劉愛東,王 箐 ,田 琳,劉曉紅,曾俊偉
(1.遵義醫(yī)學(xué)院 生理學(xué)教研室,貴州 遵義 563099;2.遵義醫(yī)學(xué)院 機(jī)能學(xué)實(shí)驗(yàn)室,貴州 遵義 563099)
有研究表明,高糖環(huán)境下腎臟細(xì)胞產(chǎn)生的氧化應(yīng)激(Oxidative stress,OS)損傷可能是糖尿病腎病(Diabetic nephropathy,DN)發(fā)病的重要機(jī)制之一[1-2],高糖誘導(dǎo)的線粒體呼吸鏈產(chǎn)生過(guò)量的活性氧自由基(Reactive oxygen radicals,ROS)是糖尿病并發(fā)癥的始動(dòng)環(huán)節(jié)[3-4]。硫化氫(Hydrogen sulfide,H2S)具有較強(qiáng)的抗炎癥、抗氧化應(yīng)激和抗細(xì)胞凋亡等功能[5]。硫氫化鈉(Sodium hydrosulfide,NaHS)是外源性H2S供體硫化鹽的一種,在溶液中可分離出Na+和HS-,隨后HS-和H+生成H2S。NaHS作為H2S供體已經(jīng)廣泛應(yīng)用于H2S的研究當(dāng)中。本研究的目的在于通過(guò)培養(yǎng)人腎小管上皮細(xì)胞HK-2,觀察NaHS在低糖條件和高糖誘導(dǎo)下對(duì)腎小管上皮細(xì)胞氧化應(yīng)激的影響。
1.1 材料與儀器 人腎小管上皮細(xì)胞株HK-2購(gòu)于上海生命科學(xué)院;NaHS(純度72%)購(gòu)于Sigma公司;DMEM(Dulbecco's modified eagle medium)細(xì)胞培養(yǎng)基和胎牛血清(Fetal bovine serum,FBS)購(gòu)于Hyclone公司;青鏈雙抗購(gòu)于上海生工生物工程有限公司;D-葡萄糖(純度≥99.5%)購(gòu)于阿拉丁試劑公司,二甲基亞砜(Dimethyl sulfoxide,DMSO)購(gòu)于Sigma公司;超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase,SOD)、丙二醛(Malondialdehyde;Malonic dialdehyde,MDA)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(Glutathione peroxidase,GSH-px)、過(guò)氧化氫(Hydrogen peroxide,H2O2)試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所;超氧化物陰離子熒光探針(Dihydroethidium,DHE熒光探針)購(gòu)于上海碧云天生物技術(shù)有限公司。
細(xì)胞培養(yǎng)箱 (美國(guó)Thermo,型號(hào):Labserv CO-150);超凈工作臺(tái)(蘇州安泰科技有限公司);離心機(jī)(德國(guó)Eppendorf公司,型號(hào):5418);分光光度計(jì)(BIO-RAD公司);恒溫水浴(Leica公司,型號(hào):HI1210);激光共聚焦顯微鏡(Leica公司) 。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 取凍存的HK-2細(xì)胞,37 ℃快速解凍后,1 200 rpm離心5 min,用DMEM培養(yǎng)基清洗2次后用DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基重懸再離心;加入完全培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),每天換一次培養(yǎng)基;待細(xì)胞達(dá)70%~80%匯合后接種于6孔培養(yǎng)板,每孔1 mL,37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組與處理 待同步化培養(yǎng)24 h后,將細(xì)胞分為8 組:①低糖對(duì)照組(5.5 mmol/L D-葡萄糖);②低糖+NaHS低劑量組(5.5 mmol/L D-葡萄糖+NaHS 50 μmol/L);③低糖+NaHS中劑量組(5.5 mmol/L D-葡萄糖+NaHS 100 μmol/L);④低糖+NaHS高劑量組(5.5 mmol/L D-葡萄糖+NaHS 200 μmol/L);⑤高糖組(40 mmol/L D-葡萄糖);⑥高糖+NaHS低劑量組(40 mmol/L D-葡萄糖+NaHS 50 μmol/L);⑦高糖+NaHS中劑量組(40 mmol/L D-葡萄糖+NaHS 100 μmol/L);⑧高糖+NaHS高劑量組(40 mmol/L D-葡萄糖+NaHS 200 μmol/L);每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔。