雷榮 李娟 余天 張帆
1.武漢愛爾眼科醫(yī)院淚道科,湖北 武漢 430063;
2.華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬協(xié)和醫(yī)院干細(xì)胞中心,湖北 武漢 430022;
3.華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬同濟(jì)醫(yī)院骨科,湖北 武漢 430030
葡萄膜黑色素瘤是人眼內(nèi)腫瘤中最常見的惡性腫瘤之一[1],90%來源于人眼脈絡(luò)膜[2]。隨著近年來診療水平的不斷提高,以保留眼球為前提的綜合治療已取得顯著的療效,其中放射治療是葡萄膜黑色素瘤最常用的方法之一[3]。近年發(fā)現(xiàn)的Omi/HtrA2是存在于線粒體膜間隙的前凋亡分子,在促凋亡信號誘導(dǎo)下,Omi/HtrA2由線粒體釋放到細(xì)胞質(zhì),并通過抑制凋亡蛋白抑制因子家族(inhibitor of apoptosis proteins,IAPs)、活化半胱氨酸-天冬氨酸蛋白酶和絲氨酸蛋白酶途徑促凋亡[4]。早期生長反應(yīng)基因1(early growth response-1,Egr-1)的調(diào)控序列中一段特定結(jié)構(gòu)可感受細(xì)胞內(nèi)外的理化刺激如自由基、電離輻射等[5],繼而誘導(dǎo)下游基因表達(dá)。我們通過脂質(zhì)體將pEgr1-HtrA2質(zhì)粒轉(zhuǎn)染入葡萄膜黑色素瘤細(xì)胞系OCM-1,結(jié)合放射線干預(yù)(radiation treatment,RT),誘導(dǎo)Omi/HtrA2表達(dá),探討通過誘導(dǎo)基因殺傷治療葡萄膜黑色素瘤的可能。
pIRES-Egr1(pEgr1)和pEgr1-HtrA2質(zhì)粒根據(jù)孫教授等[6]的研究設(shè)計。pEgr1、pEgr1-H trA2和pCMV-HtrA2質(zhì)粒由武漢晶賽公司構(gòu)建、純化并鑒定。
人眼葡萄膜黑色素瘤OCM-1細(xì)胞本實驗室常規(guī)保存,培養(yǎng)條件:DMEM/F12培養(yǎng)基(美國Invitrogen公司),添加10%胎牛血清(美國Hyclone公司),100 kU/L青霉素-G,100 mg/L鏈霉素(美國Gibco公司),在37 ℃,CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
細(xì)胞接種于6 孔板,當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到80%~90%時換成OPTI-MEM培養(yǎng)基,并用LipofectamineTM2000 (美國Invitrogen公司)分別轉(zhuǎn)染質(zhì)粒pEgr1、pCMV-HtrA2和pEgr1-HtrA2,轉(zhuǎn)染步驟按說明書進(jìn)行。轉(zhuǎn)染4 h后換液,改用DMEM/F12培養(yǎng)基培養(yǎng)36 h用于相關(guān)指標(biāo)檢測。在濃度為600 μg/mL G418中培養(yǎng)篩選出穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒。
采用西門子直線加速器的X射線照射(6 MeV X射線,距離100 cm,2 Gy/min)。
轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的各組細(xì)胞培養(yǎng)48 h,給予不同劑量的放射照射,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后用于相關(guān)指標(biāo)檢測。移植瘤的局部給予放射線照射,隔日1次,共3次。
用TRIzol(美國Invitrogen公司)法提取總RNA。將100~500 ng總RNA用cDNA合成試劑盒(日本TOYOBO公司)反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。實時定量PCR在LightCycler(Roche)機(jī)器上運行,并用SYBR Green Real-time PCR Master Mix-Plus(日本TOYOBO公司)試劑盒。PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性10 min,95 ℃變性10 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸10 s,共40個循環(huán)。分別擴(kuò)增HtrA2和內(nèi)參GAPDH基因。HtrA2的上游引物為5’-CTAGCTAGCGCC ACCATGGCTGCGCCGAGGGC-3’,下游引物為5’-CGACGCGTTCATTCTGTGAC C T C A G G G G T C A C A-3’。G A P D H的 上 游 引 物 為5 ’ - G A A G G T G A A G G T C G G A G T C-3’,下游引物為5’-G A A G ATGGTGATGGGATTTC-3’。以GAPDH基因作為參照,利用ΔΔCT法計算相對變化量。
