艾永斌, 楊旭升, 彭衛(wèi)華, 陳云梅, 徐涼燕, 羅劍, 夏云, 曾曉茂*
(1.四川申果莊省級(jí)大熊貓自然保護(hù)區(qū)管理處,四川越西616650; 2. 中國科學(xué)院成都生物研究所,成都610041;3. 中國科學(xué)院大學(xué),北京100049)
在兩棲動(dòng)物遺傳學(xué)和分子生物學(xué)的相關(guān)研究中,為了獲取DNA,常常需要獲得動(dòng)物的組織樣品。早期研究往往采取損傷性取樣,即處死動(dòng)物后獲取樣品。隨著人們保護(hù)意識(shí)的提高,非損傷性取樣即非損傷性基因取樣得到廣泛應(yīng)用,包括剪趾法、活體組織檢查和針刺取血等方法(Maddocketal.,2014)。相比之下,非損傷性取樣既可以滿足生物學(xué)研究的要求,也在一定程度上保護(hù)了物種的生存和繁殖。
在非損傷性取樣方法中,剪趾法對(duì)兩棲動(dòng)物傷害最大,主要是因?yàn)閮蓷珓?dòng)物適應(yīng)水陸兩棲的生活,棲息環(huán)境中存在大量病菌,皮膚作為免疫防御機(jī)制對(duì)于兩棲動(dòng)物抵御病菌至關(guān)重要,因此,剪趾或者剪尾易導(dǎo)致兩棲動(dòng)物死亡。Parris等(2010)在3種無尾類中比較了口腔取樣、剪趾取樣、蝌蚪剪尾取樣對(duì)動(dòng)物的傷害程度,發(fā)現(xiàn)剪趾法對(duì)動(dòng)物傷害最大,在實(shí)驗(yàn)室飼養(yǎng),同時(shí)用消炎藥處理傷口的前提下,非損傷性取樣后西方蟾蜍Bufoboreas的死亡率為0.35%。此外,在野外兩棲動(dòng)物的監(jiān)測項(xiàng)目中,通常會(huì)采用剪趾法作標(biāo)志重捕,而剪趾會(huì)影響動(dòng)物的存活率和重捕率,進(jìn)而影響對(duì)整個(gè)種群數(shù)量的評(píng)估(McCarthyetal.,2009;吳軍等,2013)。
目前報(bào)道的用于兩棲動(dòng)物的非損傷性取樣方法有口腔擦拭取樣和體表皮膚擦拭取樣:Poschadel和M?ller(2004)描述了在陸龜科Testudinidae、蛙科Ranidae、蠑螈科Salamandridae、蟾蜍科Bufonidae動(dòng)物中通用的口腔取樣方法,即用1個(gè)小勺子輕輕打開動(dòng)物口腔,然后用棉簽沾取口腔內(nèi)的黏液;Broquet等(2007)在高山歐螈Triturusalpestris和無斑雨蛙Hylaarborea中驗(yàn)證了口腔擦拭得到的DNA樣品可以用于微衛(wèi)星分型研究;Mendoza等(2012)在卵齒蟾Eleutherodactylusjohnstonei中用棉簽擦拭表皮來獲取DNA樣品,并用16S rRNA做了分析;Guo等(2013)通過電極刺激中國大鯢Andriasdavidianus的體表,收集皮膚黏液和皮膚脫落物作為組織樣品;Maddock等(2014)在蚓螈目Gymnophiona 5個(gè)物種中嘗試了口腔擦拭、皮膚擦拭取樣,均成功獲取DNA。
迄今,采用口腔擦拭取樣在兩棲動(dòng)物中應(yīng)用較多,但此法受動(dòng)物個(gè)體限制,小型個(gè)體或幼體不易操作。相對(duì)而言,體表皮膚擦拭取樣應(yīng)用更廣泛,不受發(fā)育期的限制,適用于成體、幼體或蝌蚪期任一發(fā)育階段。但已知的皮膚擦拭取樣的研究局限于個(gè)別物種,能否普及到各類群尚不得知;另一方面,已知的取樣方法多為在實(shí)驗(yàn)室對(duì)活體的操作,不適用于野外就地取樣。基于此,本研究通過比較分析,嘗試野外就地體表擦拭取樣、野外就地干燥保存、DNA高效提取等方法,對(duì)四川申果莊省級(jí)大熊貓自然保護(hù)區(qū)內(nèi)的有尾兩棲類及無尾兩棲類6科10屬11種進(jìn)行研究,以期驗(yàn)證體表擦拭取樣在野外工作中的可行性。
2017年4月和6月對(duì)四川申果莊省級(jí)大熊貓自然保護(hù)區(qū)(102°42′00″~102°54′17″E,28°28′13″~28°41′54″N)內(nèi)的有尾類及無尾類就地隨機(jī)取樣,共計(jì)6科10屬11種,采樣信息見表1。
表1 四川申果莊省級(jí)大熊貓自然保護(hù)區(qū)物種采樣信息Table 1 Information of samples collected from Shenguozhuang Provincial Giant Panda Nature Reserve, Sichuan
注: 物種分類系統(tǒng)按費(fèi)梁等(2009)和Frost(2017)
Note: The classification follows Feietal., 2009 and Frost, 2017
1.2.1體表擦拭取樣輕輕捉住動(dòng)物,就地用流溪清水沖洗干凈,取無菌棉簽在體表(背部或腹部)擦拭至棉簽濕潤,然后將棉簽置入EP管。
