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        轉(zhuǎn)錄因子Tbx18導(dǎo)入人誘導(dǎo)多潛能干細(xì)胞分化的心肌細(xì)胞構(gòu)建起搏樣細(xì)胞的實驗研究

        2018-10-30 11:23:24吳福建任學(xué)軍
        心肺血管病雜志 2018年4期
        關(guān)鍵詞:竇房結(jié)顯微鏡心肌細(xì)胞

        王 蕓 吳福建 蘭 峰 任學(xué)軍

        生物起搏是當(dāng)前治療緩慢型心律失常的研究熱點,能克服傳統(tǒng)起搏器置入可能出現(xiàn)的感染、電池耗竭、導(dǎo)線磨損等問題[1]。胚胎期的轉(zhuǎn)錄因子能夠從竇房結(jié)發(fā)育的上游信號通路調(diào)控細(xì)胞的發(fā)育,動物模型研究表明轉(zhuǎn)錄因子Tbx18對早期竇房結(jié)功能特異性至關(guān)重要[2],利用基因技術(shù)在離體和動物在體環(huán)境中過表達(dá)Tbx18,可以使心室肌細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)槠鸩珮蛹?xì)胞[3]。但是 Tbx18 是否能使人源性誘導(dǎo)多潛能干細(xì)胞(human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes, hiPSC)向自律性較高的起搏樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化仍然未知。我們的實驗旨在探索Tbx18轉(zhuǎn)染是否能使hiPSC分化的心肌細(xì)胞向竇房結(jié)樣起搏細(xì)胞分化,從而為其在心臟生物起搏的治療方面做好準(zhǔn)備。

        材料與方法

        1.實驗材料 CardioEasy?人心肌細(xì)胞(Cellapy:CA2101106)、人心肌細(xì)胞鋪底工作液(Cellapy:Cat. CA2010100/ CA2010500)、心肌接種培養(yǎng)基(Cellapy:CA2002009)、人心肌細(xì)胞純化培養(yǎng)基(Cellapy:CA2005100)、心肌維持培養(yǎng)基(Cellapy:CA2003100)、人心肌細(xì)胞消化液(Cellapy:CA2006009)、細(xì)胞培養(yǎng)級DMSO(Sigma: Cat. D2650),細(xì)胞培養(yǎng)級的PBS溶液(Hyclone: Cat. SH30256.01)、 腺病毒載體Ad.Tbx18、Ad.GFP(吉凱公司),人HCN4單克隆抗體美國 (Abcam公司),Trizol試劑、實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qRT-PCR)儀,倒置顯微鏡、熒光顯微鏡(日本olympus 公司),電泳儀、 電泳槽。

        2. hiPSC心肌細(xì)胞純化、接種及鑒定 (1)材料準(zhǔn)備:①在60mm培養(yǎng)皿中添加人心肌細(xì)胞鋪底工作液至完全覆蓋皿底,37℃包被4h以上備用。②室溫下平衡心肌細(xì)胞接種培養(yǎng)基,吸去培養(yǎng)皿中的鋪底工作液,加入適量接種培養(yǎng)基,置于 5% CO2, 37℃恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱中。(2)心肌細(xì)胞消化:③取 CardioEasy?人心肌細(xì)胞1瓶,PBS 溶液清洗一次,加入心肌細(xì)胞消化液使之完全覆蓋瓶底,37℃恒溫, CO2培養(yǎng)箱孵育15~30 min,顯微鏡下觀察到大部分細(xì)胞間連接消失,細(xì)胞呈現(xiàn)單個圓形。④用移液槍吹打制成單細(xì)胞懸液,并轉(zhuǎn)至 15mL 離心管中,再用適量 PBS 溶液清洗培養(yǎng)瓶,收集剩余細(xì)胞加入同一離心管中,200g 離心 5 min。⑤棄去上清,用接種培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,并按 2∶1~3∶1 的比例接種到準(zhǔn)備好的皿,水平十字搖勻。(3)心肌細(xì)胞純化:5% CO2, 37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 24h,更換為心肌細(xì)胞維持培養(yǎng)基,待心肌細(xì)胞穩(wěn)定搏動 2 d后,用PBS 溶液清洗1次,更換為心肌細(xì)胞純化完全培養(yǎng)基。5% CO2, 37℃恒溫箱中培養(yǎng)4d,加入 PBS 溶液清洗1次去除死細(xì)胞,更換為心肌細(xì)胞維持培養(yǎng)基持續(xù)培養(yǎng),1~3 d后,可觀察到細(xì)胞恢復(fù)搏動,細(xì)胞純度變高。(4)心肌細(xì)胞鑒定:RT-PCR檢測NKX2-5,MYH6, MYH7, MLC2V等心肌細(xì)胞特異性基因在hiPSC-CM中的表達(dá)情況。

