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        高效液相色譜-柱后衍生法檢測大米中黃曲霉毒素B1方法分析

        2018-09-21 02:53:46陳強勝
        現代食品 2018年15期
        關鍵詞:親和柱液相色譜儀黃曲霉

        ◎ 陳強勝

        (懷寧縣市場監(jiān)督管理局稽查大隊,安徽 懷寧 246100)

        黃曲霉毒素B1是黃曲霉菌和寄生曲霉菌產生的二次代謝產物,毒性強,分布范圍廣,在很多食品中普遍存在,對人類健康的危害性極大。采用高效液相色譜-柱后衍生法對黃曲霉毒素B1有很好的檢測效果。高效液相色譜法是近年來發(fā)展起來的一種檢測方法,其原理是在高效液相色譜儀上添加柱后衍生系統(tǒng)分離,再用熒光檢測器測定。與其配套的柱后衍生系統(tǒng)有碘衍生化法、溴衍生化法及較為先進的電化學衍生化法和光化學衍生化法。當前,該方法大多用免疫親和柱來凈化、分離,其凈化效果優(yōu)異。

        本文主要采用高效液相色譜-柱后衍生法檢測大米樣品中的黃曲霉毒素B1,用乙腈-水溶液的混合溶液提取,提取液經免疫親和柱凈化和富集,凈化液濃縮、定容和過濾后經液相色譜分離,柱后(碘試劑衍生),經熒光檢測器檢測,外標法定量。

        1 試劑和材料

        甲醇(CH3OH),色譜純;乙腈(CH3CN),色譜純;氯化鈉(NaCI);磷酸氫二鈉(Na2HPO4);磷酸二氫鉀(KH2PO4);氯化鉀(KCI);鹽酸(HCI);TritonX-100;碘衍生使用試劑,碘(I2);AFT B1標準品(C17H12O6,CAS號:1162-65-8),純度≥98%,經國家認證并授予標準物質證書的標準物質。

        2 儀器

        高效液相色譜儀,日本島津LC-20A,配有柱后衍生系統(tǒng)和熒光檢測器。

        3 測定條件

        流動相:A相,水;B相,乙腈-甲醇(50+50)。低壓梯度洗脫條件:A,55%;B,45%。色譜柱,C18柱(4.6 mm×250 mm×5 μm);流速,1.0 mL/min;柱溫,40 ℃;進樣量,40 μL;衍生溶液,0.05%碘溶液;衍生溶液流速,0.2 mL/min;衍生反應管溫度,70 ℃;激發(fā)波長,360 nm;發(fā)射波長,440 nm[1]。

        4 分析步驟

        按照國標GB 5009.22-2016方法和黃曲霉毒素B1免疫親和柱說明書處理大米樣品。①樣品提取,稱取5 g(m)樣品于50 mL離心管中,加入20.0 mL(V1)乙腈-水溶液,渦旋、混勻、離心后取上清液備用。②凈化,移取40 mL(V2)上清液,按照凈化操作步驟凈化,收集全部凈化液。要特別注意凈化柱需要回至室溫(25 ℃左右)樣品經過親和柱時要嚴格控制流速(1~2滴/s),以使其充分反應吸附。③洗脫,取2 mL(V3)甲醇洗脫凈化柱,要嚴格控制洗脫速度(1~2 mL/min),再用真空泵抽干凈化柱并收集全部洗脫液。④上樣測定,經色譜柱分離進入碘衍生系統(tǒng)。由熒光檢測器檢測[2]。

        5 測定譜圖

        用已知濃度的AFT B1標準品(C17H12O6,CAS號:1162-65-8)稀釋得到5個不同濃度梯度的AFT B1標準液作為標準品,將步驟4處理得到的分離提取液作為未知樣品。然后一并放入日本島津LC-20A(配有柱后衍生系統(tǒng)和熒光檢測器)的高效液相色譜儀中,并按照步驟3的測定條件進行測定。得到了很好的分離效果,譜圖峰沒有出現分叉、變形、拖尾現象,重現性好[3]。標準品譜圖(由于篇幅有限只列出其中一個標準品的譜圖)和樣品譜圖,分別如圖1、2所示。

        圖1 標準品譜圖

        圖2 樣品譜圖

        6 結果計算

        用5個不同濃度的標準品濃度和響應值繪制標準曲線,用此標準曲線加載樣品譜圖得到樣品濃度ρ=2.012 μg/kg。結合步驟4中樣品處理的質量和體積,代入公式(1)計算。

        計算結果約為0.4 μg/kg

        7 回收率試驗

        將已知不含黃曲霉毒素B1的4份大米樣品中分別添加濃度為2.7、5.0、8.0、10.0 μg/kg 4個水平的黃曲霉毒素B1標準品,然后按照上述步驟和方法處理測定。得出平均回收率為88.95%

        表1 添加回收率試驗表

        8 總結

        柱后碘衍生法檢出限為0.1 μg/kg。流動相在國標中給定的比例為A相68%、B相32%,但在實驗中發(fā)現按照這種比例本實驗室的液相色譜儀不能很好地分離標準物質,通過不斷調整發(fā)現A相55%、B相45%能夠取得很好的分離效果[4]。在該方法檢測過程中免疫親和柱的凈化提取尤為重要,使用前親和柱需要回至室溫(25 ℃左右),樣品經過親和柱時候要嚴格控制流速以使其充分反應吸附,洗脫同樣要控制流速以減少目標物流失,造成檢驗結果出現大的偏差[5]。

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