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        轉(zhuǎn)基因番木瓜檢測方法的建立

        2018-09-10 00:38:39王恒波余澤懷肖乃衍張華陳平華
        江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報 2018年5期
        關(guān)鍵詞:篩選檢測

        王恒波 余澤懷 肖乃衍 張華 陳平華

        關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)基因番木瓜;篩選;定性聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR);檢測

        中圖分類號:S667.9

        文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A

        文章編號: 1000-4440(2018) 05-1198-03

        番木瓜(Carica papaya)是一種有較高食用和藥用價值的草本果樹,番木瓜蛋白酶廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、美容、日化品等行業(yè)。番木瓜環(huán)斑花葉病毒(PRSV)是危害番木瓜生產(chǎn)的一種世界性病毒,植株受到侵染后,無法進(jìn)行有效治療,目前的化學(xué)殺菌劑不能有效控制其蔓延。培育抗病品種是防治環(huán)斑花葉病毒最緊迫的任務(wù)之一,但番木瓜栽培品種中缺乏有效抗病基因資源。直到1986年,Abel等報道了病毒基因轉(zhuǎn)入寄主植物,導(dǎo)致植物產(chǎn)生抗性的現(xiàn)象,受此啟發(fā),育種家們開始使用轉(zhuǎn)基因技術(shù)解決番木瓜抗環(huán)斑花葉病毒問題,抗環(huán)斑病毒的轉(zhuǎn)基因番木瓜應(yīng)運(yùn)而生。

        目前,有3個轉(zhuǎn)基因番木瓜轉(zhuǎn)化事件存在。第一,20世紀(jì)90年代初夏威夷大學(xué)的Fitch等,將一種環(huán)斑花葉病毒(PRSV)編碼的外殼蛋白(CP)基因轉(zhuǎn)入番木瓜,經(jīng)過逐步雜交育種,得到了轉(zhuǎn)基因番木瓜Rainbow,1998年5月在夏威夷正式投入商業(yè)化生產(chǎn)。第二,利用PRSV優(yōu)勢毒株Ys的復(fù)制酶(RP)基因,獲得高抗Ys、Vb、Sm等株系的轉(zhuǎn)基因番木瓜華農(nóng)一號,于2006年獲得農(nóng)業(yè)部的安全生產(chǎn)證書。第三,將PRSV YK毒株的CP基因轉(zhuǎn)入栽培品種臺農(nóng)2號,于2001年開始進(jìn)行田間試驗和生產(chǎn)安全評估試驗。

        目前,針對番木瓜轉(zhuǎn)基因成分篩查,還沒有形成統(tǒng)一的檢測方法,在檢測相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)中,關(guān)于胭脂堿合成酶基因啟動子(NOS-P)和CP基因檢測引物篩選和驗證的相關(guān)報道較少。本研究擬針對世界上現(xiàn)有轉(zhuǎn)基因番木瓜的CP基因和NOS-P,設(shè)計相應(yīng)的檢測引物,建立適合番木瓜轉(zhuǎn)基因成分篩查的方法,為轉(zhuǎn)基因標(biāo)識制度的順利執(zhí)行提供技術(shù)支撐。

        1 材料與方法

        1.1 試驗材料

        轉(zhuǎn)基因番木瓜(GMYK系列的16-0-1和Rainbow、華農(nóng)一號)、轉(zhuǎn)基因水稻(科豐6號、TT51-1)、轉(zhuǎn)基因大豆(GTS40-3-2、MON89788、A2704、A5547-127)、轉(zhuǎn)基因玉米(MON810、MOIN863、NK603、T25、TC1507、Btll、Bt176、GA21)和非轉(zhuǎn)基因番木瓜(紅妃2號)等試驗材料.均由農(nóng)業(yè)部甘蔗及制品質(zhì)量監(jiān)督檢驗測試中心保存。

        1.2 試驗方法

        1.2.1 試劑 PCR反應(yīng)試劑SYBR Premix、ExTaq酶、dNTPs、Buffer均購自TaKaRa公司,100 bp Ladder DNA mark-er和植物基因組提取試劑盒(DP305)購自天根生化科技(北京)有限公司。

