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        姜多糖提取方法工藝優(yōu)化及分析

        2018-11-02 09:44:18廖登未黃德春程抒劼曹崇江陳貴堂
        食品與機(jī)械 2018年9期
        關(guān)鍵詞:冰浴透射電鏡水浸

        廖登未 黃德春 程抒劼 曹崇江 陳貴堂

        (中國(guó)藥科大學(xué)工學(xué)院,江蘇 南京 211198)

        姜(ZingiberofficinaleRosc)又稱(chēng)百辣云、鮮生姜、姜根等,屬姜科植物,主要分布于中國(guó)四川、貴州、福建、湖北和兩廣等地[1]。現(xiàn)代工藝研究發(fā)現(xiàn),姜具有抗腫瘤[2-3]、抗氧化[4-5]和抗炎止痛[6]等藥理作用。此外,姜中富含多糖類(lèi)物質(zhì),且姜多糖具有抗氧化[7]、消炎抑菌[8]和抗疲勞[9]等生物活性。

        在多糖的提取研究中,目前多采用熱水浸提法、超聲波提取法、酶提取法和微波提取等[10]方法。研究表明,即使同種原料,采用不同提取方法所得的多糖,其結(jié)構(gòu)、性質(zhì)、單糖成分以及生物活性均有不同。比如,Zhang等[11]在生姜多糖的研究中,采用了酸式、中性以及堿式水提法,發(fā)現(xiàn)3種不同的提取方法得到的生姜多糖具有不同的抗氧化活性;韓冬屏等[12]研究顯示超聲波輔助提取法所得姜多糖得率和DPPH·的清除能力均優(yōu)于微波輔助提取和傳統(tǒng)熱水提取法的;在生姜粗、精多糖抗氧化試驗(yàn)中,王蕓等[13]采用了水提法、超聲輔助酶解法以及酶解法,得出生姜粗多糖的還原能力大小關(guān)系為:超聲輔助酶解法>酶解法>水提法,而精多糖僅對(duì)DPPH·具有顯著影響。

        透射電鏡具有分辨率高、放大倍數(shù)高、信息立體化等優(yōu)勢(shì),近年來(lái)備受科研工作者的青睞。在不同方法提取姜多糖研究中,目前尚未有文獻(xiàn)報(bào)道利用透射電鏡觀察姜渣細(xì)胞破損情況,分析影響姜多糖得率的試驗(yàn)研究。因此,本研究擬采用熱水浸提法、超聲波冰浴提取法、復(fù)合酶提取法3種方法對(duì)姜多糖進(jìn)行分離提取,利用透射電鏡和紫外-可見(jiàn)光分光光度計(jì)對(duì)姜渣和姜多糖進(jìn)行掃描分析,對(duì)比不同提取方法對(duì)姜多糖提取效果的影響,擬為進(jìn)一步深入研究不同方法所得姜多糖的結(jié)構(gòu)、物化特性以及生物學(xué)活性提供試驗(yàn)基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        干姜片:產(chǎn)自云南,亳州市常富藥業(yè)有限公司,采用50 ℃ 減壓干燥,粉碎過(guò)篩60目備用;

        纖維素酶(1 800 U/mg)、果膠酶(1 000 U/mg):上海金穗生物科技有限公司;

        木瓜蛋白酶:3 U/mg,阿拉丁試劑(上海)有限公司;

        其它試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>

        搖擺式高速中藥粉碎機(jī):DFY-500型,溫嶺市林大機(jī)械有限公司;

        紫外—可見(jiàn)分光光度計(jì):TU-1901型,北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;

        離心機(jī):LXJ-IIB型,上海安亭科學(xué)儀器廠;

        超聲波細(xì)胞粉碎機(jī):JY-92IIN型,寧波新芝生物科技股份有限公司;

        真空冷凍干燥機(jī):PD-1C-50型,北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;

        分析天平:ATX224型,日本島津儀器公司;

        旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器:RE-5205型,上海亞榮生化儀器廠;

        透射電鏡:HT7700型,日本日立公司。

        1.2 試驗(yàn)方法

        1.2.1 提取工藝流程

        姜粉→提取(熱水浸提、超聲波冰浴提取、復(fù)合酶酶解)→離心(4 000 r/min,20 min)→過(guò)濾,取濾液,50 ℃旋蒸至原濾液1/4→sevag試劑(正丁醇與氯仿體積比4∶1)除蛋白→加入4倍體積無(wú)水乙醇靜置→離心(4 000 r/min,10 min),得沉淀→丙酮、無(wú)水乙醇、乙醚各洗滌2次→減壓干燥,40 ℃→多糖成品

        1.2.2 熱水浸提法

        (1) 單因素試驗(yàn):探究熱水浸提時(shí)間、溫度、液料比對(duì)姜多糖提取率的影響。固定提取時(shí)間2 h,提取溫度70 ℃,設(shè)置液料比分別為10∶1,15∶1,20∶1,25∶1,30∶1,35∶1(mL/g);固定提取時(shí)間2 h,液料比20∶1 (mL/g),設(shè)置提取溫度分別為50,60,70,80,90,100 ℃;固定提取溫度90 ℃,液料比20∶1 (mL/g),設(shè)置提取時(shí)間分別為1,2,3,4,5,6 h。

        (2) 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì):在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,以多糖提取率為考察對(duì)象,采用正交試驗(yàn)分析,優(yōu)化姜多糖最優(yōu)提取工藝參數(shù)。

        1.2.3 超聲波冰浴提取法

        (1) 單因素試驗(yàn):探究超聲時(shí)間、功率、液料比對(duì)姜多糖提取率的影響。固定液料比20∶1 (mL/g),超聲功率200 W,設(shè)定超聲時(shí)間分別為20,25,30,35,40,45 min;固定液料比20∶1 (mL/g),超聲時(shí)間35 min,設(shè)定超聲功率分別為100,200,300,400,500,600 W;固定超聲時(shí)間35 min,超聲功率500 W,設(shè)定液料比分別為10∶1,15∶1,20∶1,25∶1,30∶1,35∶1 (mL/g)。

        (2) 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì):在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,以多糖提取率為檢測(cè)指標(biāo),采用正交試驗(yàn)分析,優(yōu)化姜多糖最優(yōu)提取工藝參數(shù)。

        1.2.4 復(fù)合酶解法

        (1) 單因素試驗(yàn):在纖維素酶用量63 000 U/g·底物,果膠酶用量20 000 U/g·底物,木瓜蛋白酶用量62.5 U/g·底物條件下,探究酶解條件對(duì)姜多糖提取效果的影響。固定酶解時(shí)間2 h,酶解溫度50 ℃,pH 5.0,設(shè)定液料比分別為15∶1,20∶1,25∶1,30∶1,35∶1,40∶1 (mL/g);在酶解時(shí)間2 h,酶解溫度50 ℃,液料比25∶1 (mL/g)條件下,設(shè)定pH分別為3.0,4.0,5.0,6.0,7.0,8.0;固定酶解時(shí)間2 h,液料比25∶1 (mL/g),pH 6.0,設(shè)定酶解溫度分別為30,40,50,60,70,80 ℃;固定液料比25∶1 (mL/g),pH 6.0,酶解溫度50 ℃,設(shè)定酶解時(shí)間分別為1.0,1.5,2.0,2.5,3.0,3.5 h。

        (2) 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì):在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,以多糖提取率為考察對(duì)象,采用正交試驗(yàn)分析,優(yōu)化姜多糖最優(yōu)提取工藝參數(shù)。

        1.2.5 多糖及蛋白含量測(cè)定 根據(jù)文獻(xiàn)[14],采用苯酚-硫酸法測(cè)定多糖含量,考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定蛋白含量,并對(duì)計(jì)算方法進(jìn)行如下修改:

