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        酸角殼提取物對(duì)脂肪負(fù)荷大鼠血脂的影響

        2018-09-11 07:45:36李維熙劉冬麗蘇薇薇高永堅(jiān)
        食品與藥品 2018年1期
        關(guān)鍵詞:橄欖油脂肪酶小腸

        李維熙 ,劉冬麗,蘇薇薇,高永堅(jiān)*

        (1. 云南中醫(yī)學(xué)院,云南 昆明 650500;2. 中山大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,廣東 廣州 510275;3. 國(guó)藥集團(tuán)廣東環(huán)球制藥有限公司,廣東 佛山 528305)

        酸角(Tamarindus indicaLinn.),又名酸豆、羅望子,為蘇木科酸角屬植物,原產(chǎn)于非洲熱帶, 現(xiàn)在全世界熱帶、南亞熱帶地區(qū)均有廣泛引種和栽培[1]。我國(guó)云南、四川、海南、廣東、廣西、福建、臺(tái)灣等省均有大范圍種植。酸角在非洲、印度、孟加拉國(guó)、尼日利亞和巴基斯坦等國(guó)家作為傳統(tǒng)常用藥,使用歷史悠久[2]。在我國(guó),酸角也被歷代醫(yī)藥典籍收載,據(jù)《本草綱目拾遺》記載“羅晃子味甘、性溫、止渴退熱,解利風(fēng)邪”,《滇南本草》中也有“酸角味甘、性平。治酒化疾,隔于胃中”的說(shuō)法。多項(xiàng)研究表明,酸角葉、果肉及種子提取物有較好的抗菌、抗真菌、退熱、止痛等活性[3]。目前,我國(guó)與酸角有關(guān)產(chǎn)品主要為普通飲料、糖果與糕點(diǎn),開(kāi)發(fā)利用程度較低。酸角殼為酸角食用和加工中的廢棄物,資源豐富,成本低廉,如能加以利用,將有巨大的開(kāi)發(fā)潛質(zhì)。

        本文通過(guò)脂肪負(fù)荷模型探討酸角殼提取物對(duì)脂肪吸收的影響,并評(píng)價(jià)酸角殼提取物對(duì)腸道脂肪酶活性的抑制作用,旨在為開(kāi)發(fā)酸角殼提供有益的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

        雄性SD大鼠,體重200~240 g,SPF級(jí),7周齡,購(gòu)自廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,動(dòng)物許可證號(hào)SCXK(粵)2014-0002。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物按照美國(guó)NIH要求在清潔級(jí)層流架中飼養(yǎng),環(huán)境溫度22~24 ℃,照明時(shí)間12 h/d(6:00~18:00開(kāi)燈)。適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn)。

        1.2 試劑與材料

        橄欖油(美國(guó)Sigma公司);豬胰蛋白酶(美國(guó)Sigma公司);4-甲基傘形酮(4-MU,美國(guó)Sigma公司);考馬斯亮藍(lán)試劑盒,甘油三酯(triglyceride,TG)試劑盒、游離脂肪酸(free fatty acid, FFA)試劑盒、總膽固醇(total cholesterol,TC)試劑盒及游離膽固醇(free cholesterol, FC)試劑盒(南京建成生物工程研究所)。

        1.3 儀器

        MK3型酶標(biāo)儀(芬蘭Labsystem公司);Ultra-Turrax T8型組織勻漿機(jī)(德國(guó)IKA Labordchnik公司);3-18K型臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)(德國(guó)Sartorius公司);BS210S電子分析天平(德國(guó)Sartorius公司);WH-861型漩渦混合器(太倉(cāng)科教器材廠);超純水儀(德國(guó)Merck Millipore公司);pHS-25型酸度計(jì)(上海偉業(yè)儀器廠);ZF-Ⅱ型紫外分析儀(上海安亭電子儀器廠)。