1.2.2口腔擦拭取樣輕輕捉住動(dòng)物,就地用流溪清水沖洗干凈,用邊角圓潤的勺子輕輕打開口腔,將棉簽伸入口中,擦拭至棉簽濕潤,然后將棉簽置入EP管。
1.2.3剪趾取樣體表擦拭和口腔擦拭取樣結(jié)束后,剪取動(dòng)物第二節(jié)關(guān)節(jié)處的腳趾,保存在裝有95%乙醇的EP管中,取樣完成后將動(dòng)物就地釋放。
棉簽擦試樣品(體表、口腔)置于密封袋中,EP管蓋敞開,袋中放硅膠,封住密封袋,待棉簽完全干燥(大約24 h)后合上EP管蓋。在野外可將樣品放置在常溫環(huán)境下(20~25 ℃),待回到實(shí)驗(yàn)室將其保存在-20 ℃。剪趾樣本回到實(shí)驗(yàn)室后更換1次95%乙醇,-20 ℃保存。
每個(gè)物種隨機(jī)抽取2~15個(gè)樣本,分2組提取DNA,其中一組用常規(guī)高鹽法提取,另一組用試劑盒提取。使用TIANGEN公司的口腔拭子基因組DNA提取試劑盒(離心柱型)(TIANamp Swab DNA Kit,DP322),根據(jù)說明書操作獲得DNA樣品,并于-20 ℃保存。
PCR擴(kuò)增分別選取了16SrRNA通用引物1對(duì)、COⅠ專一引物1對(duì)以及COⅠ通用引物4對(duì)(表2),引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。25 μL PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系:12.5 μL Taq MIX(EasyTaqTMDNA Polymerase、dNTPs和優(yōu)化的反應(yīng)緩沖液反應(yīng)終濃度為2×,2×EasyTaq PCR SuperMix;全式金AS111-01,北京);上、下游引物各1 μL;1 μL DNA模板;添加ddH2O至25 μL。PCR反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性2 min;94 ℃變性30 s,53 ℃(COⅠ)或者55 ℃(16SrRNA)退火40 s,72 ℃延伸1 min,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸5 min。
PCR擴(kuò)增產(chǎn)物送生工生物工程(上海)股份有限公司成都測序部進(jìn)行ABI3730XL單向測序,使用PCR檢測時(shí)相對(duì)應(yīng)的上游引物進(jìn)行測序,將測序結(jié)果在NCBI中使用Nucleotide collection(nr/nt)數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST物種比對(duì)分析,以相似性程度判斷相應(yīng)物種DNA非損傷性取樣是否成功。
表2 引物信息Table 2 Primers used in PCR
注: COⅠ-1/COⅠ-2為鈴蟾屬Bombina專一引物, 其余COⅠ引物為通用引物
Notes: COⅠ-1/COⅠ-2 is a specific primer ofBombina, and the rest are universal primers
共獲得11個(gè)物種34只個(gè)體的46個(gè)剪趾、體表、口腔樣本共計(jì)46條線粒體基因序列,同一個(gè)體不同來源樣本的相同基因序列一致。BLAST比對(duì)結(jié)果表明,受檢樣本物種基因序列匹配度除疣刺齒蟾Oreolalatrugosus的1個(gè)樣本為97%,其余各樣本均在99%以上,部分樣本達(dá)100%。每只個(gè)體上傳 1條基因序列到GenBank,共計(jì)上傳34只個(gè)體34條基因序列(附錄Ⅰ)。
采用不同的DNA提取方法,剪趾樣本獲得的DNA質(zhì)量沒有明顯差異,均能獲得目標(biāo)物種的線粒體DNA序列,擴(kuò)增測序成功率100%;而擦拭樣本所獲得的DNA質(zhì)量表現(xiàn)出一定程度的差異,進(jìn)而影響測序的成功率。
“在翻譯過程中,有時(shí)譯者想把源語所承載的各種文化信息轉(zhuǎn)譯到譯入語中,因此“直譯”是他們的第一選擇。直譯帶有濃厚的源語文化痕跡”(趙德全,2009)。[14]
在對(duì)所有樣本使用相同引物(16SrRNA通用引物)的前提下,通過高鹽法提取擦拭樣本(口腔、體表)的DNA質(zhì)量相對(duì)較弱,部分樣本不能獲得物種基因序列,共提取DNA樣本27個(gè),測序成功 21個(gè),成功率為78%。而通過試劑盒提取擦拭樣本的DNA質(zhì)量良好,共提取DNA樣本12個(gè),測序成功率達(dá)100%(表4)。
表3 線粒體序列BLAST比對(duì)結(jié)果Table 3 BLAST results of the mitochondrial sequence
