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        亞硝酸鈉對自然發(fā)酵哈爾濱風(fēng)干腸微生物生長、脂肪氧化及揮發(fā)性化合物的影響

        2018-08-31 02:32:14劉鵬雪孔保華
        食品科學(xué) 2018年16期

        劉鵬雪,孔保華*

        亞硝酸鈉(NaNO2)是肉制品中一種非常重要的添加成分,具有很好的呈色和抗氧化作用,可以賦予肉制品特有的紅色,抑制脂肪氧化,有效阻止“過熱味”的產(chǎn)生,使肉制品產(chǎn)生獨特的風(fēng)味[1]。例如其對脂質(zhì)氧化抑制作用可以減少醛、醇、酮和酯等物質(zhì)產(chǎn)生,減少脂肪氧化酸敗味[2]。此外,NaNO2還具一定的抑菌作用,可以抑制肉制品中的微生物生長,特別對可以產(chǎn)生毒素的肉毒梭狀芽孢桿菌具有很好的抑制作用。楊君娜等[3]研究了NaNO2添加量對薩拉米香腸色澤及產(chǎn)品質(zhì)量的影響,結(jié)果表明,NaNO2添加量越大,薩拉米的顏色越好,脂肪氧化所產(chǎn)生的丙二醛含量越少,對大腸桿菌生長的抑制作用越顯著(P<0.05)。向廷建等[4]對NaNO2在中式香腸中所發(fā)揮的抑制脂肪氧化的作用進(jìn)行了研究,結(jié)果表明,當(dāng)NaNO2添加量為0.15 g/kg時,中式香腸的氧化程度遠(yuǎn)小于未添加亞硝酸鹽的對照組(P<0.05),但與NaNO2添加量為減少50%的實驗組相比產(chǎn)品氧化程度差異不顯著(P>0.05)。董慶利等[5]研究了不同NaNO2添加量條件下低溫蒸煮香腸的風(fēng)味,結(jié)果表明,NaNO2的添加使產(chǎn)品的腌肉風(fēng)味得到了改善,當(dāng)NaNO2添加量為0.15 g/kg時,多種風(fēng)味物質(zhì)的相對含量明顯增加。Hospital等[6]研究了不同亞硝酸鹽和硝酸鹽添加量對發(fā)酵風(fēng)干腸中微生物以及揮發(fā)性化合物的影響,結(jié)果表明,亞硝酸鹽/硝酸鹽濃度對風(fēng)干腸中乳酸菌的生長無顯著影響(P>0.05),但可以顯著影響腸桿菌科的生長(P<0.05),添加較低濃度的亞硝酸鹽/硝酸鹽增加了由碳水化合物發(fā)酵以及氨基酸降解得到的揮發(fā)性化合物的濃度。Berardo等[7]研究了抗壞血酸鈉和NaNO2對發(fā)酵風(fēng)干香腸中蛋白質(zhì)和脂質(zhì)氧化的影響,結(jié)果表明,抗壞血酸鈉和NaNO2均能夠減少風(fēng)干腸中丙二醛的形成,但它們的組合添加將導(dǎo)致產(chǎn)品中形成更多的羰基化合物。

        盡管NaNO2在肉制品加工中非常重要,但是NaNO2參與亞硝基化合物如N-亞硝胺的形成,其對人體具有致突變、致畸和致癌作用,因此,使肉制品的消費(fèi)成為具有爭議的問題。新鮮的紅肉和加工肉制品已經(jīng)被指出可以增加患癌癥的風(fēng)險,這可能與鮮肉中的血紅素鐵有關(guān),血紅素鐵可以促進(jìn)胃腸道中亞硝基化合物的合成,而向肉中添加NaNO2可以增強(qiáng)該反應(yīng)[8]。因此,NaNO2在食品工業(yè)中的使用受到嚴(yán)格限制。自從發(fā)現(xiàn)NaNO2和N-亞硝胺之間存在一定的關(guān)聯(lián)時,對NaNO2天然替代物的研究便受到越來越多的關(guān)注。最近提出的替代方案包括使用植物提取物(如芹菜)和天然抗微生物劑(如乳酸鹽、細(xì)菌素或直接添加生物保護(hù)性乳酸菌培養(yǎng)物)等[6,9]。哈爾濱風(fēng)干腸是一種傳統(tǒng)的中式自然發(fā)酵香腸,因其獨特的質(zhì)地和風(fēng)味以及較短的生產(chǎn)周期而廣受消費(fèi)者喜愛[10]。