于37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)處理24、48 h后,分別收集各組細(xì)胞和培養(yǎng)液用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.3 SOD活性、MDA含量、GSH-px活力的測(cè)定 取各組于24、48 h收集的上清液,用比色法測(cè)各組培養(yǎng)液中的SOD活性、MDA含量和GSH-px活力。
1.2.3.1 檢測(cè)SOD活性 按照說(shuō)明書的具體步驟加樣混勻,室溫放置10 min,于波長(zhǎng)550 nm處,1 cm光徑比色皿,蒸餾水調(diào)零,比色。代入計(jì)算公式測(cè)得細(xì)胞培養(yǎng)液中SOD活性(U/mL)。
1.2.3.2 檢測(cè)MDA含量 按照說(shuō)明書的具體操作步驟加樣后漩渦混勻器混勻,試管口用保鮮膜扎緊,用針頭刺一小孔,95 ℃水浴40 min,取出后流水冷卻,532 nm處,1 cm光徑,雙蒸水調(diào)零,測(cè)各管吸光值。依照計(jì)算公式測(cè)得細(xì)胞培養(yǎng)液中MDA(nmol/mL)。
1.2.3.3 檢測(cè)GSH-px活力 第一步進(jìn)行酶促反應(yīng),按照說(shuō)明書的具體操作步驟加樣后混勻,3 500 rpm離心10 min,取上清1 mL作顯色反應(yīng)。第二步顯色反應(yīng),按照說(shuō)明書的具體操作步驟加樣后混勻,室溫靜置15 min后,波長(zhǎng)412 nm,1 cm光徑,雙蒸水調(diào)零,測(cè)定各管吸光值。代入公式計(jì)算GSH-px活力(nmol/mL)。
1.2.4 比色法測(cè)各組培養(yǎng)液中的H2O2水平 取各組于 24、48 h收集的上清液,按照說(shuō)明書的具體操作步驟加樣混勻,于405 nm處,1 cm光徑,蒸餾水調(diào)零,測(cè)各管吸光值。帶入計(jì)算公式得出培養(yǎng)液中的各組培養(yǎng)液中H2O2水平(mmol/mL)。
1.2.5 激光共聚焦觀察各組ROS水平 待細(xì)胞長(zhǎng)滿后接種于96孔培養(yǎng)板,每孔100 μL,37 ℃,5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h,觀察細(xì)胞密度達(dá)80%。在各組加藥24、48 h后吸棄培養(yǎng)液,加入濃度為10 μmol/L的DHE熒光探針溶液,在37 ℃細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)孵育20 min后,用無(wú)血清細(xì)胞培養(yǎng)液洗滌細(xì)胞3次,以充分去除未進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的DHE。用激光共聚焦顯微觀察細(xì)胞熒光強(qiáng)度并拍照。
2.1 測(cè)定細(xì)胞培養(yǎng)液SOD活性、MDA含量以及GSH-px活力結(jié)果 高糖組24、48 h的SOD活性和GSH-px活力較低糖對(duì)照組下降(P<0.01,P<0.05),而MDA含量增高(P<0.05)。細(xì)胞培養(yǎng)24、48 h,低糖+NaHS低、中、高劑量組SOD活性和GSH-px活力較低糖對(duì)照組增高(P<0.05),MDA含量降低(P<0.05);高糖+NaHS低、中、高劑量組SOD活性和GSH-px活力較高糖組增高(P<0.01,P<0.05),MDA含量降低(P<0.05,見表1)。