        1.4 酸角殼提取物的制備

        酸角采自云南西雙版納。準(zhǔn)確稱取一定量,粉碎機(jī)粉碎后回收細(xì)粉化的酸角殼,加入10倍量50 %乙醇,加熱回流提取2 h,過(guò)濾,濾渣再用相同條件提取1次,合并兩次提取物濾液。濾液回收乙醇即得酸角殼提取物浸膏。

        1.5 酸角殼提取物對(duì)脂肪負(fù)荷大鼠血脂的影響

        實(shí)驗(yàn)動(dòng)物隨機(jī)分為模型組、酸角殼提取物100,200 mg/kg組,每組8只。于實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前禁食12 h,各給藥組經(jīng)灌胃給藥,模型組灌胃給等體積蒸餾水。給藥30 min后,分別灌胃給予5 ml/kg橄欖油,并分別于橄欖油負(fù)荷前、負(fù)荷后于2,4,6,8 h經(jīng)尾靜脈取血,按照試劑盒說(shuō)明測(cè)定TG、FFA、TC和FC水平[4]。

        1.6 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)脂肪酶活性的影響

        實(shí)驗(yàn)動(dòng)物隨機(jī)分為模型組、酸角殼提取物100和200 mg/kg組,每組8只。于實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前禁食12 h,各給藥組經(jīng)灌胃給藥,模型組灌胃給等體積蒸餾水。給藥30 min后,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物經(jīng)戊巴比妥鈉麻醉后開(kāi)腹,基于組織部位分析和實(shí)驗(yàn)操作的需要,按小腸長(zhǎng)度從上端起均分3等份剪開(kāi),即小腸上段、中段及下段3個(gè)部位,小腸上段為十二指腸及空腸上段,小腸中段為空腸中段和下段,小腸下段為回腸。分別將腸內(nèi)容物取出,回收于特定容器中,取下小腸內(nèi)黏膜并回收于特定容器。與預(yù)冷生理鹽水按1:9 比例制成勻漿,分別測(cè)定不同部位的小腸內(nèi)黏膜及腸內(nèi)容物中的胰脂肪酶活性,同時(shí)測(cè)定其蛋白質(zhì)含量,并計(jì)算和比較同等蛋白質(zhì)量中的酶活性及抑制率。抑制率計(jì)算公式:抑制率(%)=[(U模型-U給藥)/U模型]×100 %,其中U模型為模型組胰脂肪酶活性,U給藥為給藥組胰脂肪酶活性。

        胰脂肪酶能以4-甲基傘形酮油酸酯(4-MU oleate)為底物,使其裂解并游離出油酸基團(tuán),其產(chǎn)物4-甲基傘形酮(4-MU)具有熒光性質(zhì),經(jīng)355 nm波長(zhǎng)激發(fā),在 460 nm處產(chǎn)生發(fā)射光,測(cè)定4-MU含量可用于表示胰脂肪酶的活性。將小腸內(nèi)容物及內(nèi)黏膜制成的組織勻漿,4 ℃,10000 r/min離心10 min,取上清加入濃度為50 μmol/L 的4-MU oleate DMSO溶液,室溫下反應(yīng)30 min后,加入10.1 mol/L檸檬酸鈉溶液終止反應(yīng)。在激發(fā)波長(zhǎng)355 nm、發(fā)射波長(zhǎng)460 nm下檢測(cè)4-MU的熒光強(qiáng)度。胰脂肪酶活性其中Finitial為反應(yīng)起始時(shí)4-MU的熒光強(qiáng)度,F(xiàn)final為反應(yīng)終止時(shí)4-MU的熒光強(qiáng)度,D為溶液稀釋倍數(shù),T為反應(yīng)持續(xù)時(shí)間,V為溶液體積[5]。