        盡管有大量關(guān)于肉制品中NaNO2替代物的研究,但迄今為止還沒有發(fā)現(xiàn)任何一個單一的化合物可以履行其所有的功能。因此,NaNO2在肉制品加工中仍是常見的添加劑。然而,為了減少人體內(nèi)NaNO2的過量積累以及亞硝胺的形成,必須控制其攝入量和殘留水平,因此有必要評估降低NaNO2的添加量對肉制品所產(chǎn)生的影響。本實驗研究不同添加水平的NaNO2對自然發(fā)酵哈爾濱風(fēng)干腸微生物、NaNO2殘留量、顏色、脂肪氧化及揮發(fā)性化合物的影響,為進(jìn)一步進(jìn)行NaNO2替代物的研究提供理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        原料肉 哈爾濱北大荒肉業(yè);輔料 市購;NaNO2(食品級) 哈爾濱億人食品添加劑公司;亞硝酸鹽試劑盒 南京建成生物工程研究所;營養(yǎng)瓊脂、結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂 北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;MRS(Man-Rogosa-Sharpe)培養(yǎng)基 廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;鹽酸、丙酮、甲醇(均為分析純)哈爾濱盛達(dá)化驗儀器銷售公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        AL-104型精密電子天平 上海精科實業(yè)有限公司;FE20K型pH計 上海梅特勒-托利多儀器設(shè)備有限公司;722可見光分光光度計 上海精宏實驗設(shè)備有限公司;ZE-6000電子色差儀 日本電色工業(yè)株式會社;Aqua Lab水分活度測定儀 美國Decagon公司;GC-3L小型灌腸機(jī) 瑞安市鴻飛機(jī)械有限公司;6890氣相色譜儀/5973質(zhì)譜儀 美國Agilent公司。

        1.3 方法

        1.3.1 自然發(fā)酵哈爾濱風(fēng)干腸的制備

        原料:精瘦肉(豬臀肉)4.5 kg、肥肉(豬背膘)0.5 kg。輔料:鹽0.125 kg、曲酒0.05 kg、綿白糖0.05 kg、姜粉0.025 kg、味素0.025 kg、淀粉0.025 kg、純凈水0.05 kg、混合調(diào)料(花椒、大料、桂皮、丁香等)0.15 kg,NaNO2根據(jù)實驗設(shè)計添加,其添加量按瘦肉計分別為0.15、0.10 g/kg和0.05 g/kg以及不添加亞硝酸鹽的對照組。

        工藝要點:瘦肉剔除淋巴、筋腱、血管等結(jié)締組織并切丁后,加入鹽和用純凈水溶解的NaNO2進(jìn)行腌制,肥肉切丁,將腌制好的瘦肉丁和肥肉丁混合均勻后,加入調(diào)味料混勻,進(jìn)行灌制,灌制好的風(fēng)干腸在(25±2)℃條件下風(fēng)干24 h,相對濕度為30%~50%,然后轉(zhuǎn)移到恒溫恒濕箱中進(jìn)行發(fā)酵,溫度為(25±2)℃,相對濕度為70%~75%,在發(fā)酵0、3、6、9 d和12 d測定pH值、水分活度、微生物、NaNO2殘留量、紅度值a*、亮度值L*和脂肪氧化值,在0 d和12 d測定揮發(fā)性化合物的相對含量。

        1.3.2 pH值和水分活度的測定

        pH值:參照GB/T 9695.5—2008《肉與肉制品pH測定》進(jìn)行測定;水分活度:將剪碎的風(fēng)干腸鋪滿樣品盒底部后推入水分活度儀進(jìn)行測定。