        3.病毒轉(zhuǎn)染 取純化的hiPS-CM細(xì)胞接種入12 孔板中,當(dāng)細(xì)胞80%融合時分別以不同的感染復(fù)數(shù)(Multiplicity of infection, MOI)值(10、20、30、50、70、100)分別加入Ad.GFP.Tbx18和Ad.GFP進(jìn)行轉(zhuǎn)染。使用心肌維持培養(yǎng)基定容為 500μL,2 h 后補(bǔ)加至 1 mL。培養(yǎng) 48h 后換液,72 h 后置于熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)變化、成活率及GFP熒光比例,選擇轉(zhuǎn)染率高且細(xì)胞病死率低的MOI值使用上述方法進(jìn)行后續(xù)轉(zhuǎn)染。

        4. 轉(zhuǎn)染后觀察細(xì)胞形態(tài)和搏動頻率變化 將純化的hiPS-CM細(xì)胞接種入12孔板中,待生長至70%融合時,使用最佳病毒濃度轉(zhuǎn)染hiPS-CM細(xì)胞,實驗組、GFP組分別轉(zhuǎn)染4孔,空白對照組4孔。48 h 后換液,72 h 后開始顯微鏡下觀察。在倒置顯微鏡和熒光顯微鏡下觀察轉(zhuǎn)染Tbx-18的細(xì)胞形態(tài)和搏動頻率,第1、3、5、7、14、21天分別計數(shù)三組心率變化、觀察細(xì)胞形態(tài)變化。每組從各孔隨機(jī)取3個視野,分別計數(shù)視野中細(xì)胞簇的搏動頻率,取平均值,各視野分別錄像1分鐘。

        5.實時定量 PCR 檢測起搏細(xì)胞相關(guān)基因表達(dá) 轉(zhuǎn)染10d后采用 Trizol 試劑提取各組細(xì)胞的總 RNA,按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將其反轉(zhuǎn)錄成cDNA,行qRT-PCR。PCR反應(yīng)體系為: 2×SYBR Green 染料 12.5μL,引物混合物 1μL,cDNA2μL,ddH2O 2μL,PCR 反應(yīng)條件:95℃ 2 min,95℃ 1 min,55℃ 2 min,35個循環(huán),延伸 5 min。延伸時讀板,收集熒光值。以GAPDH作為內(nèi)參,2-ΔΔCt法計算產(chǎn)物相對量。

        6.統(tǒng)計學(xué)方法 用SPSS 19.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,多組間均數(shù)比較用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK法檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1.人誘導(dǎo)多潛能干細(xì)胞分化的心肌細(xì)胞形態(tài)表型及功能鑒定 通過 MLC2v、MLC2a 和 HCN4 等心肌工作細(xì)胞及起搏細(xì)胞特異性蛋白的免疫熒光檢測,表明hiPS-CMs為細(xì)胞混合體,含有約 70%~80%的心室肌細(xì)胞、20%~30%的心房肌細(xì)胞和<5%的竇房結(jié)樣細(xì)胞。這些細(xì)胞表達(dá)常規(guī)的心肌特異性基因,包括多種收縮蛋白和離子通道,同時具備經(jīng)典的心肌細(xì)胞電生理活性,能夠?qū)﹄娚砗蜕锘瘜W(xué)刺激做出心肌細(xì)胞的常規(guī)反應(yīng)。