        1.7 酸角殼提取物給藥后不同時(shí)間點(diǎn)對(duì)小腸脂肪酶活性的影響

        實(shí)驗(yàn)動(dòng)物隨機(jī)分為模型組、給藥后0.5,1,2,3 h測(cè)定組,每組8只。于實(shí)驗(yàn)開(kāi)始前禁食12 h,各給藥組經(jīng)灌胃給予酸角殼提取物100 mg/kg,模型組灌胃給等體積蒸餾水。不同測(cè)定組于規(guī)定時(shí)間點(diǎn),照1.7項(xiàng)方法分別取組織,測(cè)定不同部位的小腸內(nèi)黏膜及腸內(nèi)容物中的脂肪酶活性,同時(shí)測(cè)定其蛋白質(zhì)含量[5]。

        1.8 統(tǒng)計(jì)分析

        2 結(jié)果與分析

        2.1 酸角殼提取物對(duì)脂肪負(fù)荷大鼠血脂的影響

        結(jié)果見(jiàn)表1~4。給予大鼠5 ml/kg橄欖油后,各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物TG水平明顯升高,均在負(fù)荷后6 h達(dá)到峰值,隨后逐漸下降,不同劑量的酸角殼提取物均能在一定程度上抑制TG值的上升,其中高劑量酸角殼提取物能顯著抑制橄欖油負(fù)荷后4 h和6 h的TG水平,TG波動(dòng)幅度較小,餐后反應(yīng)曲線比較平穩(wěn)。FFA是脂質(zhì)代謝的中間體,在給予橄欖油之后,各組FFA水平均有所上升,與模型組相比,酸角殼提取物組并不能顯著升高FFA水平。

        橄欖油負(fù)荷后,TC和FC水平無(wú)明顯變化,給予酸角殼提取物后對(duì)TC和FC水平也無(wú)顯著影響。

        表1 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿TG的影響/mmol·L-1(± s,n=8)

        表1 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿TG的影響/mmol·L-1(± s,n=8)

        注:*P<0.05,**P<0.01 vs 模型組

        組別 橄欖油負(fù)荷前 橄欖油負(fù)荷后2 h 橄欖油負(fù)荷后4 h 橄欖油負(fù)荷后6 h 橄欖油負(fù)荷后8 h模型組 0.27±0.06 1.35±0.19 2.75±0.14 3.12±0.25 2.18±0.31酸角殼提取物100 mg/kg組 0.24±0.05 0.96±0.21 2.01±0.38 2.48±0.54 1.72±0.32酸角殼提取物200 mg/kg組 0.45±0.04 0.72±0.18 1.34±0.35* 1.62±0.17** 1.68±0.66

        表2 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿FFA的影響/μEq·L-1(± s,n=8)

        表2 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿FFA的影響/μEq·L-1(± s,n=8)

        組別 橄欖油負(fù)荷前 橄欖油負(fù)荷后2 h 橄欖油負(fù)荷后4 h 橄欖油負(fù)荷后6 h 橄欖油負(fù)荷后8 h模型組 854.7±81.4 1360.0±292.3 1464.7±242.3 2102.3±595.1 2517.3±694.2酸角殼提取物100 mg/kg組 883.0±57.3 1439.4±332.5 2586.5±684.3 2535.2±211.2 2742.2±603.9酸角殼提取物200 mg/kg組 1032.4±55.6 1512.8±353.6 2611.8±949.9 2747.0±852.4 2188.2±502.9

        表3 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿TC的影響/mmol·L-1(± s,n=8)

        表3 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿TC的影響/mmol·L-1(± s,n=8)

        組別 橄欖油負(fù)荷前 橄欖油負(fù)荷后2 h 橄欖油負(fù)荷后4 h 橄欖油負(fù)荷后6 h 橄欖油負(fù)荷后8 h模型組 1.50±0.12 1.51±0.15 1.53±0.16 1.58±0.15 1.59±0.21酸角殼提取物100mg/kg組 1.31±0.28 1.36±0.25 1.43±0.26 1.22±0.13 1.38±0.25酸角殼提取物200mg/kg組 1.50±0.22 1.53±0.14 1.58±0.09 1.59±0.06 1.53±0.10