        1.3.3 微生物的測定

        稱取10 g剪碎的風(fēng)干腸,加入90 mL生理鹽水(0.85%),于4 ℃條件下放置30 min,從該樣液中制備連續(xù)10 倍的稀釋液進(jìn)行菌落計數(shù)。參照Hospital等[6]的方法,使用平板計數(shù)瓊脂進(jìn)行總菌落計數(shù)的測定,MRS培養(yǎng)基進(jìn)行乳酸菌菌落計數(shù)的測定,雙層結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂進(jìn)行大腸桿菌菌落計數(shù)的測定。

        1.3.4 NaNO2殘留量的測定

        10 g剪碎的風(fēng)干腸,加入90 mL純凈水,于4 ℃條件下放置30 min,取上清液依次加入測試盒中的試劑,0.5 cm光徑比色杯,于波長550 nm處測吸光度,通過比色可間接換算NaNO2殘留量,按公式(1)計算:

        式中:標(biāo)準(zhǔn)品濃度為100 μmol/L。

        1.3.5 風(fēng)干腸顏色的測定

        通過ZE-6000色差計進(jìn)行測定。儀器經(jīng)零點校正和白板(L*=95.26、a*=-0.89、b*=1.18)校正后,將去除腸衣和肥肉的中心樣品混勻,鋪滿色差杯底部,置于載物臺測定風(fēng)干腸的L*值和a*值,每個樣品同一方向旋轉(zhuǎn)3 次,測定3 次后輸出平均值并記錄。

        1.3.6 脂肪氧化的測定

        1.3.6.1 過氧化物值(peroxide value,POV)的測定

        參照Vareltzis等[11]的方法并稍作修改,準(zhǔn)確稱取2.0 g剪碎的樣品放入50 mL離心管中,加入15 mL貯藏于4 ℃的氯仿-甲醇(2∶1,V/V)溶液11 000 r/min高速均質(zhì)30 s,再加入3 mL體積分?jǐn)?shù)為0.5%的NaCl溶液,4 ℃、4 000×g離心5 min,樣品分為兩相,從下層液相中取出5 mL溶液轉(zhuǎn)移到潔凈試管中,加入5 mL貯藏于4 ℃的氯仿-甲醇(2∶1,V/V)溶液,渦旋混勻3 s,再加入25 μL氯化亞鐵溶液和25 μL硫氰酸銨(30%)溶液,渦旋混勻3 s,室溫靜置5 min,取上清液在波長500 nm處測吸光度,以還原鐵粉的吸光度做標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算樣品的POV。

        1.3.6.2 硫代巴比妥酸反應(yīng)產(chǎn)物(thiobarbituric acid reactive substances,TBARS)的測定

        參照Wang等[12]的方法,略作修改,準(zhǔn)確稱取2.0 g剪碎的樣品放入試管中,加入3 mL硫代巴比妥酸溶液和17 mL三氯乙酸-鹽酸溶液,混勻后沸水浴中加熱30 min,取出后迅速冷卻至室溫,吸取5 mL反應(yīng)后的上清液加入等體積的氯仿,1 000×g離心10 min,于波長532 nm處測量上清液的吸光度。TBARS以每千克脂質(zhì)氧化樣品中丙二醛的質(zhì)量表示,按公式(2)計算:

        式中:A532nm為樣品的吸光度;Ms為樣品的質(zhì)量/g。

        1.3.7 揮發(fā)性化合物的測定

        采用頂空固相微萃取(solid-phase microextraction,SPME)對自然發(fā)酵風(fēng)干腸中的揮發(fā)性化合物進(jìn)行提取,利用氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)聯(lián)用儀進(jìn)行風(fēng)味成分分析。在分析取樣之前,萃取頭在GC進(jìn)樣口進(jìn)行老化處理,老化溫度為280 ℃,時間為60 min。取5 g剪碎的風(fēng)干腸裝入20 mL樣品瓶中,放在取樣臺上于60 ℃條件下平衡20 min后,將萃取頭插入到樣品瓶中,推出纖維頭,吸附40 min。