收集各組細(xì)胞用R I PA 裂解液(加拿大ProMab生物公司)提取總蛋白,用BCA法測定蛋白濃度。分別將提取的各個樣品的50 μg蛋白行8%SDS-PAGE電泳。電轉(zhuǎn)移印跡到PVDF膜,封閉后,分別加入Omi/HtrA2小鼠抗人抗體(美國Abcam公司,1∶500)、β-actin克隆抗體(美國Abcam公司,1∶333)、溫育、洗滌、添加二抗(美國KPL公司,1∶3 000)。底物發(fā)光試劑盒SuperSignal蛋白質(zhì)檢測試劑盒購自Pierce公司。以β-actin作為參照,相對計算條帶的灰度值。實驗至少重復(fù)3次。
各組呈對數(shù)生長的單層細(xì)胞分別予以0、2、4、6、8、10 Gy劑量的X線照射。將各組照射后的細(xì)胞以適當(dāng)數(shù)量接種到培養(yǎng)瓶中。培養(yǎng)2周后,固定,結(jié)晶紫染色細(xì)胞。在顯微鏡(低倍鏡)計數(shù)>50個細(xì)胞的克隆數(shù)。最后計算克隆形成率??寺⌒纬陕?克隆數(shù)/接種細(xì)胞數(shù)×100%。實驗重復(fù)3次。
采用Annexin Ⅴ-FITC/PI(美國Becton公司)雙標(biāo)記法進(jìn)行流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞凋亡。胰蛋白酶消化法收集各組細(xì)胞,80%乙醇4 ℃過夜。染色標(biāo)記根據(jù)說明書步驟進(jìn)行后立即上流式細(xì)胞儀檢測。采用Cellq uest軟件分析。實驗重復(fù)3次。
OCM-1細(xì)胞(含1×107細(xì)胞的0.2 mL無菌0.9%NaCl溶液懸液)注射入裸小鼠的右后肢皮下制作移植瘤模型,腫瘤體積達(dá)300 mm3的小鼠用于下一步實驗。將移植瘤模型小鼠分為對照組、放射組、基因組以及基因放射組,每組10只?;蚪M和基因放射組移植瘤內(nèi)注射pEgr1和pEgr1-HtrA2質(zhì)粒(100 μL含20 μg質(zhì)粒和40 μg LipofectamineTM2000的混合物)。放射組和基因放射組小鼠局部給予8 Gy和4 Gy照射,隔日1次,共3次。質(zhì)粒分別從4個方向注入腫塊,防止泄漏。小鼠于無菌環(huán)境下飼養(yǎng)。腫瘤體積運用公式0.54×長(mm)×寬(mm)×高(mm),電腦斷層掃描測量后計算。腫瘤體積每周測2次。
將轉(zhuǎn)染pEgr1、pEgr1-HtrA2或pCMV-HtrA2質(zhì)粒的各組細(xì)胞培養(yǎng)48 h,給予0、2、4、8和12 Gy不同劑量的放射照射。24 h后檢測HtrA2 mRNA表達(dá)。隨著放射劑量的增加,pEgr1-HtrA2組HtrA2 mRNA表達(dá)較照射前增加,呈劑量依耐性,4 Gy時顯著增加,在8 Gy時達(dá)到最高值,較照射前增加15倍(P<0.05),pCMVHtrA2組HtrA2 mRNA表達(dá)較照射前輕度下降,與放射劑量無明顯關(guān)系,pEgr1組HtrA2 mRNA表達(dá)無明顯變化(P>0.05,圖1A)。Western blot檢測8 Gy照射后的各組細(xì)胞HtrA2蛋白表達(dá)情況。pEgr1-HtrA2組HtrA2蛋白較照射前明顯增加(P<0.05),pCMV-HtrA2組HtrA2蛋白較照射前無明顯變化(P<0.05,圖1B)。結(jié)果顯示放射線能夠有效啟動Egr1以及其下游的基因表達(dá)。
檢測轉(zhuǎn)染不同質(zhì)粒的OCM-1細(xì)胞在0、2、4、6、8和10 Gy不同劑量X射線照射后的克隆數(shù),計算各組克隆形成率??梢妏Egr1-HtrA2組和pCMV-HtrA2組隨放射劑量增加克隆形成率下降,且均較pEgr1組低(P<0.05,圖2)。說明轉(zhuǎn)染pEgr1-HtrA2質(zhì)粒后可增強(qiáng)OCM-1細(xì)胞放射敏感性。
將轉(zhuǎn)染pEgr1、pEgr1-HtrA2或pCMV-HtrA2質(zhì)粒的各組細(xì)胞培養(yǎng)48 h或給予8 Gy放射照射后培養(yǎng)24 h,Annexin Ⅴ-FITC/PI雙染流式細(xì)胞儀凋亡檢測。pEgr1-HtrA2聯(lián)合放射組和pCMVHtrA2聯(lián)合放射組細(xì)胞凋亡率分別為(40.2±5.9)%和(37.7±6.0)%,較pEgr1、pEgr1-HtrA2及pEgr1聯(lián)合放射組明顯增加,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。pCMV-HtrA2組與pCMV-HtrA2聯(lián)合放射組細(xì)胞凋亡率差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,圖3)。