        圖1 左圖:hiPSC及hiPSC-CMs鏡下圖像(10x)。A:重編程后純化的hiPSC;B:誘導(dǎo)分化后未純化的心肌細(xì)胞;C:純化3天后的心肌細(xì)胞;D:純化7天后的心肌細(xì)胞;右圖: RT-PCR檢測CardioEasy?人心肌細(xì)胞能夠表達(dá)常規(guī)的心肌特異性基因

        圖2 病毒轉(zhuǎn)染效率圖 (×10)

        2.病毒轉(zhuǎn)染效率 病毒轉(zhuǎn)染后 48 h 于顯微鏡下觀察(10X),MOI=10組細(xì)胞形態(tài)未見明顯改變,細(xì)胞大部分貼壁生長,死亡細(xì)胞較少;MOI=30組漂浮死亡細(xì)胞數(shù)量較前組多,部分細(xì)胞形態(tài)變?yōu)閳A形,細(xì)胞間連接減少;MOI=50組死亡細(xì)胞數(shù)量前組相似,大多數(shù)細(xì)胞形態(tài)變?yōu)樗笮?;MOI=100組細(xì)胞數(shù)量減少,死亡細(xì)胞較多。72 h 后置于熒光顯微鏡下觀察(×10),三組均有綠色熒光表達(dá),MOI=10與MOI=30 組組熒光亮度較弱,熒光細(xì)胞幾乎沒有;MOI=50 組熒光亮度較強(qiáng),熒光細(xì)胞數(shù)目與之相似,MOI=100組熒光亮度較強(qiáng),與前組相似,但漂浮死亡細(xì)胞較多。綜合考慮轉(zhuǎn)染率與細(xì)胞病死率,我們選用 MOI=50 作為最佳轉(zhuǎn)染劑量。

        3. 轉(zhuǎn)染后各組細(xì)胞形態(tài)功能變化 加病毒1d心肌細(xì)胞形態(tài)無明顯改變,以多邊形為主,可見少量梭形、菱形細(xì)胞,細(xì)胞間形成聯(lián)系,可見均一的同步化跳動的單層心肌組織,頻率多在35bpm左右;3~7d細(xì)胞形態(tài)逐漸改變,以梭形、紡錘形為主,細(xì)胞間聯(lián)系減少,搏動頻率逐漸增加,在60次/min左右。7~ 21d后細(xì)胞形態(tài)較前無明顯變化,部分形成新的細(xì)胞間連接,可見細(xì)胞簇,搏動頻率較前無明顯增加,18d后細(xì)胞搏動逐漸減弱(圖3)。

        TBX18組的搏動頻率明顯快于GFP組[(61.33±13.5)vs.(33.01±1.67)次/min,P<0.01](表1,圖4),說明Tbx18 可以顯著提高h(yuǎn)iPSC-CMs的搏動頻率;GFP與空白對照組之間搏動頻率并無差異(P>0.05),說明腺病毒轉(zhuǎn)染基本不影響hiPSC-CMs的活性及功能。

        圖3 轉(zhuǎn)染后各組細(xì)胞形態(tài)功能變化

        組別平均心率標(biāo)準(zhǔn)差最小心率最大心率tbx-18(n=21)61.3313.53574GFP(n=21)33.011.673036空白(n=21)35.051.283337