        利用GC-MS進(jìn)行揮發(fā)性化合物的分析檢測,參照宋永等[13]的方法,將樣品瓶中已經(jīng)吸附好的纖維頭抽回,并將萃取頭從樣品瓶中拔出,進(jìn)而插入GC儀并推出纖維頭,260 ℃解吸5 min。GC條件:HP-1毛細(xì)管柱(30 m×250 μm,1.0 μm);分流進(jìn)樣,分流比為10∶1;載氣為高純氦氣,流速1.0 mL/min;接口溫度280 ℃;兩段式程序升溫:起始溫度38 ℃,保持2 min,然后以3 ℃/min升溫至100 ℃;再以10 ℃/min升溫至240 ℃,并保持2 min。使用質(zhì)量選擇性檢測器得到MS圖。MS條件:電子電離源;電子能量70 eV;傳輸線溫度250 ℃;離子源溫度200 ℃;激活電壓350 V;質(zhì)量掃描范圍m/z 30~450。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        共進(jìn)行3 批實驗,每個實驗進(jìn)行3 次重復(fù),結(jié)果表示為 ±s。數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析采用Statistix 8.1(分析軟件,StPaul,MN)軟件包中Linear Models程序進(jìn)行,差異顯著性(P<0.05)分析使用Tukey HSD程序,采用Sigmaplot 12.5軟件作圖。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 pH值和水分活度測定結(jié)果

        表1 風(fēng)干腸發(fā)酵過程中pH值和水分活度的變化Table 1 Changes in pH and water activity in air-dried sausages during fermentation

        如表1所示,4 組風(fēng)干腸的pH值均從6.23左右顯著降低到5.53左右(P<0.05),0~3 d下降速率較快,3~12 d下降速率減慢,這可能是由于在發(fā)酵初期一些優(yōu)勢乳酸菌的代謝產(chǎn)物乳酸促進(jìn)了風(fēng)干腸pH值的下降,而在后期由于微生物的代謝產(chǎn)生了一些堿性物質(zhì),如氨和三甲胺等,阻礙了風(fēng)干腸pH值的降低[14]。對于水分活度而言,4 組風(fēng)干腸的水分活度均從0.94左右顯著降低到0.80左右(P<0.05),且下降趨勢相似(P>0.05),0~3 d下降速率較慢,3~12 d下降速率較快,這可能與pH值的變化有關(guān),風(fēng)干腸pH值的降低會使肌肉蛋白發(fā)生變性,促進(jìn)蛋白質(zhì)的凝膠化,從而使蛋白的持水性降低[15]。在本實驗范圍內(nèi),添加不同水平亞硝酸鹽的風(fēng)干腸的pH值和水分活度在風(fēng)干發(fā)酵期間均無顯著性差異(P>0.05),說明NaNO2的添加對風(fēng)干腸的pH值和水分活度無顯著性影響(P>0.05)。其他研究者也報道了類似的結(jié)果。Maha等[16]研究了亞硝酸鹽和檸檬酸對牛肉香腸化學(xué)成分及pH值的影響,結(jié)果表明,添加NaNO2的牛肉香腸的pH值與未添加NaNO2的牛肉香腸相比無顯著性差異(P>0.05)。Hospital等[6]也研究發(fā)現(xiàn),不同NaNO2濃度的風(fēng)干腸在風(fēng)干發(fā)酵期間pH值和水分活度均無顯著性差異(P>0.05)。

        2.2 微生物分析

        圖1 風(fēng)干腸發(fā)酵過程中典型的微生物菌落總數(shù)的變化Fig. 1 Changes in total bacterial count in sausages during fermentation

