黃紅雨,趙虎,金曉艷,*
(1.昌吉職業(yè)技術(shù)學(xué)院,新疆昌吉831100;2.昌吉州中醫(yī)醫(yī)院,新疆昌吉831100)
紫蘇 (Perilla frutescens(L.)Britton) 是唇形科(Labiatae)一年生藥食同源植物[1]。紫蘇葉含有蛋白質(zhì)、揮發(fā)油、多酚、黃酮、色素等多種營(yíng)養(yǎng)成分,具有抗菌消炎、防過(guò)敏、解熱及抗氧化、調(diào)節(jié)血脂、抗腫瘤、改善肝機(jī)能等健康促進(jìn)功能[2-5]?;ㄇ嗨厥且环N黃酮類的水溶性色素,一般來(lái)源于梗、葉片和果實(shí)。目前經(jīng)常借助水提法[6]和酸化乙醇法提取[7],其中因水提法費(fèi)時(shí)、提取量少、效率低、雜質(zhì)較多等缺點(diǎn)應(yīng)用較少,酸化乙醇法應(yīng)用較廣泛,可防止非酰基化花青素降解。超聲波輔助提取法,是借助超聲波來(lái)提高得率的一種新技術(shù),有快速高效、低成本等優(yōu)點(diǎn),具有良好的發(fā)展前景廣闊。張?chǎng)蝃8]等對(duì)紫蘇葉花青素提取得出其最優(yōu)條件為料液比1∶30,50%乙醇體積,50℃處理120 min,此時(shí)提取率為5.6%。熊何健[9]等采用DPPH法測(cè)定桑葚花青素抗氧化能力,李敏[10]等采用1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除能力測(cè)定、鐵還原抗氧化能力測(cè)定(ferric-reducing antioxidant potential assay,F(xiàn)RAP)、氧自由基吸收容量測(cè)定 (oxygen radical absorbance capacity assay,ORAC)與細(xì)胞抗氧化性(cellular antioxidant activity,CAA)等方法對(duì)比了黑莓、黑米麩、藍(lán)莓、紫心苷中提取的花青素的抗氧化活性;此外,有報(bào)道對(duì)紫蘇葉揮發(fā)油以及紫蘇全草的抑菌活性進(jìn)行研究[11-13],但對(duì)紫蘇葉花青素的抑菌性研究較少。
近些年,花青素因其天然、安全性好、優(yōu)良效果、資源可更新等優(yōu)勢(shì)在保健品、香料、醫(yī)藥及化妝品等領(lǐng)域都有良好的發(fā)展前景[14]。本文以紫蘇葉為對(duì)象,探究其花青素的提取及抗氧化和相關(guān)抑菌特性,旨在為開發(fā)紫蘇葉花青素這一天然色素資源提供理論支撐。
紫蘇:采摘于浙江濱江區(qū),洗凈后烘干,粉碎后用60目篩過(guò)濾備用。DPPH:日本東京化成工業(yè)株式會(huì)社;2,4,6-三(2'-吡啶基)-1,3,5-三嗪(2,4,6-tri(2-pyridyl)-1,3,5-triazine,TPTZ):Sigma-Aldrich 公司;無(wú)水乙醇、雙氧水(30%)、硫酸亞鐵、VC、鄰苯三酚(焦性沒食子酸)、水楊酸、醋酸鈉(均為分析純):南京化學(xué)試劑股份有限公司。
FZ-200i系列精密電子天平:上海統(tǒng)舒電子科技有限公司;DHG-9075A電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上海林頻儀器股份有限公司;RE-52D旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)水浴槽:上海青浦滬西儀器廠;722N分光光度計(jì):上海精密科學(xué)儀器有限公司;SPH-103B超凡型小容量恒溫培養(yǎng)振蕩器:上海世平實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;HPX-9052MBE電熱恒溫培養(yǎng)箱:上海博迅醫(yī)療生物儀器股份有限公司;90 mm培養(yǎng)皿:南通市衛(wèi)寧實(shí)驗(yàn)器材有限公司。