        1.2.2 PCR檢測引物 查閱NCBI網(wǎng)站上GenBank數(shù)據(jù)庫中CP相關(guān)的核苷酸序列(編號為FJ467933.1、AF196839.1和YK X78557.1),利用Primer5.O軟件分別設(shè)計番木瓜環(huán)斑病毒CP基因和NOS-P的特異性檢測引物。內(nèi)源基因Papa-in檢測引物采用文獻(xiàn)所述方法進(jìn)行設(shè)計。試驗中所用引物均由南京金絲瑞生物工程有限公司合成。

        1.2.3 PCR反應(yīng)體系與程序定性和定量PCR反應(yīng)體系以及擴(kuò)增程序參照文獻(xiàn)的方法進(jìn)行設(shè)計。退火溫度的優(yōu)化:在梯度PCR儀上設(shè)置10個退火溫度,分別為50.2℃、50.7℃、51.6℃、52.7℃、54.0℃、55.4℃、56.8℃、58.1℃、59.2℃、60.O℃。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 內(nèi)源基因Papain的特異性PCR擴(kuò)增

        番木瓜果實中富含多糖、果膠、酚類等物質(zhì),極易對Taq酶的活性產(chǎn)生影響。通過對番木瓜內(nèi)源基因Papain,的檢測,來判斷提取DNA的質(zhì)量。所有番木瓜樣品均能獲得與預(yù)期大小(211bp)相符的擴(kuò)增產(chǎn)物,表明番木瓜DNA適合PCR檢測。

        2.2 利用定量PCR染料法對CP基因和NOS-P檢測引物進(jìn)行驗證

        基于CP基因的保守序列,設(shè)計5對檢測引物,在相同反應(yīng)條件下,依據(jù)Ct值的大小、熔解曲線形狀及熔解曲線高度,篩選出轉(zhuǎn)基因番木瓜最佳的檢測引物。CP-4引物起峰最早,Ct值為24.87,CP-2引物、CP-1引物、CP-3引物、CP-5引物的Ct值分別為28.60、27.02、26.62、25.76。分析5對引物熔解曲線的形狀,只有引物CP-4是典型的單峰型曲線,最適合用作CP基因的檢測引物,其他引物都存在多峰現(xiàn)象,表明存在多個非特異性擴(kuò)增片段。同時,基于NOS-P序列,設(shè)計了1對檢測引物,進(jìn)行定量PCR擴(kuò)增,NOS-P引物的熔解曲線也是典型的單峰型曲線,適合作為NOS-P的檢測引物。

        2.3 不同退火溫度下Papain、CP基因和NOS-P的PCR檢測條件優(yōu)化

        同種引物在不同退火溫度下產(chǎn)生的條帶間存在強(qiáng)弱變化。隨著溫度的逐漸升高,Papain基因產(chǎn)生的特異性目的條帶沒有發(fā)生任何變化,說明該引物設(shè)計合理且擴(kuò)增效率高。NOS-P檢測引物產(chǎn)生的特異性條帶,隨著溫度的逐漸升高,目的條帶逐漸減弱,當(dāng)退火溫度達(dá)到58.1℃時,目的條帶消失,說明該引物退火溫度范圍窄,擴(kuò)增效率低。CP基因檢測引物產(chǎn)生的特異性目的條帶,隨著溫度的升高逐漸增強(qiáng),當(dāng)退火溫度為56.8~60.O℃時,產(chǎn)生的目的條帶亮度最強(qiáng)。為了防止低含量的轉(zhuǎn)基因番木瓜在實際檢測過程中漏檢,本研究經(jīng)過篩選得出,Papain,基因、CP基因和NOS-P的最佳退火溫度分別為54.O℃、58.0℃、54.0℃。

        2.4 CP基因和NOS-P檢測引物特異性的PCR驗證

        針對CP基因的特異性檢測,只有轉(zhuǎn)基因番木瓜16-0-1和Rainbow出現(xiàn)了預(yù)期的368 bp的目的片段,華農(nóng)一號未檢測出目的條帶。針對NOS-P的特異性檢測,轉(zhuǎn)基因番木瓜16-0-1、Rainbow和華農(nóng)一號均出現(xiàn)了預(yù)期的173 bp的目的片段,其他測試材料均未檢測到任何片段。本研究的檢測結(jié)果與韓建勛等的結(jié)果相符,表明本研究設(shè)計與篩選的引物在不同轉(zhuǎn)基因材料中具有較高的特異性。