        如圖1所示,NaNO2添加量對風(fēng)干腸中總菌落數(shù)和乳酸菌菌落數(shù)無顯著影響(P>0.05),各組風(fēng)干腸的總菌落數(shù)均在0~3 d內(nèi)迅速增加并在3~6 d內(nèi)保持穩(wěn)定,6~12 d呈逐漸下降趨勢,乳酸菌菌落數(shù)均在0~6 d內(nèi)呈持續(xù)上升趨勢并在第6天時達(dá)到最大值,隨后呈下降趨勢,這可能與風(fēng)干腸中水分活度變化有關(guān),王俊等[17]指出,當(dāng)水分活度低于0.90時,大部分腐敗菌便不能生長。但NaNO2添加量對大腸桿菌菌落數(shù)有顯著影響(P<0.05),主要體現(xiàn)在發(fā)酵初期(0~3 d),當(dāng)NaNO2添加量為0.05 g/kg時,雖然在整個風(fēng)干發(fā)酵期間其大腸桿菌菌落數(shù)均低于對照組,但在0~3 d內(nèi)仍有所增加,說明當(dāng)NaNO2添加量為0.05 g/kg時,大腸桿菌仍能生長,而當(dāng)NaNO2添加量大于0.05 g/kg時,風(fēng)干腸中的大腸桿菌菌落數(shù)在0~12 d內(nèi)均呈現(xiàn)下降的趨勢,且添加量越大,對大腸桿菌生長的抑制作用越顯著(P<0.05)。Hospital等[6]研究發(fā)現(xiàn),亞硝酸鹽的濃度不影響風(fēng)干腸中乳酸菌的生長,但當(dāng)亞硝酸鹽添加量較低時,腸桿菌科在風(fēng)干腸的發(fā)酵期間數(shù)量增加,這與本研究結(jié)果一致。

        2.3 NaNO2殘留量分析

        圖2 風(fēng)干腸發(fā)酵過程中NaNO2殘留量的變化Fig. 2 Changes in residual sodium nitrite in sausages during fermentation

        添加到肉制品中的亞硝酸鹽一部分通過螯合氧被氧化成硝酸鹽,一部分與肌紅蛋白結(jié)合形成熱穩(wěn)定的亞硝基肌紅蛋白,其他的部分還可以與肉中的蛋白質(zhì)和脂肪或其他物質(zhì)結(jié)合[18]。如圖2所示,添加了NaNO2的3 組風(fēng)干腸在0~3 d內(nèi)NaNO2殘留量均超出了國家標(biāo)準(zhǔn)所限定的最大殘留量30 mg/kg,且NaNO2殘留量在0~6 d下降速率較快,6~12 d下降速率較慢,F(xiàn)ernández-López等[19]研究西班牙發(fā)酵風(fēng)干腸中的NaNO2殘留量的變化,其研究結(jié)果與本研究一致。此外,發(fā)酵結(jié)束后,3 組添加NaNO2的風(fēng)干腸之間的NaNO2殘留量差異不顯著(P>0.05),不受NaNO2添加量的影響,Hospital等[6]指出,發(fā)酵肉制品中亞硝酸鹽的殘留量與添加量沒有明顯的相關(guān)性。但有學(xué)者研究表明風(fēng)干腸中亞硝胺的生成量與NaNO2添加量呈正相關(guān)[20]。從圖2還可以看出,對照組風(fēng)干腸中NaNO2殘留量在0~3 d內(nèi)呈上升趨勢,隨后呈逐漸下降趨勢,含量的增加可能是由于水分含量降低所導(dǎo)致。與對照組相比,3 組添加NaNO2的風(fēng)干腸在第12天時其NaNO2殘留量約為對照組樣品的2~3 倍。較高的NaNO2殘留量易導(dǎo)致產(chǎn)品中形成更多的N-亞硝胺,特別是將其加熱時[6]。

        2.4 顏色變化結(jié)果

        表2 風(fēng)干腸發(fā)酵過程中a*值和L*值的變化Table 2 Changes in a* values and L* values of sausages during fermentation

