姜志艷, 楊慧楠, 邵學(xué)勤
(內(nèi)蒙古科技大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,內(nèi)蒙古包頭 014010)
蒙古黃芪[Astragalimembranaceus(Fisch.) Bge. var.Mongholicus(Bge.) Hsiao ]為豆科黃芪屬,是內(nèi)蒙古特色藥用植物,具有很好的藥用價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值。由于目前黃芪野生資源稀缺,大多進(jìn)行人工栽培[1]。近些年來,對(duì)藥用植物黃芪的研究主要集中在其藥理活性成分分析、有效成分提取等[2],而有關(guān)黃芪的利用分子標(biāo)記輔助育種、數(shù)量性狀基因座(quantitative trait locus,簡稱QTL)定位、構(gòu)建分子遺傳連鎖圖譜和進(jìn)行黃芪種質(zhì)遺傳多樣性研究的相關(guān)信息較少。
擴(kuò)增片段長度多態(tài)性(amplified fragment length polymorphism,簡稱AFLP)具有多態(tài)性高、DNA用量少、無需預(yù)知基因組序列信息、穩(wěn)定性好等優(yōu)點(diǎn),該分子標(biāo)記技術(shù)被廣泛應(yīng)用于植物遺傳育種、種質(zhì)資源研究[3]、遺傳多樣性分析[4-6]、構(gòu)建遺傳圖譜(尤其是高密度分子圖譜)[7]及基因定位[8]等方面。目前,已有研究者利用簡單重復(fù)序列標(biāo)記(simple sequence repeat,簡稱SSR)、隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA標(biāo)記(random amplified polymorphic DNA,簡稱RAPD)、相關(guān)序列擴(kuò)增多態(tài)性(sequence-related amplified polymorphism,簡稱SRAP)等分子標(biāo)記技術(shù)對(duì)黃芪進(jìn)行了遺傳多樣性研究,王敖利用SSR分子標(biāo)記對(duì)蒙古黃芪進(jìn)行了遺傳多樣性研究[9],錢丹等利用SRAP分子標(biāo)記技術(shù)分析了蒙古黃芪的親緣關(guān)系[10]。但目前尚少見有關(guān)藥用植物黃芪AFLP分子標(biāo)記分析及反應(yīng)體系相關(guān)研究的報(bào)道。為此,本研究以蒙古黃芪為試驗(yàn)材料,對(duì)AFLP分析過程中的影響因子進(jìn)行研究,建立優(yōu)化黃芪AFLP分析體系。以期為從分子水平上對(duì)黃芪進(jìn)行遺傳多樣性研究、遺傳連鎖圖譜構(gòu)建、分子標(biāo)記輔助育種等研究奠定理論基礎(chǔ)。
供試材料為蒙古黃芪,黃芪幼葉于2017年7月采集于包頭醫(yī)學(xué)院內(nèi)蒙古特色藥用植物繁育種植基地。-80 ℃保存?zhèn)溆茫S芪組培苗于室內(nèi)培養(yǎng)。
1.2.1 基因組DNA提取及檢測 對(duì)黃芪單株葉片進(jìn)行DNA的提取,黃芪基因組DNA提取采用植物基因組DNA提取試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司],用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測所提取DNA的純度和完整性,用紫外可見分光光度計(jì)測定DNA的濃度和純度,保存于-20 ℃冰箱。
1.2.2 基因組DNA的酶切-連接 使用限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ與MseⅠ(購自NEB)對(duì)黃芪基因組DNA進(jìn)行雙酶切,同時(shí)加入EcoRⅠ/MseⅠ接頭,用T4DNA連接酶進(jìn)行連接作為預(yù)擴(kuò)增模板,酶切-連接一步完成。反應(yīng)總體積為 20.0 μL,含樣品DNA 2 μL(50 ng/μL),EcoRⅠ 0.2 μL (15 U/μL),MseⅠ0.3 μL(10 U/μL),BSA 0.3 μL(10 mg/mL),EcoRⅠ/MseⅠ(5 μmol/μL)接頭各0.4 μL,10×NEB reaction buffer 2.0 μL,10 mmol/L ATP 0.4 μL,T4連接酶(350 U/μL)0.8 μL,加ddH2O補(bǔ)足總體積至20.0 μL。分別設(shè)定酶切-連接時(shí)間為12、14、16 h,37 ℃溫浴。取出后保存于-20 ℃冰箱。