        (1) 多糖提取率:按式(1)計(jì)算。

        (1)

        式中:

        R1——多糖提取率,%;

        c1——提取液中多糖濃度,g/mL;

        V——提取液體積,mL;

        m——原料質(zhì)量,g。

        (2) 多糖得率:按式(2)計(jì)算。

        (2)

        式中:

        R2——多糖得率,%;

        m1——多糖成品質(zhì)量,g;

        m——原料質(zhì)量,g。

        (3) 蛋白含量:按式(3)計(jì)算。

        (3)

        式中:

        R3——蛋白含量,%;

        c2——提取液中蛋白濃度,g/mL;

        V——提取液體積,mL;

        m——原料質(zhì)量,g。

        1.2.6 多糖紫外光譜掃描 將樣品配成1.0 mg/mL的多糖溶液,在波長(zhǎng)200~360 nm內(nèi)進(jìn)行光譜掃描,檢測(cè)260,280 nm 處是否有核酸和蛋白質(zhì)的特征吸收峰[13]。

        1.2.7 姜渣透射電鏡觀察 收集經(jīng)3種不同方法提取后的姜提取殘?jiān)?,凍干,精確稱(chēng)量10.0 mg凍干粉和100 mL無(wú)水乙醇均勻混合。選用300目的高質(zhì)量銅網(wǎng),用鑷子小心取出銅網(wǎng),將膜面朝上,并輕放于濾紙上,用移液槍取20 μL待測(cè)液滴于銅網(wǎng)上,待其自然風(fēng)干。采用透射電鏡,在100 kV加速電壓,線分辨率0.14 nm條件下觀察細(xì)胞壁破碎情況。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 熱水浸提法

        2.1.1 熱水浸提法正交試驗(yàn)因素水平設(shè)計(jì) 考察液料比、提取溫度、提取時(shí)間對(duì)姜多糖提取的影響,根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,建立三因素三水平正交試驗(yàn)因素水平,見(jiàn)表1。

        表1 熱水浸提法正交試驗(yàn)因素設(shè)計(jì)水平表Table 1 Hot water extraction orthogonal test factor design levelTable

        2.1.2 正交試驗(yàn)結(jié)果及方差分析 熱水浸提法提取姜多糖的正交試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。通過(guò)分析可知,影響姜多糖提取率主次因素依次為B>A>C,最優(yōu)水平組合為A2B3C3,即液料比20∶1 (mL/g),提取溫度100 ℃,提取時(shí)間4 h。由表3可知,液料比、溫度、時(shí)間均對(duì)姜多糖的提取有顯著性影響(P<0.05),且溫度具有極顯著性影響(P<0.01),3個(gè)因素影響大小順序與正交試驗(yàn)結(jié)果相符。在最優(yōu)試驗(yàn)條件下進(jìn)行3組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,姜多糖的提取率為(11.74±0.23)%,高于正交試驗(yàn)中9個(gè)試驗(yàn)組,可見(jiàn),該正交試驗(yàn)結(jié)果可靠。

        表2熱水浸提法提取姜多糖正交試驗(yàn)結(jié)果分析

        Table 2 Orthogonal experimental results analysis ofZingiberofficinaleRosc polysaccharides extraction with hot water extraction (n=3)

        序號(hào)ABC提取率/%11115.79±0.0221226.94±0.0831339.44±0.0142127.51±0.0352238.79±0.0262319.55±0.0673137.97±0.0083217.31±0.10933210.28±0.04K122.1721.2722.65K 225.8523.0424.73K 325.5629.2726.20R3.688.003.55

        表3 熱水浸提法正交試驗(yàn)方差分析表?Table 3 Analysis of variance of orthogonal test for hot water extraction