        肉制品在腌制的過程中,由于肌紅蛋白發(fā)生氧化,形成的高鐵肌紅蛋白導(dǎo)致肉色變成暗紅色,影響其感官品質(zhì),也影響人們的食欲,NaNO2的添加可以使肉制品中產(chǎn)生具有誘人的鮮紅色的亞硝基肌紅蛋白[21]。如表2所示,與對照組相比,NaNO2的添加顯著提高了風(fēng)干腸的a*值(P<0.05),且NaNO2添加量越大,a*值越高,但當(dāng)NaNO2添加量超過0.10 g/kg時,a*值增加不顯著(P>0.05)。此外,經(jīng)NaNO2腌制的風(fēng)干腸在整個風(fēng)干發(fā)酵期間a*值保持穩(wěn)定(P>0.05),與NaNO2添加量不相關(guān)。Riel等[22]研究發(fā)現(xiàn),添加了NaNO2的煙熏型香腸在貯藏的1~28 d內(nèi),a*值無顯著性變化(P>0.05)。Terns等[23]對乳化腸貯藏期間的品質(zhì)變化進(jìn)行研究,結(jié)果表明添加了NaNO2的產(chǎn)品在0~84 d內(nèi)a*值差異不顯著(P>0.05)。這表明添加NaNO2的產(chǎn)品紅度值比較穩(wěn)定。從表2還可以看出,只有第0天時,當(dāng)NaNO2添加量超過0.10 g/kg,可顯著降低風(fēng)干腸的L*值(P<0.05),且隨著添加量的增加,差異不顯著(P>0.05)。這可能是由于高含量NaNO2的添加使風(fēng)干腸在混料和灌制的過程中立即形成更多灰色和棕色的肌紅蛋白,從而使產(chǎn)品的L*值降低[24]。第3~12天時,4 組風(fēng)干腸的L*值均保持穩(wěn)定且差異不顯著(P>0.05)。

        如表3所示,添加了NaNO2的3 組風(fēng)干腸的a*值顯著高于對照組(P<0.05),且與表2相比,對照組風(fēng)干腸的a*值在熟制后降低,這是因為NaNO2的添加使風(fēng)干腸中產(chǎn)生了亞硝基肌紅蛋白,在加熱時,蛋白質(zhì)部分變性,形成亞硝基血色原,為穩(wěn)定的紅色,這種物質(zhì)甚至可以在加熱至120 ℃的肉制品中保持性狀穩(wěn)定,從而使肉制品保持顏色的穩(wěn)定[18]。此外,當(dāng)NaNO2添加量超過0.10 g/kg時,可顯著降低風(fēng)干腸熟制初期(0 d)的L*值(P<0.05),熟制后期(6~12 d)4 組風(fēng)干腸的L*值無顯著性差異(P>0.05)。且4 組風(fēng)干腸均在第0天呈現(xiàn)最高的L*值,第3天顯著降低(P<0.05)并在之后的發(fā)酵過程中保持穩(wěn)定(P>0.05),這與表2研究結(jié)果一致。

        表3 風(fēng)干腸發(fā)酵不同時間熟制后a*值和L*值的變化Table 3 Changes in a* values and L* values in cooked dry sausages with different fermentation times

        2.5 脂肪氧化分析

        脂肪適度氧化時可以產(chǎn)生一些相應(yīng)的醛、醇、酮和酯等,使肉制品呈現(xiàn)出典型的動物油脂味及香甜的果香味等,但過度氧化會導(dǎo)致肉制品產(chǎn)生酸敗現(xiàn)象,并使得產(chǎn)品的質(zhì)地、顏色和營養(yǎng)價值發(fā)生惡化,對人體健康有一定的危害[2]。本實驗通過在發(fā)酵過程中測定風(fēng)干腸的POV和TBARS值評估NaNO2對脂肪氧化的影響。

        POV作為檢測脂肪初級氧化程度的重要指標(biāo),其指示的是過氧化物的產(chǎn)生。如圖3A所示,4 組風(fēng)干腸的初始POV均為0.115 mmol/kg左右,0~3 d急劇增長并在第3天達(dá)到最高值,隨后逐漸降低,這表明此時過氧化物的形成速率比其分解速率慢,而發(fā)酵初期POV的增加可能是因為在原料肉的切碎以及混勻的過程中,脂肪暴露于空氣中而使氧化更易發(fā)生[25]。從圖3A還可以看出,添加NaNO2的風(fēng)干腸,其POV顯著低于對照組(P<0.05),且添加量越大,POV越?。≒<0.05),這說明NaNO2的添加可以有效地抑制風(fēng)干腸中過氧化物的生成。