        2.5 檢測引物的靈敏度

        將轉(zhuǎn)基因番木瓜16-0-1和非轉(zhuǎn)基因番木瓜紅妃2號的DNA溶液(初始濃度均為100 ng/μl)按不同比例混合,配制成轉(zhuǎn)基因番木瓜DNA相對含量為20.0%、5.0%、1.0%、0.5%、0.1%的樣品,在CP基因和NOS-P已經(jīng)優(yōu)化好的退火溫度58.0℃、54.0℃下進(jìn)行PCR擴(kuò)增。本研究篩選出的檢測引物具有很高的靈敏度,在相對含量為0.1%以上的樣品中均能檢測出特異性目的條帶。

        3 討論

        中國對轉(zhuǎn)基因生物及產(chǎn)品實行強(qiáng)制標(biāo)識制度,因此,需要檢測機(jī)構(gòu)對市場上的番木瓜進(jìn)行轉(zhuǎn)基因成分例行監(jiān)測,以維護(hù)中國消費(fèi)者的選擇權(quán)和知情權(quán)。根據(jù)檢測的靶序列差異、外源基因與質(zhì)粒載體上的組合以及植物基因組上的整合位點,檢測方法分為篩選檢測、基因特異性檢測、結(jié)構(gòu)特異性檢測、轉(zhuǎn)化事件特異性檢測。一般情況下,篩選檢測以啟動子、終止子等通用元件為檢測對象,初步判斷是否含有外源基因。番木瓜轉(zhuǎn)基因成分篩查通常以CaMV35S啟動子、NOS-P、NOS終止子等元件為靶序列?;蛱禺愋詸z測以轉(zhuǎn)入的外源基因為靶基因,例如常見的目的基因、標(biāo)記基因和抗性基因(CP、RP、GUS、NPTⅡ)。對于轉(zhuǎn)基因番木瓜,除了華農(nóng)一號轉(zhuǎn)入的是RP基因外,其他轉(zhuǎn)基因番木瓜轉(zhuǎn)入的都是CP基因,未見關(guān)于NOS-P和CP基因檢測引物篩選和驗證的相關(guān)報道。因此,本研究對轉(zhuǎn)基因番木瓜CP基因和NOS-P分別進(jìn)行序列比對,在其保守序列上設(shè)計引物,擴(kuò)大檢測的覆蓋范圍,更好地執(zhí)行轉(zhuǎn)基因生物標(biāo)識制度。

        目前,中國的轉(zhuǎn)基因檢測方法大部分是通過定性PCR方法對轉(zhuǎn)基因生物進(jìn)行判定,部分檢測引物存在特異性差、靈敏度低的問題。加之,瓊脂糖凝膠電泳分離技術(shù)的局限性,這就要求制定檢測標(biāo)準(zhǔn)和篩選PCR檢測引物的科研人員,不能僅停留在原有的篩選定性PCR引物上,需要向科學(xué)化、實用化的方向進(jìn)行驗證。本研究通過定量PCR染料法,對CP基因和NOS-P的定性檢測引物進(jìn)行熔解曲線分析,對篩選到的引物進(jìn)行特異性驗證,檢測結(jié)果與姜大剛等、Wall等、韓建勛等描述的質(zhì)粒載體結(jié)構(gòu)相同。同時,以5種不同相對含量的轉(zhuǎn)基因番木瓜為對照,檢測靈敏度可以達(dá)到0.1%水平。

        綜上所述,本研究建立的轉(zhuǎn)基因番木瓜檢測引物篩選方法,為現(xiàn)有商業(yè)化轉(zhuǎn)基因番木瓜的外源基因和元件篩查檢測奠定了基礎(chǔ)。同時,也構(gòu)建了轉(zhuǎn)基因番木瓜的基礎(chǔ)檢測體系與方法,為轉(zhuǎn)基因番木瓜標(biāo)識制度的順利執(zhí)行提供了技術(shù)支撐。但是,隨著轉(zhuǎn)基因番木瓜轉(zhuǎn)化事件的逐漸增多,現(xiàn)有檢測方法也存在著檢測參數(shù)多、操作繁瑣、靈敏度低等缺點。因此,需要逐步建立起各種轉(zhuǎn)基因番木瓜轉(zhuǎn)化事件定性和定量的檢測體系,滿足未來監(jiān)管的需要。

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