        2.2 超聲波冰浴提取法

        2.2.1 超聲波冰浴提取法正交試驗(yàn)因素水平設(shè)計(jì) 考察超聲時(shí)間、超聲功率和液料比對(duì)姜多糖提取的影響,根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,建立三因素三水平正交試驗(yàn)因素水平,見(jiàn)表4。

        表4超聲波冰浴提取法正交試驗(yàn)因素設(shè)計(jì)水平表

        Table 4 Ultrasonic ice bath extraction orthogonal test factor design level
        Table

        水平A 超聲時(shí)間/minB 超聲功率/WC 液料比(mL/g)13040015︰123550020︰134060025︰1

        2.2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果及方差分析 超聲波冰浴提取法提取姜多糖的正交試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表5。通過(guò)分析可知,影響超聲提取姜多糖的工藝順序:C>B>A,且最佳提取工藝條件為A1B2C3,即超聲時(shí)間30 min、超聲功率500 W、液料比25∶1 (mL/g)。由表6可知,超聲時(shí)間,超聲功率以及液料比均對(duì)姜多糖的提取有顯著性影響(P<0.05),且3個(gè)因素影響大小順序與正交試驗(yàn)結(jié)果相符。對(duì)最優(yōu)試驗(yàn)條件進(jìn)行3組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,此時(shí)姜多糖的提取率為(7.00±0.04)%,高于正交試驗(yàn)中9個(gè)試驗(yàn)組,表明正交試驗(yàn)方案設(shè)計(jì)穩(wěn)定。

        2.3 復(fù)合酶提取法

        2.3.1 復(fù)合酶酶解條件正交試驗(yàn)因素水平設(shè)計(jì) 考察液料比、pH值、酶解溫度和酶解時(shí)間對(duì)姜多糖提取的影響,根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,建立四因素三水平正交試驗(yàn)因素水平,見(jiàn)表7。

        2.3.2 正交試驗(yàn)結(jié)果及方差分析 由表8可知,影響復(fù)合酶提取姜多糖的工藝順序?yàn)镃>B>A>D,且最優(yōu)提取工藝為A1B2C2D3,即液料比25∶1 (mL/g)、酶解時(shí)間2.0 h、酶解溫度40 ℃和pH值7.0。由表9可知,溫度、時(shí)間、液料比和pH值均對(duì)多糖提取率有極顯著性影響(P<0.01)。在最優(yōu)工藝條件下進(jìn)行3組平行實(shí)驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證,提取液中姜多糖的提取率為(20.93±0.20)%,結(jié)果遠(yuǎn)高于9個(gè)正交試驗(yàn)組結(jié)果,可見(jiàn)該正交試驗(yàn)結(jié)果可靠。

        2.4 多糖得率、純度及蛋白質(zhì)含量

        3種方法提取姜多糖的多糖得率、純度及蛋白質(zhì)含量見(jiàn)表10。由表10可知,復(fù)合酶解法得到的姜多糖得率遠(yuǎn)高于熱水浸提法和超聲波冰浴提取法的;而在純度方面,熱水浸提法相對(duì)優(yōu)于超聲波冰浴提取法和復(fù)合酶解法。

        2.5 多糖紫外光譜掃描

        對(duì)3種不同提取方法得到的姜多糖進(jìn)行紫外光譜掃描,如圖1所示,采用Sevag法除蛋白后,姜多糖溶液在260,280 nm 處均未出現(xiàn)明顯的特征吸收峰,從而進(jìn)一步證明sevag法能有效去除姜多糖中的蛋白。

        表5超聲波冰浴提取法提取姜多糖正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果分析

        Table 5 Ultrasonic ice bath extraction extraction ofZingiberofficinaleRosc polysaccharides orthogonal test design and results analysis (n=3)

        序號(hào)ABC提取率/%11115.54±0.0521226.36±0.0431336.29±0.0142126.08±0.0552236.57±0.0862315.32±0.0173135.87±0.0083215.46±0.0793325.56±0.01K 118.1917.4916.32K 217.9718.3918.00K 316.8917.1718.73R1.300.902.41