金黃色葡萄球菌(ATCC29213)、大腸桿菌(ATCC44102)、熒光假單胞菌(Ip01)、腐敗希瓦氏菌(AEG10146.1):昌吉職業(yè)技術(shù)學(xué)院藥學(xué)與醫(yī)學(xué)技術(shù)分院實(shí)驗(yàn)室保藏。
2.1.1 乙醇提取法
2.1.1.1 單因素設(shè)計(jì)
提取溫度:稱取紫蘇葉粉末5.0 g,加入60%乙醇溶液,2.0%HCl,料液比為 1 ∶20(g/mL),提取 2.0 h??疾焯崛囟确謩e為 40、50、60、70、80 ℃時(shí)花青素的得率。
提取時(shí)間:稱取紫蘇葉粉末5.0 g,加入60%乙醇溶液,2.0%HCl,料液比為 1 ∶20(g/mL),60 ℃的條件下提取,考察提取時(shí)間分別 1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 h 時(shí)花青素的得率。
HCl體積分?jǐn)?shù):稱取紫蘇葉粉末5.0 g,加入60%的乙醇溶液,料液比為1∶20(g/mL),60℃的條件下提取2.0 h,考察HCl體積分?jǐn)?shù)分別為1.0%、1.5%、2.0%、2.5%、3.0%時(shí)花青素的得率。
乙醇體積分?jǐn)?shù):稱取紫蘇葉粉末5.0 g,分別加入40%、50%、60%、70%、80%的乙醇溶液,2.0%HCl,料液比為 1∶20(g/mL),60℃的條件下提取 2.0 h,考察花青素的得率。
2.1.1.2 正交試驗(yàn)
正交試驗(yàn)因素水平見表1。
表1 乙醇提取法正交試驗(yàn)因素水平表Table1 The table of factor-level of orthogonal test using ethanol extraction
在單因素基礎(chǔ)上,考察提取溫度、提取時(shí)間、HCl體積分?jǐn)?shù)、乙醇體積分?jǐn)?shù)等因素對(duì)紫蘇葉花青素得率的影響,利用L9(34)正交試驗(yàn)確定最佳工藝條件。
2.1.2 超聲波輔助提取法
2.1.2.1 單因素設(shè)計(jì)
在乙醇提取工藝的基礎(chǔ)上,選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%,進(jìn)行試驗(yàn)。
超聲功率:稱取紫蘇葉粉末5.0 g,在料液比1∶30(g/mL),40℃提取20 min,考查超聲功率分別為350、400、450、500、550 W 時(shí)花青素的得率。
超聲時(shí)間:稱取紫蘇葉粉末5.0 g,在超聲功率450 W,料液比1∶30(g/mL),40℃下提取,考查超聲時(shí)間分別為 10、15、20、25、30 min 時(shí)花青素的得率。
料液比:稱取紫蘇葉粉末5.0 g,在超聲功率450 W,40℃提取20 min,考查料液比分別為1∶10、1∶20、1 ∶30、1 ∶40、1 ∶50(g/mL)時(shí)花青素的得率。
超聲溫度:稱取紫蘇葉粉末5.0 g,在超聲功率450 W,料液比 1 ∶30(g/mL),提取 20 min,考查提取溫度分別為 20、30、40、50、60 ℃時(shí)花青素的得率。
2.1.2.2 正交試驗(yàn)
選擇料液比、超聲時(shí)間、超聲溫度、超聲提取功率4個(gè)因素,進(jìn)行L9(34)正交試驗(yàn)確定最佳工藝,見表2。
表2 超聲波輔助提取正交試驗(yàn)因素水平表Table2 The table of factor-level of orthogonal test using ultrasound-assisted extraction
pH 1.0緩沖液:配制0.02 mol/L的KCl溶液及0.2 mol/L鹽酸溶液,以25∶76的體積比混合,再用KCl溶液調(diào) pH(1.0±0.1)。pH 4.5 緩沖液:稱取 1.64 g NaAc溶解于 100 mL 蒸餾水中,調(diào) pH(4.5±0.1)。
取1.0 mL紫蘇葉花青素溶液,分別用pH 1.0和pH 4.5的緩沖液稀釋,反應(yīng)平衡120min后,測(cè)定其吸光值。
式 中 :A=(A520nm-A700nm)(pH1.0)-(A520nm-A700nm)(pH4.5);V為最終體積,mL;MW 為分子量,其值為449;DF為稀釋倍數(shù);ε為摩爾吸光系數(shù),其值為29 600;m 為樣品的質(zhì)量,g。