        表4 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿FC的影響/mmol·L-1(± s,n=8)

        表4 酸角殼提取物對(duì)大鼠橄欖油負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)血漿FC的影響/mmol·L-1(± s,n=8)

        組別 橄欖油負(fù)荷前 橄欖油負(fù)荷后2h 橄欖油負(fù)荷后4h 橄欖油負(fù)荷后6h 橄欖油負(fù)荷后8h模型組 0.33±0.01 0.33±0.02 0.35±0.01 0.40±0.02 0.45±0.04酸角殼提取物100mg/kg組 0.27±0.02 0.28±0.02 0.36±0.03 0.35±0.03 0.38±0.02酸角殼提取物200mg/kg組 0.32±0.01 0.31±0.02 0.38±0.02 0.39±0.03 0.37±0.02

        2.2 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)脂肪酶活性的影響

        結(jié)果見(jiàn)表5~6。小腸內(nèi)容物中的脂肪酶活性遠(yuǎn)高于小腸黏膜中的脂肪酶活性,而小腸上段內(nèi)容物中脂肪酶活性最高,不同劑量的酸角殼提取物對(duì)小腸內(nèi)容物內(nèi)的脂肪酶活性均有較強(qiáng)的抑制作用,并顯示明顯的量效關(guān)系,其中,100 mg/kg酸角殼提取物的脂肪酶抑制率為48 %,200 mg/kg酸角殼提取物的脂肪酶抑制率為72 %。

        表5 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸黏膜中胰脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        表5 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸黏膜中胰脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        組別 小腸上段 小腸中段 小腸下段模型組 3222.1±465.3 2211.2±433.1 1045.0±239.4酸角殼提取物100mg/kg組 2694.7±369.2 1325.2±262.7 852.9±202.4酸角殼提取物200mg/kg組 2757.5±334.1 1984.2±177.3 959.9±124.7

        表6 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)容物中胰脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        表6 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)容物中胰脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        注:*P<0.05,**P<0.01 vs 模型組

        組別 小腸上段 小腸中段 小腸下段模型組 13341.1±839.4 3340.4±463.2 163.2±42.0酸角殼提取物100 mg/kg組 7646.1±594.5*1561.6±189.2* 133.1±46.3酸角殼提取物200 mg/kg組 4670.4±485.1**2127.9±597.7 150.5±85.4

        2.3 酸角殼提取物給藥后不同時(shí)間點(diǎn)對(duì)小腸脂肪酶活性的影響

        結(jié)果見(jiàn)表7~8。酸角殼提取物在給藥30 min和1 h后顯示較強(qiáng)的小腸脂肪酶的抑制作用,隨后抑制作用逐漸減弱,在給藥3 h后抑制作用基本消失。

        表7 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)黏膜中脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        表7 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)黏膜中脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        注:*P<0.05 vs 模型組

        組別 給藥量/mg·kg-1 小腸上段 小腸中段 小腸下段模型組 ─ 5498.0±447.0 2336.1±276.8 710.0±150.5給藥后30min 100 4342.0±603.2 1090.5±168.9*1311.7±324.4給藥后1 h 100 6475.0±754.6 2156.9±262.2 996.0±210.7給藥后2 h 100 6346.5±653.3 2360.4±248.5 1036.9±200.8給藥后3 h 100 5081.7±268.3 2784.0±371.6 1039.2±262.1

        表8 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)容物中脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        表8 酸角殼提取物對(duì)大鼠小腸內(nèi)容物中脂肪酶活性的影響/U·g-1蛋白質(zhì)(± s,n=8)