        圖4 轉(zhuǎn)染后3周各組心率變化

        4.轉(zhuǎn)染后起搏細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)改變情況 用腺病毒載體轉(zhuǎn)染293細(xì)胞4d,進(jìn)行起搏相關(guān)基因HCN4表達(dá)量的檢測,得出5×106(MOI=50)為最佳病毒轉(zhuǎn)染濃度,并以HCN4表達(dá)量為參照。實驗組(Ad.Tbx18)與對照組(Ad.GFP)同時轉(zhuǎn)染腺病毒載體4d后qRT-PCR檢測相關(guān)基因表達(dá)變化情況,發(fā)現(xiàn)起搏功能相關(guān)基因HCN4 mRNA 表達(dá)水平明顯高于GFP組(P<0.05);Tbx18組較GFP組KIR2.1、SCN5A、CX43等心室肌特異性基因表達(dá)明顯減低。分析顯示hiPSC-CM在后續(xù)培養(yǎng)過程中持續(xù)表達(dá)竇房結(jié)細(xì)胞的特異性結(jié)構(gòu)基因 HCN4,其表達(dá)量隨時間延續(xù)而增加。

        圖5 轉(zhuǎn)染后起搏細(xì)胞相關(guān)基因的表達(dá)改變情況

        討 論

        位于竇房結(jié)中心區(qū)的結(jié)細(xì)胞是典型的起搏細(xì)胞,細(xì)胞較小,呈梭形或長梭形,細(xì)胞中僅有散在的肌絲,幾乎沒有線粒體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)。結(jié)細(xì)胞的自律性基礎(chǔ)來源于產(chǎn)生4期自動去極化的If電流,而HCN4通道是產(chǎn)生If電流的特異性離子通道[4-5]。已有研究利用基因技術(shù)使棕色脂肪源性干細(xì)胞、間充質(zhì)干細(xì)胞過表達(dá)HCN通道,從而獲得具有一定自律性的起搏樣細(xì)胞[6]。這些方法的不足之處在于,基因轉(zhuǎn)染單個或多個離子通道雖有一定起搏功能,但其細(xì)胞表型與竇房結(jié)相差甚遠(yuǎn),且對自主神經(jīng)調(diào)控反應(yīng)差,干細(xì)胞移植其潛在的致瘤風(fēng)險較大等。因此進(jìn)一步的研究方向轉(zhuǎn)移到竇房結(jié)發(fā)育過程中關(guān)鍵的轉(zhuǎn)錄因子家族上來,嘗試從竇房結(jié)胚胎發(fā)育的上游調(diào)控的角度構(gòu)建生物起搏器[7],其中轉(zhuǎn)錄因子Tbx18的研究結(jié)果最令人矚目[8]。

        Tbx18 屬于轉(zhuǎn)錄因子 T-box 家族,位于染色體6q14-q15,是胚胎發(fā)育期重要的轉(zhuǎn)錄因子,目前已有較多在體及離體實驗研究表明Tbx18 能影響竇房結(jié)的發(fā)育,且Tbx18的轉(zhuǎn)錄激活因子能誘發(fā)心外膜和平滑肌的分化作用[9-10]。Kapoor等[2]以病毒為載體將一組轉(zhuǎn)錄因子(Shox2、TBX3、TBX5、TBX18、TBX20)分別轉(zhuǎn)入新生心室肌細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)只有Tbx18增加心肌細(xì)胞自律性,并且HCN4表達(dá)增加,動作電位和細(xì)胞形態(tài)顯示出竇房結(jié)樣改變。因此,本研究中我們選擇導(dǎo)入轉(zhuǎn)錄因子TBX18,以使工具細(xì)胞獲得起搏功能。