2.3.1 總抗氧化能力測(cè)定
FRAP法[15]:取4.9 mL FRAP試劑與0.1 mL樣品溶液,反應(yīng)10 min后測(cè)593 nm處吸光值,每組試驗(yàn)重復(fù)3次。
FRAP試劑:0.3mL醋酸緩沖液(pH 3.6):10 mmol/L TPTZ(溶于40 mmol/L鹽酸):20 mmol/L FeCl3=10∶1∶1(體積比),避光儲(chǔ)存。
2.3.2 DPPH·清除率的測(cè)定[16]
用無(wú)水乙醇配制0.1 mmol/L的DPPH溶液,儲(chǔ)存于棕色瓶中。將3.8 mL DPPH溶液和0.2 mL樣品溶液混勻反應(yīng)30 min,測(cè)定517 nm處吸光度A1;將3.8 mL DPPH溶液和0.2 mL樣品溶液、稀釋液(60%乙醇)混合搖勻,測(cè)定吸光值A(chǔ)0。試驗(yàn)重復(fù)測(cè)3次。
2.3.3 羥自由基(·OH)清除率的測(cè)定
參照Meng L等[17]方法,取2 mL磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS,pH=7.4),依次加入20 mmol/L乙二胺四乙酸(ethylenediaminetetraacetic acid,EDTA)和 12 mmol/L FeSO4混合溶液 0.1 mL,一定濃度的紫蘇花青素溶液1 mL、100 mmol/L H2O20.1 mL,用磷酸鹽緩沖液定容至5 mL,迅速混勻,置于37℃水浴培養(yǎng)15 min,水浴完成后,取出冷卻至室溫,并在510 nm波長(zhǎng)下測(cè)定各管溶液的吸光度。A0為未加花青素溶液的體系其吸光數(shù)值,A樣品為加入一定濃度紫蘇花青素溶液測(cè)定其吸光度值,記錄數(shù)據(jù),按下式計(jì)算清除率(%)。
2.3.4 超氧陰離子(O2-·)清除率的測(cè)定
參照Meng L等[17]方法,在各管中加入4 mL Tris-HCl(pH 8.2),2 mL 鄰苯三酚溶液(10 mmol/L),樣品溶液2 mL,2 mL超純水為對(duì)照。將各試管置于37℃水浴中反應(yīng)10 min。水浴完成后,各試管加1 mL鹽酸(6 mol/L,約22%)溶液終止反應(yīng),冷卻至室溫,并在325 nm波長(zhǎng)下測(cè)吸光度。A0為未加花青素溶液的體系其吸光數(shù)值,A樣品為加入一定濃度紫蘇花青素溶液測(cè)定其吸光度值,記錄數(shù)據(jù),計(jì)算公式如下:
2.4.1 菌種活化及菌懸液制備
將保存的菌種反復(fù)活化2次,細(xì)菌置于30℃孵育24 h。取活化好的供試菌采用梯度稀釋法用90 mL生理鹽水制成菌懸液,使菌液濃度到1×106cfu/mL~1×107cfu/mL,于4℃冰箱保存,備用。
2.4.2 抑菌活性測(cè)定
采用牛津杯法測(cè)定:取上述制備好的各待測(cè)菌液0.1 mL置于LB瓊脂平板表面,涂布均勻后置于30℃培養(yǎng)箱中10 min,表面干燥后等距離平放做好標(biāo)記的牛津杯,每支杯內(nèi)分別加入150 μL不同濃度樣品,對(duì)照采用無(wú)菌水,30℃孵育24 h~48 h,記錄抑菌活性,重復(fù)3次。
2.4.3 最小抑菌濃度(minimum inhibitory concentration,MIC)測(cè)定和最低殺菌濃度(minimum bactericidal concentration,MBC)
用對(duì)倍稀釋法將紫蘇葉提取液稀釋至0.312 5 mg/mL~10 mg/mL 6個(gè)梯度,分別吸取各個(gè)濃度梯度的紫蘇葉提取液1 mL與約15 mL培養(yǎng)基充分混勻,制備含樣液的平板,吸0.1 mL菌懸液均勻涂布后于30℃恒溫培養(yǎng)24 h,以完全無(wú)菌生長(zhǎng)的平板相對(duì)應(yīng)的濃度記為MIC。