        表6 超聲波冰浴提取法正交試驗(yàn)方差分析表?Table 6 Ultrasonic ice bath extraction orthogonal test analysis of varianceTable

        表7復(fù)合酶酶條件正交試驗(yàn)因素設(shè)計(jì)水平表

        Table 7 Multi-enzymatic enzyme conditions orthogonal test factor design level
        Table

        水平A 液料比(mL/g)B pH值C 酶解溫度/℃D 酶解時(shí)間/h120︰15.0401.5225︰16.0502.0330︰17.0602.5

        2.6 透射電鏡掃描

        對(duì)比分析不同方法提取多糖剩余姜渣的透射電鏡圖(圖2)可知,結(jié)合姜渣透射電鏡圖,發(fā)現(xiàn)經(jīng)過(guò)熱水浸提后,姜細(xì)胞出現(xiàn)了較明顯的破損,有利于姜多糖溶出;復(fù)合酶解在破壞細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)后,改變了細(xì)胞通透性,使得細(xì)胞中其他水溶性物質(zhì)和多糖一同溶出,從而降低了多糖純度;超聲波提取的原理是利用超聲空化,使多糖更易溶于溶劑,而試驗(yàn)中利用超聲波提取的姜多糖得率和純度較另2種方法低,其原因主要是采用了冰浴提取法,降低了超聲波對(duì)細(xì)胞的破壞,且低溫不利于姜多糖溶出[15],其他水溶性物質(zhì),如姜酚等在低溫環(huán)境中溶解度高于多糖[16],而低溫能減少多糖生物活性損失。

        表8復(fù)合酶酶解提取姜多糖正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果分析

        Table 8 Orthogonal experimental design and results analysis of extractingZingiberofficinaleRosc polysaccharides by complex enzymatic hydrolysis (n=3)

        序號(hào)ABC溫度D時(shí)間提取率/%1111115.69±0.022122218.80±0.083133318.02±0.124212317.02±0.115223117.71±0.096231215.21±0.037313216.08±0.068321316.84±0.159332116.60±0.01K152.5148.7947.7450.00K249.9453.3552.4250.09K349.5249.8351.8251.88R2.994.564.681.79

        表9 復(fù)合酶酶解法正交試驗(yàn)方差分析表?Table 9 Complex enzymatic method orthogonal test variance analysisTable

        表10 多糖得率、純度及蛋白質(zhì)含量Table 10 Polysaccharides yield, purity and protein content (n=3) %

        圖1 多糖紫外光譜掃描結(jié)果Figure 1 UV spectral scanning results of polysaccharides

        圖2 不同方法提取多糖剩余姜渣透射電鏡掃描結(jié)果圖

        Figure 2 TEM scanning results of residualZingiberofficinaleRosc residue extracted by different methods

        3 結(jié)論

        本試驗(yàn)利用透射電鏡掃描姜渣,試驗(yàn)結(jié)果表明,不同提取方法對(duì)姜細(xì)胞的破壞有明顯的差異性,從而造成多糖的溶出不同。對(duì)比分析3種不同工藝提取的姜多糖,得出復(fù)合酶解法姜多糖得率最高,為(14.67±0.32)%;而在多糖純度方面,熱水浸提法相對(duì)另外2種提取方法更好,可達(dá)(86.53±0.20)%。經(jīng)過(guò)sevag法除蛋白后,3種姜多糖中蛋白含量均低于0.5%,遠(yuǎn)低于文獻(xiàn)[12]報(bào)道。

        本試驗(yàn)中采用超聲波冰浴提取法,姜多糖得率較低,且雜質(zhì)較多。近年來(lái)超聲波與酶解法協(xié)同提取法[17]得到廣泛關(guān)注,后續(xù)可利用超聲波-酶解協(xié)同提取姜多糖,同時(shí)對(duì)比分析2種提取方法在得率、純度以及生物活性等方面的差異。

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