        注: **P<0.01 vs 模型組

        組別 給藥量/mg·kg-1 小腸上段 小腸中段 小腸下段模型組 ─ 27222.0±2393.1 10317.7±1724.21542.8±634.4給藥后30 min 100 5657.8±1000.6**2490.4±944.6**1311.7±349.9給藥后1 h 100 12530.5±1122.1**5039.0±631.5**1045.3±265.3給藥后2 h 100 15962.7±1939.7**6657.2±1270.3 1587.6±591.3給藥后3 h 100 20413.6±1495.9 9810.6±856.8 935.9±224.8

        3 討論

        本文結(jié)果表明,大鼠TG水平隨給予脂肪負(fù)荷上升,并在負(fù)荷后6 h達(dá)到峰值,而在脂肪負(fù)荷前后,各組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的TC與FC水平均無(wú)明顯變化。這可能是由于TG可源于食物中脂肪的吸收與分解,因此在給予脂肪負(fù)荷后,TG水平顯著升高;而TC和FC大部分來(lái)源于體內(nèi)合成,受單次進(jìn)食影響較小。與模型組比較,酸角殼提取物能降低脂肪負(fù)荷后不同時(shí)間點(diǎn)的TG水平,使餐后TG波動(dòng)趨于平緩,提示酸角殼提取物能抑制餐后TG上升。

        FFA是TG分解的中間體,給予脂肪負(fù)荷后,我們觀察到在TG水平上升同時(shí),F(xiàn)FA水平隨之增加,但模型組與酸角殼提取物組之間的FFA水平無(wú)顯著性差異。酸角殼提取物在改善餐后TG水平的同時(shí),不會(huì)顯著升高FFA水平,提示酸角殼提取物可能是通過(guò)抑制食物中脂肪水解吸收降低餐后TG水平。

        胰脂肪酶能將食物中的脂肪水解,是食物中的脂肪在腸道消化吸收的關(guān)鍵酶之一。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,酸角殼提取物能顯著抑制大鼠小腸胰脂肪酶活性,提示酸角殼提取物通過(guò)抑制胰脂肪酶阻礙食物中的脂肪水解和吸收,進(jìn)而降低餐后TG水平。酸角殼提取物的胰脂肪酶抑制活性在給藥后30 min到1 h活性最強(qiáng)。

        綜上所述,本文通過(guò)脂肪負(fù)荷模型探討了酸角殼提取物對(duì)餐后血脂的影響,同時(shí)評(píng)價(jià)了酸角殼提取物對(duì)胰脂肪酶活性的抑制活性,結(jié)果表明,酸角殼提取物能顯著降低脂肪負(fù)荷后各時(shí)間點(diǎn)的TG水平,并能顯著抑制小腸胰脂肪酶活性,提示酸角殼提取物通過(guò)抑制小腸胰脂肪酶活性,減少食物中脂肪的吸收,從而降低餐后TG水平。脂質(zhì)代謝紊亂,特別是餐后脂質(zhì)代謝紊亂常見(jiàn)于肥胖、高脂血癥、代謝綜合征和2型糖尿病,與這些疾病有著密切的關(guān)系[6]。同時(shí),餐后血脂異常還對(duì)動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生與發(fā)展起著尤為重要的作用[7],特別是餐后高TG無(wú)論對(duì)于代謝異常患者或正常人,均是動(dòng)脈粥樣硬化以及心血管疾病的高風(fēng)險(xiǎn)因素[8-9]。隨著生活方式改變,人們的脂肪消費(fèi)水平日漸增加,脂質(zhì)代謝紊亂發(fā)病率也隨之上升。研究表明,餐后血脂異常早于空腹血脂異常出現(xiàn),積極調(diào)節(jié)和治療餐后高甘油三酯血癥有助于改善代謝綜合征,并能預(yù)防動(dòng)脈粥樣硬化等心血管疾病的發(fā)生[10-11]。酸角殼是酸角果實(shí)食用和加工的副產(chǎn)物,來(lái)源豐富,目前尚未得到充分研究,具有較好的開(kāi)發(fā)前景,同時(shí),其作用機(jī)制也有待深入研究。

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