普雄原鯢Pseudohynobius puxiongensisYXS12-1COⅠ√/—/—P. puxiongensis100山溪鯢Batrachuperus pinchoniiYXS86COⅠ√/—/—Ba. pinchonii99YXS87COⅠ√/—/—Ba. pinchonii99YXS91COⅠ—/—/√Ba. pinchonii99續(xù)表3物種Species樣本SampleCOⅠ/16S rRNA體表/口腔/剪趾Skin/mouth/toe匹配物種Matching species in GenBank相似性Identity/%沙坪角蟾Atympanophrys shapingensisYXS11-316S rRNA√/—/—At. shapingensis100YXS71-116S rRNA√/—/—At. shapingensis100YXS77-116S rRNA—/√/—At. shapingensis100棕點(diǎn)湍蛙Amolops loloensisYXS79-1COⅠ√/—/—Am. loloensis100YXS83-1COⅠ√/—/—Am. loloensis100YXS53-4COⅠ—/—/√Am. loloensis100昭覺林蛙Rana chiaoensisYXS60-1COⅠ√/—/—Ra. chaochiaoensis100YXS89COⅠ—/—/√Ra. chaochiaoensis100寶興樹蛙Rhacophorus dugriteiYXS65-116S rRNA√/—/—Rh. dugritei99YXS82-116S rRNA√/—/—Rh. dugritei99
注: YXS65-1中, YXS65為野外采集標(biāo)本號(hào), -1為該標(biāo)本所取的剪趾, 或體表擦拭, 或口腔擦拭樣本號(hào); 下同
Note: YXS65 is number of the field collected specimen, -1 is the ID of the specimen from the toe, skin, or mouth; the same below
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,剪趾樣本使用4種通用COⅠ引物均可擴(kuò)增并成功測序。而擦拭樣本在模板全部使用試劑盒提取DNA的前提下,運(yùn)用6對(duì)不同線粒體基因引物進(jìn)行DNA擴(kuò)增,不同類群物種明顯受引物特異性的局限,擴(kuò)增成功率受到明顯影響。COⅠ通用引物VR1d/VF1d僅中華蟾蜍華西亞種Bufogargarizansandrewsi擴(kuò)增并測序成功;通用引物F/R也僅在棕點(diǎn)湍蛙Amolopsloloensis和昭覺林蛙Ranacliaoensis2個(gè)物種中擴(kuò)增成功。4對(duì)COⅠ通用引物均不能在大蹼鈴蟾Bombinamaxima中擴(kuò)增成功,只有使用鈴蟾屬Bombina專一引物才成功獲得該物種序列。16SrRNA通用引物雖然在角蟾科Megophryidae物種以及樹蛙科Rhacophoridae物種中可以成功擴(kuò)增,但卻不能擴(kuò)增鈴蟾科Bombinatoridae物種大蹼鈴蟾(表5)。
已有的兩棲類體表擦拭取樣的研究比較局限,只在零星的幾個(gè)物種中有報(bào)道。Mendoza等(2012)從離趾蟾Eleutherodactylusjohnstonei的68只個(gè)體中獲取體表涂抹樣本,使用DNeasy提取試劑盒、鹽析、酚-氯仿抽提等方法提取DNA,并通過擴(kuò)增16SrRNA的線粒體基因比較了提取DNA的質(zhì)量,證明在該物種中獲取上皮脫落組織是可用的。Pichlmüller等(2013)利用皮膚擦拭取樣在火蠑螈Salamandrasalamandra的幼體中獲得DNA并完成了微衛(wèi)星分型。
本研究對(duì)四川申果莊省級(jí)大熊貓保護(hù)區(qū)內(nèi)的6科10屬11種兩棲動(dòng)物隨機(jī)就地體表擦拭取樣,這些動(dòng)物涵蓋有尾及無尾兩棲類多個(gè)類群的多個(gè)物種,并涉及多種生境類群。通過對(duì)PCR產(chǎn)物的測序分析,在所有受檢物種中,研究獲得的COⅠ序列和16SrRNA序列與GenBank中相應(yīng)物種的序列相似性均在97%以上,絕大部分樣本匹配度達(dá)到99%和100%,表明擦拭獲得的DNA均可以擴(kuò)增獲得目標(biāo)物種序列。
由此說明,體表擦拭獲取DNA的方法在兩棲動(dòng)物各類群中可以廣泛應(yīng)用。
表4 不同方法提取不同物種樣本的結(jié)果比較Table 4 Comparison of extracted DNA in different sample of species by different methods
注Note: ×/—/— 測序失敗的體表樣本the skin sample of failing to sequence