圖1 qRT-PCR和Western blot法檢測HtrA2 mRNA和蛋白表達(dá)Fig.1 Detection of mRNA and protein expression of HtrA2 by qRT-PCR and Western blot
圖2 克隆形成實驗檢測細(xì)胞生存率Fig.2 Clonogenic survival after various doses of irradiation exposure
質(zhì)粒分別注射入移植瘤模型局部后給予8或4 Gy的放射線照射,隔日1次,共3次,總劑量分別達(dá)24和12 Gy。定期記錄腫瘤體積。pEgr1-HtrA2聯(lián)合放射組第10天起腫瘤開始縮小,更長時間觀察未見腫瘤體積增大,在40 d時有5只小鼠的移植瘤縮小至觸摸不清,無法測量,與其他組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05,圖4A)。pEgr1和pEgr1-HtrA2組移植瘤快速生長,pEgr1聯(lián)合放射和單純放射組腫瘤早期暫時縮小,但從第20天開始迅速生長。
在pEgr1-HtrA2聯(lián)合4 Gy放射組長時間觀察未見移植瘤的體積增大,也未見腫瘤破潰、出血、結(jié)痂、死亡。30 d時1只實驗小鼠的移植瘤縮小至觸摸不清。在單純4 Gy照射組,腫瘤體積繼續(xù)增大(圖4B)。說明較低劑量放射線結(jié)合基因能夠達(dá)到抑制腫瘤生長的作用。
圖3 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡Fig.3 Detection of the apoptosis by fl ow cytometry
圖4 動物實驗中pEgr1-HtrA2聯(lián)合放射對葡萄膜黑色素瘤的影響Fig.4 Effects of pEgr1-HtrA2 gene therapy combined with radiation in vivo
腫瘤治療的腫瘤基因-放射治療是將經(jīng)射線誘導(dǎo)表達(dá)并對腫瘤具有殺傷作用的基因轉(zhuǎn)入腫瘤細(xì)胞,然后對腫瘤實施放療,同時誘導(dǎo)基因表達(dá),通過射線和基因的雙重作用殺傷腫瘤,為解決腫瘤放療的不良反應(yīng)開辟了新途徑[7]。Egr-1正是含有此類調(diào)控序列的基因的典型代表[8-9],屬于立早基因家族,定位于5q31,mRNA全長310 bp,編碼543個氨基酸,其序列中含有多個保守的CarG結(jié)構(gòu)域,這些結(jié)構(gòu)域可感受細(xì)胞內(nèi)外的理化刺激如自由基、電離輻射等,繼而誘導(dǎo)下游基因表達(dá)。Tsurushima等[10]將凋亡因子caspase-8與Egr-1啟動子構(gòu)造成一完整質(zhì)粒后用于治療惡性腦膠質(zhì)瘤取得了滿意的療效,且效果可在時間和空間上受放射線調(diào)控。這種可控的基因放射治療使得放療的不良反應(yīng)進(jìn)一步降低,安全性進(jìn)一步提高。
HtrA2是近年發(fā)現(xiàn)的一種前凋亡分子,在細(xì)胞內(nèi)具有雙重作用:①該分子存在于線粒體中并參與線粒體的正常生理代謝;②在外界刺激條件下,它從線粒體釋放出來參與并促進(jìn)細(xì)胞凋亡[11]。其途徑包括:能與IAPs特異性結(jié)合,解除IAPs對半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶的阻抑而激發(fā)凋亡,依賴其本身的蛋白激酶活性促進(jìn)細(xì)胞凋亡,此外,HtrA2還參與腫瘤細(xì)胞的失巢凋亡[12]和腫瘤壞死[13]。
本研究選用這種前凋亡分子與Egr-1啟動子成功構(gòu)建pEgr1-HtrA2質(zhì)粒,并與常規(guī)啟動子pCMV-HtrA2質(zhì)粒和空白質(zhì)粒pEgr1對比。分別轉(zhuǎn)染了上述3種質(zhì)粒的OCM-1細(xì)胞在接受0、2、4、8、12 Gy劑量的放射線后,pEgr1-HtrA2組HtrA2 mRNA表達(dá)在8 Gy時達(dá)到高峰,我們認(rèn)為可能Egr-1啟動子在8 Gy時已達(dá)到最大效率,在8 Gy前HtrA2表達(dá)隨放射劑量增加而增高,而pCMV-HtrA2組并無劑量依賴性。
總之,本實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)染HtrA2前凋亡因子可在放射線作用下抑制葡萄膜黑色素瘤OCM-1細(xì)胞的生長,并在動物實驗中取得了滿意的效果。由Egr-1啟動子構(gòu)建的pEgr1-HtrA2質(zhì)粒依賴放射線調(diào)控,可減少放射線劑量,增強(qiáng)放射敏感性,同時也提高了局部放療的安全性。
