明書進(jìn)行操作。熒光素酶相對活性用熒光素酶活性∕海腎熒光素酶活性的比值(Luc∕RL)表示;每組同時轉(zhuǎn)染3孔,進(jìn)行3次獨(dú)立檢測,計(jì)算Luc∕RL 的平均值。

        1.2.7 EMSA 利用上述構(gòu)建ApoM啟動子區(qū)P3位點(diǎn)報(bào)告基因及點(diǎn)突變基因?yàn)樘结樂治鯡R-α與ApoM啟動子的結(jié)合活性。依照美國Pierce公司試劑盒操作說明進(jìn)行,等量細(xì)胞核提取物(5 μg)與生物標(biāo)記的凝膠寡核苷酸探針或冷探針在20℃以下孵育30 min,反應(yīng)混合物經(jīng)6.5%聚丙烯酰胺凝膠在預(yù)冷0.5×Tris-硼酸(TBE)緩沖液中4℃、100 V電泳1 h。用半干電轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)移至尼龍膜上。用封閉液室溫封閉膜15 min;加放辣根過氧化物酶耦聯(lián)的鏈親和素,室溫孵育15 min,加放化學(xué)發(fā)光底物室溫孵育2 min,暗室中X射線膠片曝光。

        1.2.8 染色質(zhì)免疫共沉淀技術(shù)(CHIP-PCR) 按照Piece Agarose CHIP Kit試劑盒說明進(jìn)行操作。選取MCF-7細(xì)胞常規(guī)培養(yǎng)48 h,加入終濃度1%的甲醛,37℃交聯(lián)固定DNA與蛋白質(zhì)10 min。收集細(xì)胞用裂解緩沖液重懸,冰上放置15 min,每5分鐘渦旋混勻1次。離心取上清液,將獲得的5 μL上清液作為Input組存于-80℃?zhèn)溆?。另?5 μL加入ER-α抗體,4℃孵育過夜處理,離心收集沉淀。與Input組同時用5 mmol∕L氯化鈉65℃解交聯(lián)4 h,DNA純化后溶于30 μL洗脫液中。針對ApoM上游啟動子區(qū)設(shè)計(jì)特異性引物,擴(kuò)增包含ER-α識別序列片段,以確定ER-α與ApoM的結(jié)合;正義引物:5′-TTGGGCAACAGAACGAGACT-3′,反義引物:5′-TATCCCATGGACTGCCACAA-3′

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用GraphPad 6.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量數(shù)據(jù)以表示,組間比較采用one-way ANOVA檢驗(yàn)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 不同濃度的E2-BSA作用于HepG2細(xì)胞后ApoM mRNA和蛋白水平變化 不同濃度的E2-BSA作用于HepG2細(xì)胞24 h后,ApoM組的mRNA和蛋白水平與0 mol∕L E2-BSA比較呈濃度依賴性升高,其中100 nmol∕L的E2-BSA顯著上調(diào)了ApoM的表達(dá),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。

        2.2 MPP抑制試驗(yàn) MPP抑制了E2和E2-BSA對HepG2細(xì)胞中ApoM的上調(diào)作用。見圖2。

        2.3 ER-α基因載體構(gòu)建及其重組質(zhì)粒鑒定 從MCF-7細(xì)胞提取總RNA,以其逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)獲得的cDNA為模板,擴(kuò)增ER-α。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳,結(jié)果顯示,大約在2 000 bp的位置可見特異性目的條帶,與預(yù)期結(jié)果一致。見圖3 A。將PCR目的片段回收后,將pcDNA3.1空載體雙酶切,經(jīng)連接和轉(zhuǎn)化后挑取單克隆提取質(zhì)粒進(jìn)行菌落PCR鑒定和Xho I與Eco-RI雙酶切鑒定。結(jié)果顯示,在2 000 bp位置可見特異性目的條帶。經(jīng)測序比對,結(jié)果一致,說明ER-α基因已成功克隆至pCDNA3.1-載體上。見圖3 B。