        以細(xì)胞為基礎(chǔ)構(gòu)建的生物起搏器的研究已經(jīng)能產(chǎn)生起搏功能。細(xì)胞生物起搏指將具有起搏功能或可分化為具有起搏功能的細(xì)胞移植到受損的傳導(dǎo)組織中,進(jìn)行細(xì)胞修復(fù)或替代[11]。常用的種子細(xì)胞如胚胎干細(xì)胞、間充質(zhì)干細(xì)胞、成體細(xì)胞等,但胚胎干細(xì)胞的免疫原性、致畸性及倫理問題限制了其發(fā)展,間充質(zhì)干細(xì)胞移植的轉(zhuǎn)化及調(diào)節(jié)機(jī)制尚不明確,且其長期療效及安全性尚需進(jìn)一步評估。近年來體細(xì)胞重編程[12-14](reprogram)及iPSC定向分化技術(shù)的[15]迅速發(fā)展,為種子細(xì)胞提供了良好的選擇。目前iPS細(xì)胞在心血管疾病研究和治療中的應(yīng)用主要在藥物篩選及遺傳性心臟疾病的模型建立,用于移植治療的研究還處于基礎(chǔ)實驗階段,細(xì)胞移植的安全性及其功能表達(dá)的持久性需要進(jìn)一步隨訪評價。

        我們使用Tbx18 的腺病毒載體對 hiPSC-CMs進(jìn)行了轉(zhuǎn)染,熒光顯微鏡顯示轉(zhuǎn)染成功,由于之前并沒有關(guān)于 Ad-Tbx18 轉(zhuǎn)染人源性誘導(dǎo)多潛能干細(xì)胞分化的心肌細(xì)胞的報道,我們首先對轉(zhuǎn)染的安全性和有效性進(jìn)行評估。結(jié)合倒置顯微鏡的觀察結(jié)果,我們認(rèn)為 MOI=50 為最適宜的轉(zhuǎn)染滴度,并在后續(xù)實驗中利用此滴度進(jìn)行轉(zhuǎn)染。通過21天顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài),發(fā)現(xiàn)細(xì)胞體積變小、細(xì)胞間連接減少、細(xì)胞形態(tài)似長梭形,類似于竇房結(jié)細(xì)胞,轉(zhuǎn)染后細(xì)胞搏動頻率明顯增加且不依賴Tbx18的持續(xù)表達(dá),在轉(zhuǎn)染 72h 后,Tbx18 轉(zhuǎn)染細(xì)胞較對照組出現(xiàn)了HCN4 表達(dá)明顯增高,說明轉(zhuǎn)染了 Tbx18 的hiPS-CMs出現(xiàn)了向起搏結(jié)細(xì)胞轉(zhuǎn)化的趨勢,預(yù)計hiPS心肌細(xì)胞可作為較穩(wěn)定的種子細(xì)胞。

        本實驗中存在一些問題:如人竇房結(jié)細(xì)胞缺少特異性表達(dá)的基因或蛋白標(biāo)志,僅能使用心率變化或具有起搏功能的離子通道基因變化來提示細(xì)胞轉(zhuǎn)化,無法確定轉(zhuǎn)化后的細(xì)胞即為竇房結(jié)細(xì)胞;未進(jìn)行膜片鉗等實驗驗證單個細(xì)胞是否具有起搏細(xì)胞特異性動作電位;轉(zhuǎn)化后的細(xì)胞能否長久生存等,這些問題有望在后續(xù)進(jìn)一步的實驗中得到解決。

        綜上所述,本實驗中我們采用人誘導(dǎo)多潛能干細(xì)胞分化的心肌細(xì)胞為工具,導(dǎo)入轉(zhuǎn)錄因子Tbx18后,hiPS-CMs的形態(tài)和功能發(fā)生改變,從起初具有緊密細(xì)胞間聯(lián)系的多邊形變?yōu)殚L梭形細(xì)胞,細(xì)胞搏動頻率顯著增加,起搏相關(guān)基因表達(dá)明顯增加,心室肌特異性基因表達(dá)下調(diào),使原本純度70%以上的心室肌細(xì)胞大部分向竇房結(jié)樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化,成功構(gòu)建了類竇房結(jié)樣起搏細(xì)胞。本實驗探索了人源性誘導(dǎo)多能干細(xì)胞分化的心肌細(xì)胞向起搏細(xì)胞轉(zhuǎn)化的方法,進(jìn)一步目標(biāo)希望能探索出誘導(dǎo)多能干細(xì)胞向不同種類心肌細(xì)胞定向分化的方法。

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