[1]PAPASTEFANOU V P, COHEN V M.Uveal melanoma[J].J Skin Cancer, 2011, 573974.doi: 10.1155/2011/573974.Epub 2011 Jun 30.
[2]DAMATO B.Treatment of primary intraocular melanoma[J].Expert Rev Anticancer Ther, 2006, 6(4): 493-506.
[3]SUN Y, TRAN B N, WORLEY L A, et al.Functional analysis of the p53 pathway in response to ionizing radiation in uveal melanoma[J].Invest Ophthalmolvis Sci, 2005, 46(5): 1561-1564.
[4]VERHAGEN A M, SILKE J, EKERT P G, et a1.HtrA2 promotes cell death through its serine protease activity and its ability to antagonize inhibitor of apoptosis proteins[J].J Biol Chem, 2002, 2777(1): 445-454.
[5]DATTA R, RUBIN E, SUKHATME V, et al.Ionizing radiation activates transcription of the EGR1 gene via CarG elements[J].Proc Natl Acad Sci USA, 1992, 89(21): 10149-10153.
[6]SUN X F, HU X Y, BAI X J.Cloning and sequencing of mouse Omi/HtrA2 and construction of radiation-inducible expression plasmid pIRESEGRlp-Omi/HtrA2[J].Chin J Exp Surg, 2007, 24(3): 355-357.
[7]KEVIN R, MCELENY R, WILLIAM G, et al.Inhibitors of apoptosis proteins in prostate cancer cell lines[J].Prostate, 2002, 51(2): 133-140.
[8]MARPLES B, GRECO O, JOINER M C, et al.Molecular approaches to Chemoradiotherapy[J].Eur J Cancer, 2002, 38(2): 231-239.
[9]GRECO O, MARPLES B, DACHS G U, et al.Novel chimeric gene promoters responsive to hypoxia and ionizing radiation[J].Gene Ther, 2002, 9(20): 1403-1411.
[10]TSURUSHIMA H, YUAN X, DILLEHAY L E, et al.Radiation-inducible caspase-8 gene therapy for malignant brain tumors[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys, 2008, 71(2): 517-525.
[11]SKORKO-GLONEK J, ZURAWA-JANICKA D, KOPER T, et al.HtrA protease family as therapeutic targets[J].Curr Pharm Des, 2013, 19(6): 977-1009.
[12]LIU Z, LI H, DEROUET M, et al.Oncogenic Ras inhibits anoikis of intestinal epithelial cells by preventing the release of a mitochondrial pro-apoptotic protein Omi/HtrA2 into the cytoplasm[J].J Biol Chem, 2006, 281(21): 14738-14747.
[13]OKADA M, ADACHI S, IMAI T, et al.A novel mechanism for imatinib mesylate-induced cell death of BCR-ABL-positive human leukemic cells caspase-independent, necrosis-like programmed cell death mediated by serine protease activity[J].Blood, 2004, 103(6): 2299-2307.