        2.4 ApoM熒光素酶報(bào)告載體的構(gòu)建及其重組質(zhì)粒鑒定 PCR擴(kuò)增ApoM啟動子非編碼區(qū)基因片段產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳顯示,其基因片段大小與預(yù)計(jì)相符,分別為 3 060 bp,2 207 bp、1 740 bp、1 189 bp(P1、P2、P3、P4)左右的清晰條帶,表明已經(jīng)獲得ApoM啟動子非編碼基因片段。見圖4 A、B。將PCR目的片段回收后,將pGL3-Basic空載體雙酶切,經(jīng)連接和轉(zhuǎn)化后挑取單克隆提取質(zhì)粒進(jìn)行菌落PCR鑒定和經(jīng)內(nèi)切酶BglⅡ與Hind Ⅲ進(jìn)行雙酶切。結(jié)果顯示,在 3 060、2 207、1 740、1 189 bp(ApoM P1、P2、P3、P4)上相應(yīng)的位置可見特異性目的條帶。經(jīng)測序比對,結(jié)果一致,說明ER-α基因已成功克隆至pGL3-Basic-載體上。見圖4 C。

        圖1 E2-BSA作用于HepG2細(xì)胞對ApoM mRNA和蛋白的影響

        圖2 不同雌激素和MPP作用于HepG2細(xì)胞對ApoM mRNA的影響

        圖3 ER-α基因載體構(gòu)建及重組ER-α質(zhì)粒的鑒定

        圖4 重組ApoM質(zhì)粒的構(gòu)建

        2.5 雙熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)檢測ER-α對ApoM啟動子活性的影響 ER-α和不同ApoM啟動子片段共轉(zhuǎn)染MCF-7細(xì)胞的熒光素酶實(shí)驗(yàn)。結(jié)果顯示,ApoM啟動子P3位置[-1 580~ -1 575 bp(-GGTCA)]比 P1、P2和 P4有更高的熒光素活性,而突變的P3熒光素酶活性則顯著下降。這一結(jié)果說明ApoM啟動子P3位置[-1 580~-1 575 bp(-GGTCA)]存在著 ER-α 結(jié)合位點(diǎn)。見圖5。

        2.6 EMSA驗(yàn)證ER-α與ApoM啟動子序列的結(jié)合活性 只加入核蛋白作為陰性對照(圖6,泳道1)。EMSA結(jié)果顯示,生物素標(biāo)記的探針可與核蛋白結(jié)合(圖6,泳道2),而在冷競爭中復(fù)合物消失(圖6,泳道3),在突變競爭中,可觀察到核蛋白與DNA形成的復(fù)合物(圖6,泳道4),加入抗ER-α抗體后,復(fù)合物的條帶減弱,且在泳道后出現(xiàn)另一條復(fù)合物帶(圖6,泳道5)。以上結(jié)果提示ER-α與ApoM存在著相互作用。

        2.7 CHIP-PCR驗(yàn)證ER-α與ApoM的啟動子區(qū)結(jié)合采用CHIP-PCR驗(yàn)證細(xì)胞內(nèi)ApoM啟動子區(qū)存在著ER-α的結(jié)合位點(diǎn)。將抗ER-α抗體與裂解后的核蛋白結(jié)合,用RT-PCR對ApoM啟動子P3區(qū)進(jìn)行擴(kuò)增??笶R-α抗體組ApoM的表達(dá)水平是陰性對照組(IgG)的12倍,這提示內(nèi)源性 ER-α直接與 ApoM啟動子(-1 676、-1 519 bp)結(jié)合。見圖7。