        TBARS值是檢測脂肪氧化次級產(chǎn)物的重要指標(biāo),也是影響產(chǎn)品風(fēng)味的重要指標(biāo),如果過高則會使食品產(chǎn)生哈喇味[26]。如圖3B所示,隨著風(fēng)干發(fā)酵的進(jìn)行,各組風(fēng)干腸的TBARS值均呈逐漸上升的趨勢。發(fā)酵初期,TBARS值增加速率相對緩慢,這可能是因為發(fā)酵初期主要是脂肪氧化初級產(chǎn)物的大量積累階段,且分解速率較慢,所以次級氧化產(chǎn)物積累還比較少,發(fā)酵后期,TBARS值增加速率較快,說明此階段脂肪氧化的初級產(chǎn)物生成速率減慢而分解速率加快,脂肪氧化的程度加大,次級產(chǎn)物含量增多。

        從圖3B還可以看出,與對照組相比,添加了NaNO2的3 組風(fēng)干腸在0~12 d內(nèi)TBARS值均處于較低的狀態(tài),且NaNO2添加量越大,TBARS值越低(P<0.05)。較低的TBARS值說明NaNO2具有良好的抑制脂肪次級氧化的作用。亞硝酸鹽在肉制品中可以通過幾種不同的方式來抑制脂肪的氧化:通過與血紅素蛋白中心的鐵配位而形成穩(wěn)定的復(fù)合物,從而防止氫過氧化物被血紅素蛋白催化分解;與肉中的一些成分反應(yīng),形成具有抗氧化活性的亞硝基和亞硝?;衔?;除此之外還可以通過與碳-碳雙鍵反應(yīng)來穩(wěn)定脂質(zhì)部分[7]。

        圖3 風(fēng)干腸發(fā)酵過程中脂肪氧化的變化Fig. 3 Changes in lipid oxidation in sausages during fermentation

        2.6 揮發(fā)性風(fēng)味化合物分析

        在風(fēng)干腸發(fā)酵的第0天和第12天,利用SPME-GC-MS提取并鑒定出63 種揮發(fā)性化合物。將這些化合物分為8 類,如表4所示,包括12 種醛、11 種醇、4 種酮、6 種酸、6 種酯、5 種烷烴、16 種烯烴以及3 種其他物質(zhì),這些化合物主要來源于碳水化合物代謝,蛋白質(zhì)水解,脂肪水解和氧化以及香辛料。

        碳水化合物發(fā)酵和氨基酸降解是肉制品發(fā)酵過程中產(chǎn)生風(fēng)味的重要途徑[27]。如表4所示,2,3-丁二醇、3-羥基-2-丁酮、乙酸和丙酸是由乳酸菌代謝風(fēng)干腸中的碳水化合物產(chǎn)生[28]。細(xì)菌發(fā)酵可以促進(jìn)風(fēng)干腸中肌肉蛋白質(zhì)降解成游離氨基酸,氨基酸通過微生物轉(zhuǎn)氨酶轉(zhuǎn)化為α-酮酸,進(jìn)而代謝成相應(yīng)的醛。此外,醛可以通過醇脫氫酶和醛脫氫酶轉(zhuǎn)化成相應(yīng)的醇和羧酸[29]。風(fēng)干腸中的2-甲基丙醛、2-甲基丁醛、3-甲基丁醛、苯甲醛和苯乙醛以及它們相應(yīng)的醇和酸,分別源自纈氨酸、異亮氨酸、亮氨酸和苯丙氨酸的降解。如表4所示,NaNO2的添加顯著降低了風(fēng)干腸中2-辛烯醛、2-甲基丁醛、2-辛烯醇、3-甲基-1-丁醇及它們所對應(yīng)的酸的含量(P<0.05),但與NaNO2的添加量不相關(guān)(P>0.05)。