1.2.3 AFLP模板DNA的預(yù)擴(kuò)增 反應(yīng)總體系為20.0 μL,包括酶切-連接產(chǎn)物4.0 μL,10×PCR-buffer 2.0 μL,MgCl2(25 mmol/L)1.0 μL,TaqDNA聚合酶(5 U/μL)0.2 μL,dNTPs(2 mmol/L)1.8 μL,引物E00(5′-GACTGCGTACCAAT TCA-3′)、M00(5′-GATGAGTCCTGAGTAA-3′)(各 50 μmol/L),用ddH2O補(bǔ)足總體積至20.0 μL,離心混勻進(jìn)行PCR反應(yīng)。PCR擴(kuò)增程序:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,56 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,30個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min,4 ℃保溫。
1.2.4 AFLP模板DNA的選擇性擴(kuò)增 選擇性擴(kuò)增反應(yīng)采用表1中E3/M3引物組合將預(yù)擴(kuò)產(chǎn)物分別稀釋10、20、30、40倍進(jìn)行選擇性擴(kuò)增。反應(yīng)總體系20.0 μL,包括稀釋預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物2.5 μL,10× buffer(含Mg2+)1.5 μL,dNTPs(2 mmol/L)2.0 μL,Taq酶(5 U/μL)0.15 μL,選擇性引物(50 ng/μL) 各1.0 μL,用ddH2O補(bǔ)足總體積至20.0 μL。PCR擴(kuò)增程序:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,65 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,13個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)的退火溫度下降0.7 ℃;然后 94 ℃ 30 s,56 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,26個(gè)循環(huán);每個(gè)循環(huán)增加1 s,最后 72 ℃ 10 min。
表1 篩選AFLP分子標(biāo)記的引物序列
1.2.5 變性聚丙烯酰胺凝膠電泳及銀染 在PCR產(chǎn)物中加入1/3體積的變性劑,95 ℃變性5 min,于6%變性聚丙烯酰胺凝膠中,恒定功率70 W,預(yù)電泳30 min,上樣量為6 μL,電泳2 h后,進(jìn)行顯色、掃描膠板。
中藥植物高質(zhì)量基因組DNA的提取對(duì)其后續(xù)試驗(yàn)的進(jìn)行發(fā)揮著極為重要的作用。植物基因組DNA的提取受植物的組織材料、部位、形態(tài)特征等影響,例如有的中藥植物中含有多糖、酚等次生代謝物會(huì)直接影響DNA提取的純度,所以需要根據(jù)試驗(yàn)材料的實(shí)際情況,科學(xué)、合理地采用DNA提取方法。本研究采用改良的十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)法[5],從含多糖、酚的蒙古黃芪中簡便、快速地提取DNA,為分子遺傳標(biāo)記應(yīng)用于黃芪的種質(zhì)資源研究提供基礎(chǔ)[2]。
由圖1可見,提取的黃芪基因組DNA經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,條帶明亮,無脫尾彌散現(xiàn)象,無RNA條帶,提取的基因組比較完整,用紫外可見分光光度計(jì)檢測D260 nm/D280 nm值都在1.8~2.0,可用于黃芪AFLP分析。
本研究對(duì)黃芪基因組進(jìn)行酶切連接采用了多種試驗(yàn)方法,關(guān)于限制性核酸內(nèi)切酶組合EcoRⅠ/MseⅠ、PstⅠ/MseⅠ的選擇與酶切、酶連分步法和一步法均有報(bào)道[11]。經(jīng)多次試驗(yàn)比較,最終確立本試驗(yàn)中AFLP體系的建立采用EcoRⅠ/MseⅠ雙酶切,酶切-連接一步完成,試驗(yàn)對(duì)酶切連接時(shí)間作了不同設(shè)置,處理時(shí)間為12、14、16 h(圖2)。得出最佳的酶切-連接時(shí)間為16 h。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測酶切-連接時(shí)間為16 h的產(chǎn)物在100~1 500 bp范圍內(nèi)出現(xiàn)均勻、清晰的彌散帶,證明酶切徹底,可以為AFLP研究提供理想的模板,試驗(yàn)時(shí)間得到了縮減,試驗(yàn)效率得到了提高。
預(yù)擴(kuò)增反應(yīng)是以酶切-連接產(chǎn)物作為模板,用引物 E0/P0 進(jìn)行預(yù)擴(kuò)增,在進(jìn)行選擇性擴(kuò)增之前,預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物需要進(jìn)行一定量的稀釋,本研究中將預(yù)擴(kuò)增產(chǎn)物稀釋倍數(shù)分別設(shè)為5、10、15、20、25、30、40倍,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測可知,不同稀釋倍數(shù)的模板即模板濃度對(duì)擴(kuò)增效果并無明顯影響(圖3),經(jīng)過后續(xù)選擇性擴(kuò)增試驗(yàn)也證實(shí)了這一點(diǎn),為保證選擴(kuò)產(chǎn)物量的充分,最終確定將預(yù)擴(kuò)產(chǎn)物稀釋20倍。