        圖5 雙熒光酶報(bào)告系統(tǒng)分析ER-α對ApoM啟動子活性的影響

        圖6 EMSA驗(yàn)證ER-α與ApoM啟動子結(jié)合活性

        圖7 CHIP-PCR驗(yàn)證ER-α與ApoM啟動子區(qū)結(jié)合

        3 討 論

        作者前期研究發(fā)現(xiàn),雌激素通過ER能在體內(nèi)外上調(diào)ApoM的表達(dá),但具體機(jī)制尚不清楚[6]。ER分為2大類,即經(jīng)典的ER-α、ER-β及以G蛋白耦聯(lián)雌激素受體為代表的膜雌激素受體。本研究結(jié)果顯示,E2-BSA(不能通過細(xì)胞膜)能以劑量依賴性上調(diào)ApoM的表達(dá),說明雌激素可以通過膜表面的ER來調(diào)節(jié)ApoM的表達(dá),這與以前的觀點(diǎn)相反。以前的觀點(diǎn)認(rèn)為膜表面的ER只是介導(dǎo)雌激素快速的非基因效應(yīng)[7]。也有研究報(bào)道膜表面ER參與了基因的轉(zhuǎn)錄。定點(diǎn)突變了所有膜表面ER受體,但其他ER并不受影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),雌激素未能調(diào)節(jié)所有組織中相應(yīng)基因的表達(dá)[8]。作者通過應(yīng)用MPP分別與雌激素和E2-BSA共同作用于HepG2細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)MPP能抑制激素上調(diào)HepG2細(xì)胞ApoM mRNA效應(yīng)。這意味著ER-α介導(dǎo)了雌激素對ApoM轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)。ApoM是前β-高密度脂蛋白膽固醇(β-HDL)顆粒形成及成熟的必要條件[2],ApoM還可以與S1P結(jié)合,通過S1P受體維持內(nèi)皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能的完整性[4-5,9],因此,從ApoM方面也可以解釋雌激素抗動脈粥樣硬化的作用為了進(jìn)一步探討ER-α調(diào)節(jié)ApoM的分子機(jī)制,作者采用熒光素酶報(bào)告系統(tǒng)和點(diǎn)突變技術(shù)對ApoM啟動子區(qū)可能的ER-α結(jié)合位點(diǎn)進(jìn)行了檢測,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在ApoM 啟動子區(qū)(-GGTCA-,-1 580~-1 575 bp)是 ApoM轉(zhuǎn)錄活化的基本要素,且將該區(qū)域進(jìn)行點(diǎn)突變則消除了這一轉(zhuǎn)錄活性。經(jīng)典的雌激素反應(yīng)元件(GGTCA nnn TGACC,n代表任意堿基)是一回文結(jié)構(gòu)元件,這是由13個反向重復(fù)的堿基對,和在重復(fù)序列中的3個任意替換的堿基。本研究中發(fā)現(xiàn),ApoM啟動子GGTCA(-1 580~-1 575 bp)是經(jīng)典的雌激素反應(yīng)元件的半個部分。多項(xiàng)研究表明,雌激素是通過非完整或一半雌激素反應(yīng)元件來調(diào)節(jié)目的基因的表達(dá),這些反應(yīng)元件緊挨或遠(yuǎn)離一半回文結(jié)構(gòu)[10-12]。作者應(yīng)用EMSA和CHIPPCR進(jìn)一步驗(yàn)證ER-α通過蛋白-DNA交聯(lián)的方式與ApoM結(jié)合。其他核因子受體也通過與ApoM啟動子區(qū)結(jié)合來調(diào)節(jié)ApoM的表達(dá)[13-14]。VENTECLEF等[14]應(yīng)用DNA親和沉淀及染色質(zhì)免疫共沉淀技術(shù)證實(shí)在ApoM啟動子區(qū)(-33~-21 bp)存在肝核因子-4的結(jié)合位點(diǎn)。已有多項(xiàng)研究報(bào)道,ER-α與LDL和HDL紊亂緊密聯(lián)系,從而ER-α在脂代謝中的重要作用[15-17]。

        本研究結(jié)果顯示,雌激素通過ER-α與ApoM啟動子區(qū)結(jié)合位點(diǎn)結(jié)合,從而上調(diào)ApoM的表達(dá),為進(jìn)一步深入研究雌激素與ApoM的抗動脈粥樣硬化奠定了基礎(chǔ)。

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