組別SOD活性(U/mL) 24 h 48 hMDA含量(nmol/mL)24 h 48 hGSH-px活力(nmol/mL)24 h 48 h 低糖對(duì)照13.555±0.47113.762±0.7888.215±0.06110.326±0.16025.550±0.70328.038±0.760低糖+NaHS低劑量14.560±0.144*14.771±0.3908.509±0.029*10.705±0.185#30.045±0.673*32.961±0.494#低糖+NaHS中劑量16.488±0.499*16.694±0.636#9.443±0.135*11.776±0.318#30.675±1.576*33.680±1.943#低糖+NaHS高劑量17.355±0.142*17.494±0.259#9.514±0.083*10.653±0.154#43.154±1.384*47.366±1.482#高糖對(duì)照 5.178±0.543** 5.633±1.081##17.164±0.173#21.087±0.304#15.324±0.959*16.808±0.922#高糖+NaHS低劑量11.424±0.227△△11.791±0.449▲▲15.652±0.128△19.331±0.272▲21.555±1.327△23.647±1.359▲高糖+NaHS中劑量14.143±0.650△△15.148±1.660▲▲11.996±0.075△19.923±0.358▲33.253±1.432△36.509±1.677▲高糖+NaHS高劑量12.985±0.221△△13.139±0.499▲▲13.029±0.121△16.089±0.277▲27.829±1.516△30.538±1.800▲
與24 h低糖對(duì)照組比較,*:P<0.05,**:P<0.01; 與48 h低糖對(duì)照組比較,#:P<0.05,##:P<0.01;與24 h高糖對(duì)照組比較,△:P<0.05,△△:P<0.01; 與48 h高糖對(duì)照組比較,▲:P<0.05,▲▲:P<0.01。
2.2 測(cè)定細(xì)胞培養(yǎng)液H2O2水平的結(jié)果 高糖組24、48 h的H2O2水平較低糖對(duì)照組明顯增加(P<0.01)。細(xì)胞培養(yǎng)24、48 h,低糖+NaHS低、中、高劑量組H2O2水平與低糖對(duì)照組相比,以中劑量的NaHS對(duì)H2O2水平降低效果明顯(P<0.05);高糖+NaHS低、中、高劑量組H2O2水平與高糖組相比,有不同程度的降低,其中以中劑量的NaHS對(duì)H2O2水平降低效果更為明顯 (P<0.05,見表2)。
組別H2O2水平(mmol/L) 24 h 48 h低糖對(duì)照125.005±4.035190.288±9.658低糖+NaHS低劑量130.533±4.462198.428±9.600低糖+NaHS中劑量 115.474±4.340*176.431±15.984#低糖+NaHS高劑量126.999±4.141 193.233±10.332高糖對(duì)照244.388±7.969**369.031±19.720##高糖+NaHS低劑量230.388±7.480 345.516±17.980高糖+NaHS中劑量 160.787±21.396△242.361±18.870▲高糖+NaHS高劑量199.845±6.287△300.587±15.490▲
與24 h低糖對(duì)照組比較,*:P<0.05,**:P<0.01; 與48 h低糖對(duì)照組比較,##:P<0.01;與24 h高糖對(duì)照組比較,△:P<0.05; 與48 h高糖對(duì)照組比較,▲:P<0.05。
2.3 測(cè)定各組ROS水平的結(jié)果 高糖對(duì)照組24、48 h的ROS水平較低糖對(duì)照組明顯增加。細(xì)胞培養(yǎng)24、48 h,低糖+NaHS低、中、高劑量組ROS水平與低糖對(duì)照組相比,均有不同程度的降低,其中以中劑量的NaHS對(duì)ROS水平降低效果較明顯;高糖+NaHS低、中、高劑量組ROS水平與高糖對(duì)照組相比,也有不同程度的降低,其中以中劑量的NaHS對(duì)ROS水平降低效果較明顯 (見圖1~2)。
A:低糖對(duì)照組; B:低糖+NaHS低劑量組; C:低糖+NaHS中劑量組; D:低糖+NaHS高劑量組; E:高糖對(duì)照組; F:高糖+NaHS低劑量組; G:高糖+NaHS中劑量組; H:高糖+NaHS高劑量組。圖1 細(xì)胞培養(yǎng)24 h高糖及NaHS對(duì)各組HK-2細(xì)胞ROS水平影響