表5 不同引物擴(kuò)增獲得的測序成功率Table 5 The sequencing success rate of PCR amplification using 6 primers
注: 引物Chmf4/Chmr4、COⅠ-CO2/COⅠ-CO4和COⅠ-CO1/COⅠ-CO3混合使用, 即上游引物Chmf4、COⅠ-CO2、COⅠ-CO1混合記作F, 下游引物Chmr4、COⅠ-CO4、COⅠ-CO3混合記作R; √ 該號(hào)樣本擴(kuò)增并測序成功, × 未成功, — 未進(jìn)行該引物檢測
Notes: Primers Chmf4/Chmr4, COⅠ-CO2/COⅠ-CO4 and COⅠ-CO1/COⅠ-CO3 were mixed and used in PCR, the upstream primers Chmf4, COⅠ-CO2 and COⅠ-CO1 are denoted as F, and the downstream primers Chmr4, COⅠ-CO4, COⅠ-CO3 mixture are denoted as R;√ indicates successful PCR amplification and DNA sequencing, × indicates failed PCR amplification and DNA sequencing, — indicates the detection was not carried out
與剪趾樣本相比,體表擦拭獲得的DNA質(zhì)量較差。同時(shí),擦拭樣本DNA提取難度更大,不同的DNA提取方法獲得的DNA質(zhì)量存在一定差異。其中,高鹽法可獲取數(shù)量較多的DNA,但所獲DNA純度較低,混有較多脂類、蛋白質(zhì)等有機(jī)物,這些雜質(zhì)可能影響PCR擴(kuò)增成功率;而試劑盒提取雖然會(huì)造成DNA量的損失,但可獲得純度更高的DNA,PCR擴(kuò)增成功率更高(邵勁松等,2013;李霞等,2015)。
實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在使用同一對(duì)引物P7/P8的前提下,隨機(jī)抽取的5個(gè)物種以試劑盒提取的DNA擴(kuò)增測序成功率為100%,高于高鹽法的78%。Mendoza等(2012)的研究中,使用試劑盒和鹽析法提取的DNA均成功地?cái)U(kuò)增到了16SDNA片段,其中,試劑盒提取的DNA擴(kuò)增成功率(90%)比高鹽法(80%)的高。
因此,針對(duì)體表擦拭樣本,建議使用試劑盒提取DNA。
與剪趾樣本相比,體表擦拭獲得的DNA量較少,含有較多環(huán)境細(xì)菌等非目標(biāo)物種的DNA。因通用性較強(qiáng)的引物對(duì)非目標(biāo)物種DNA也同樣擴(kuò)增,甚至?xí)a(chǎn)生優(yōu)勢擴(kuò)增情況,導(dǎo)致目標(biāo)物種擴(kuò)增失敗,因此,體表擦拭樣本在提取DNA時(shí)對(duì)引物專一性的要求有所增加。
實(shí)際上,同類非損傷性取樣研究中,研究者多針對(duì)其研究類群,設(shè)計(jì)專一引物獲得目標(biāo)物種基因序列。Prunier等(2012)在2種兩棲類物種中用非損傷性取樣的DNA樣本完成了14個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)的基因分型研究,對(duì)每個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)專門設(shè)計(jì)了特異性引物。針對(duì)離趾蟾完成的非損傷性取樣測序檢測,設(shè)計(jì)了特異性的16SrRNA引物(Mendozaetal.,2012)。Simon等(1994)在蚓螈目5個(gè)種的研究中也使用了特異性的16SrRNA和POMC引物。
體表擦拭取樣獲得的DNA量小且成分相對(duì)復(fù)雜,因此,建議針對(duì)各類群設(shè)計(jì)特異性強(qiáng)的引物進(jìn)行擴(kuò)增測序,以達(dá)到良好的目標(biāo)物種擴(kuò)增成功率。
致謝:野外數(shù)據(jù)采集得到四川省申果莊大熊貓自然保護(hù)區(qū)拉吉保護(hù)站、石門保護(hù)站和四川省林業(yè)廳野生動(dòng)植物與自然保護(hù)區(qū)管理處和管理站工作人員的大力支持,謹(jǐn)此深表謝意!
附錄Ⅰ 受檢標(biāo)本信息(括號(hào)中為各標(biāo)本上傳GenBank的COⅠ或16S rRNA序列號(hào),其中COⅠ序列用下劃線標(biāo)出)Appendix Ⅰ Specimens examined for COⅠ and 16S rRNA genes (GenBank accession numbers are in parentheses, and COⅠ sequences are underlined)