        脂肪氧化也是風(fēng)干腸發(fā)酵過程中產(chǎn)生揮發(fā)性化合物并改善風(fēng)味的重要途徑之一。在63 種揮發(fā)性化合物中,線性醛、酮及其相應(yīng)的醇、酸和酯以及烷烴是由脂肪的自動氧化產(chǎn)生[30]。己醛、庚醛和壬醛可能分別是亞油酸、n-6和n-9多不飽和脂肪酸氧化的產(chǎn)物[4]。己烷和庚烷通常由脂肪自動氧化產(chǎn)生的過氧化物經(jīng)分子重新排列而產(chǎn)生[31]。當(dāng)這些化合物達(dá)到一定濃度時,即可產(chǎn)生風(fēng)干腸特有的發(fā)酵香味。如表4所示,在第0天時揮發(fā)性化合物只檢測出了壬醛,隨著發(fā)酵時間的延長,脂肪氧化促進(jìn)了醛類和酮類物質(zhì)的大量生成,第12天時,與對照組相比,NaNO2的添加顯著降低了風(fēng)干腸中己醛的相對含量(P<0.05),但與NaNO2的添加量不相關(guān)(P>0.05)。己醛是肉中脂肪酸自動氧化最重要的產(chǎn)物,易產(chǎn)生具有刺激性的腐敗和辛辣的味道[32]。此外,NaNO2添加量顯著影響風(fēng)干腸中辛醛和壬醛的相對含量,這2 種物質(zhì)只有在NaNO2添加量大的風(fēng)干腸中有所減少。同時,與對照組相比,NaNO2的添加還顯著降低了作為脂肪酸氧化最終產(chǎn)物的酮類物質(zhì)的相對含量(P<0.05),NaNO2添加量越大,酮類物質(zhì)相對含量越?。≒<0.05)。醛類和酮類揮發(fā)性化合物相對含量的減少可以歸因于NaNO2抗脂肪氧化的作用,這與POV和TBARS值的測定結(jié)果相符。

        4 組風(fēng)干腸中,共檢測出22 種源于香辛料的揮發(fā)性化合物,包括3 種醇、16 種烯烴和3 種其他物質(zhì),從表4可以看出,此類物質(zhì)不受發(fā)酵時間以及NaNO2添加量的影響(P>0.05)。

        表4 風(fēng)干腸揮發(fā)性風(fēng)味化合物相對含量的變化Table 4 Changes in relative contents of volatile flavor compounds in sausages

        續(xù)表4

        3 結(jié) 論

        本實驗研究不同NaNO2添加量對自然發(fā)酵哈爾濱風(fēng)干腸理化特性及揮發(fā)性化合物的影響。結(jié)果表明NaNO2添加量不影響風(fēng)干腸的pH值、水分活度和發(fā)酵后期(6~12 d)的L*值,但在發(fā)酵初期(0~3 d),當(dāng)NaNO2添加量達(dá)到0.10 g/kg時,可顯著降低風(fēng)干腸的L*值,且當(dāng)NaNO2添加量達(dá)到0.10 g/kg時,便可以有效抑制脂肪氧化,提高風(fēng)干腸的a*值。此外在發(fā)酵后期NaNO2添加量與殘留量之間相關(guān)性不顯著,后期可進(jìn)一步研究NaNO2殘留量在亞硝胺形成中的作用。微生物分析結(jié)果表明,NaNO2添加量不影響風(fēng)干腸中細(xì)菌總菌和乳酸菌的生長,但只有當(dāng)NaNO2添加量達(dá)到0.10 g/kg時,才可顯著降低大腸桿菌菌群的繁殖。與此同時,添加NaNO2還能夠抑制由脂肪氧化得到的氧化產(chǎn)物的產(chǎn)生,且與低NaNO2添加量風(fēng)干腸相比,當(dāng)NaNO2添加量達(dá)到0.10 g/kg時,可以抑制更多脂肪氧化產(chǎn)物的形成,但NaNO2的添加對一般的風(fēng)味化合物產(chǎn)生無不良影響且與NaNO2添加量不相關(guān)。綜上所述,可以將風(fēng)干腸中NaNO2的添加量減少為0.10 g/kg。

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