根據(jù)接頭序列互補(bǔ)原則設(shè)計(jì)選擇性擴(kuò)增引物,選擇性擴(kuò)增引物是在預(yù)擴(kuò)增引物3′端隨機(jī)增加2個(gè)或3個(gè)選擇性堿基來進(jìn)行設(shè)計(jì)的,在AFLP分子標(biāo)記中的引物是隨機(jī)組合的,不同的引物組合成不同的引物對(duì),用于選擇性擴(kuò)增。本試驗(yàn)中黃芪AFLP分析所用36對(duì)引物分別采用E/M引物“2+2”“2+3”“3+3”(數(shù)字2、3表示引物最后的堿基數(shù))組合進(jìn)行篩選得到。其中5對(duì)引物組合(E-AG/M-CGT、E-AT/M-CTG、E-GA/M-CAA、E-TC/M-CAA、E-GT/M-CTG)表現(xiàn)出多態(tài)性,多態(tài)性比率80.5%,詳見圖4、圖5。
AFLP分子標(biāo)記中需要進(jìn)行大量的凝膠電泳試驗(yàn),凝膠電泳后膠板的顯色費(fèi)時(shí)、費(fèi)力,同時(shí)還會(huì)受到諸多因素的影響,如電泳電壓的高低、顯影液的溫度、銀染的時(shí)間、配制膠板的質(zhì)量、試劑尿素質(zhì)量的好壞等,都會(huì)對(duì)銀染結(jié)果產(chǎn)生影響。本試驗(yàn)參考多種銀染方法,進(jìn)行多次嘗試與改進(jìn),最終得到優(yōu)化的銀染方法,用6%變性聚丙烯酰胺凝膠電泳、恒定功率為70 W,預(yù)電泳時(shí)間為30 min,預(yù)電泳時(shí)間不易過短,電泳時(shí)間為120 min。具體步驟如下:(1)固定。將玻璃板從電泳槽中取出,拔出梳子,輕輕將長板取下,放入2 L蒸餾水+20 mL冰乙酸+200 mL無水乙醇溶液中,輕輕搖動(dòng)15~20 min。(2)漂洗。在2 L蒸餾水中漂洗2次,每次2~3 min。(3)染色。在2 L蒸餾水中加入4 g硝酸銀,染色15 min。(4)顯影。在2 L蒸餾水中加入60 g氫氧化鈉、10 mL甲醛顯影至條帶清晰為止。(5)中止。當(dāng)條帶不再清晰時(shí),將板取出放入最初配好的固定液中,中止2 min。(6)漂洗。在2 L蒸餾水中漂洗2 min,自然風(fēng)干,拍照。
黃芪作為內(nèi)蒙古的特色藥用經(jīng)濟(jì)植物,被廣泛應(yīng)用在醫(yī)藥中,但目前野生黃芪資源稀缺,所以大多采用人工栽培的方法培育黃芪。近年來,國內(nèi)外對(duì)黃芪的研究除藥理活性成分、有效成分提取外,開始從DNA分子水平上研究蒙古黃芪的道地性等并取得了一些進(jìn)展,而對(duì)黃芪分子標(biāo)記輔助育種、QTL定位、構(gòu)建遺傳圖譜的研究則鮮有報(bào)道。本研究所探討的AFLP分子標(biāo)記在黃芪上的應(yīng)用,將會(huì)為蒙古黃芪遺傳多樣性研究、圖譜構(gòu)建等奠定基礎(chǔ)。
本研究采用AFLP分子標(biāo)記技術(shù)對(duì)蒙古黃芪進(jìn)行分析,結(jié)果表明有一定的可行性,擴(kuò)增條帶多、重復(fù)性好,為降低試驗(yàn)成本、縮短試驗(yàn)周期、提高試驗(yàn)效率,在體系優(yōu)化過程中,采用EcoRⅠ/MseⅠ對(duì)黃芪基因組DNA進(jìn)行雙酶切,且酶切-連接采用一步法完成,AFLP分子標(biāo)記雖然操作復(fù)雜、對(duì)試驗(yàn)技術(shù)要求高,但目前仍是一種十分理想、有效的分子標(biāo)記方法[11]。
對(duì)于某一種具體的試驗(yàn)材料藥用植物黃芪來說,并不是所有引物對(duì)組合都是適宜的,所以大量的試驗(yàn)工作是必須篩選出適合某種具體藥用植物的引物對(duì)。在進(jìn)行大量的引物篩選過程中發(fā)現(xiàn),不同引物對(duì)組合之間對(duì)于選擇性擴(kuò)增反應(yīng)結(jié)果差異很大,有的引物對(duì)擴(kuò)增出的主帶多而清晰,差異條帶也多,而有的引物對(duì)擴(kuò)增出的條帶數(shù)較少,有的引物對(duì)擴(kuò)增出的差異條帶也很少等。本研究中應(yīng)用選出的擴(kuò)增條帶信號(hào)強(qiáng)、重復(fù)性好的5對(duì)引物組合對(duì)部分黃芪植株進(jìn)行了分析。試驗(yàn)結(jié)果表明,AFLP是標(biāo)記效率最高的分子標(biāo)記之一,但其技術(shù)操作復(fù)雜,影響因素很多,尤其是對(duì)該植物基因組信息了解得不是很清楚的情況下,一般選用該植物的同科近緣植物的AFLP引物進(jìn)行篩選,是一種快速、有效的引物篩選方法。本試驗(yàn)中所篩選的引物來自黃芪同科不同屬植物大豆。