A:低糖對(duì)照組; B:低糖+NaHS低劑量組; C:低糖+NaHS中劑量組; D:低糖+NaHS高劑量組; E:高糖對(duì)照組; F:高糖+NaHS低劑量組; G:高糖+NaHS中劑量組; H:高糖+NaHS高劑量組。圖2 細(xì)胞培養(yǎng)48 h高糖及NaHS對(duì)各組HK-2細(xì)胞ROS水平影響
DN是糖尿病嚴(yán)重的微血管并發(fā)癥,也是導(dǎo)致慢性腎功能衰竭的主要原因。高血糖是公認(rèn)的DN中起關(guān)鍵作用的因子,腎小管結(jié)構(gòu)或功能的損傷在早期糖尿病腎病的形成中具有重要作用[6]。高血糖環(huán)境下,可引起腎組織發(fā)生氧化應(yīng)激,損傷腎小管上皮細(xì)胞[7]。氧化應(yīng)激反應(yīng)產(chǎn)生的ROS在DN發(fā)生和發(fā)展中起關(guān)鍵性作用[8]。在正常情況下,適量的 ROS在細(xì)胞內(nèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過(guò)程中發(fā)揮作用,而當(dāng)細(xì)胞內(nèi)的ROS水平異常升高時(shí),氧自由基的清除劑SOD不能及時(shí)將過(guò)量的ROS 清除,導(dǎo)致細(xì)胞膜上的脂質(zhì)發(fā)生過(guò)氧化,引起細(xì)胞膜通透性的改變,進(jìn)而引起氧化損傷,并可引起細(xì)胞內(nèi)信號(hào)傳遞發(fā)生紊亂,從而促進(jìn)細(xì)胞凋亡[9-10]。
SOD能清除超氧陰離子自由基(O2 -) ,其活力的高低直接反應(yīng)了機(jī)體清除自由基的能力,GSH-px 是機(jī)體內(nèi)廣泛存在的一種重要的過(guò)氧化物分解酶,保護(hù)細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)及功能不受過(guò)氧化物的損害,反映機(jī)體的抗氧化能力。MDA 是過(guò)氧化脂質(zhì)分解產(chǎn)物,其含量測(cè)定常與 SOD 的測(cè)定相互配合,MDA 的濃度和SOD 活力可作為膜脂質(zhì)過(guò)氧化損害程度的主要標(biāo)志。高糖環(huán)境可引起內(nèi)源性H2S產(chǎn)生減少,導(dǎo)致細(xì)胞發(fā)生病理改變,補(bǔ)充外源性H2S或(和)內(nèi)源性H2S的增多有效抑制了DN的病理改變,抑制細(xì)胞凋亡[11~13]。H2O2作為細(xì)胞內(nèi)信號(hào)分子可進(jìn)行信號(hào)傳導(dǎo),在生理狀況較低水平可模擬生長(zhǎng)因子的某些效應(yīng),如增殖和(或)存活。但H2O2濃度的急劇增高可引起細(xì)胞氧化應(yīng)激、DNA氧化及損傷,繼而發(fā)生細(xì)胞突變和凋亡[14]。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示高糖培養(yǎng)HK-2 細(xì)胞24、48 h后,細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生ROS 增多,培養(yǎng)液中H2O2水平增高,MDA含量逐漸增高,而 SOD 活性降低、GSH-px活力減退,說(shuō)明高糖誘發(fā)細(xì)胞處于氧化應(yīng)激狀態(tài),表明氧化應(yīng)激參與了糖尿病腎病的發(fā)生。給予不同濃度的NaHS,可減少高糖環(huán)境下ROS 生成,減少H2O2的產(chǎn)生,降低MDA 含量,提高SOD活性和GSH-px活力,對(duì)腎小管起一定的保護(hù)作用。在本實(shí)驗(yàn)研究中,還發(fā)現(xiàn)外源性H2S可減少低糖條件下ROS 生成,減少低糖條件下的H2O2的產(chǎn)生,降低MDA 含量,提高SOD 活性以及GSH-px活力。在以往的實(shí)驗(yàn)結(jié)果還顯示外源性H2S可抑制低糖和高糖條件下的HK-2細(xì)胞的凋亡[13]。
綜上所述,無(wú)論在低糖條件還是高糖環(huán)境,外源性H2S可通過(guò)減輕腎小管細(xì)胞的氧化損傷,抑制細(xì)胞凋亡而發(fā)揮其對(duì)腎臟的保護(hù)作用。