將MIC試驗(yàn)中的無(wú)菌生長(zhǎng)的平板放回30℃培養(yǎng)箱,繼續(xù)孵育24小時(shí)后記錄,以完全無(wú)菌生長(zhǎng)的平板所對(duì)應(yīng)的濃度記為MBC。
3.1.1 單因素試驗(yàn)
提取溫度、提取時(shí)間、HCl體積分?jǐn)?shù)、乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)紫蘇葉花青素得率的影響見圖1。
從圖1A中知,花青素得率隨著溫度的增加而增多,60℃時(shí)花青素得率最大,為3.932 mg/100 g。溫度大于60℃時(shí),所得花青素得率反而降低??赡苁且?yàn)闇囟壬撸肿訚B透和運(yùn)動(dòng)速度變快,利于花青素物質(zhì)的溶出,然而溫度過(guò)高會(huì)使溶劑中的乙醇濃度降低,也會(huì)使花青素結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定而被分解,導(dǎo)致得率降低,因此選擇60℃為最佳。
圖1 提取溫度、提取時(shí)間、HCl體積分?jǐn)?shù)、乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)紫蘇葉花青素得率的影響Fig.1 The effect of extraction temperature,extraction time,HCl volume fraction,ethanol volume fraction on the yield of anthocyanin from Perilla frutescens leaves
從圖1B中看出,花青素得率在2.0 h時(shí)達(dá)到最大,為3.967 mg/100 g。低于2.0 h,花青素溶出的量較少;超過(guò)2.0 h,長(zhǎng)時(shí)間處理使得的花青素穩(wěn)定性下降,所以最佳提取時(shí)間為2.0 h。
從圖1C中看出,隨著鹽酸體積分?jǐn)?shù)的升高,所得花青素得率增大,鹽酸體積分?jǐn)?shù)在2.0%達(dá)到最大,為3.944mg/100g;大于2.0%時(shí),所得花青素得率有所下降,說(shuō)明鹽酸體積分?jǐn)?shù)為2%時(shí),此時(shí),花青素結(jié)構(gòu)穩(wěn)定。
從圖1D可知,花青素得率隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加而呈先增加后減少趨勢(shì)。最終選擇乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%是因?yàn)?0%的乙醇體積分?jǐn)?shù)與花青素粗提物的極性相近,此時(shí)花青素溶解程度最好,更便于花青素類化合物的溶出。乙醇濃度過(guò)低時(shí),不利于花青素的溶出;過(guò)高時(shí)會(huì)增加紫蘇葉中其他類物質(zhì)的溶出,干擾因素增加。
3.1.2 正交試驗(yàn)
在單因素的基礎(chǔ)上進(jìn)行正交試驗(yàn),乙醇提取法試驗(yàn)結(jié)果見表3。
表3 乙醇提取法正交試驗(yàn)結(jié)果表Table3 Thetableoforthogonaltestresultsusingethanolextraction
從表3中看出,對(duì)紫蘇葉花青素提取影響因素由大到小依次為提取溫度、乙醇體積分?jǐn)?shù)、HCl體積分?jǐn)?shù)、提取時(shí)間。由極差分析知,最佳因素水平組合為A2B3C3D2,即提取溫度為60℃,提取2.5 h,乙醇和鹽酸體積分?jǐn)?shù)60%和2.5%,在此條件下,進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),重復(fù)3次,所得紫蘇葉花青素得率為4.003 mg/100 g,略多于正交試驗(yàn)最優(yōu)組合(處理6)A2B3C1D2的3.978 mg/100 g,所以選擇A2B3C3D2為最佳提取工藝。
3.2.1 單因素試驗(yàn)
超聲功率、超聲時(shí)間、料液比、超聲溫度對(duì)紫蘇葉花青素得率的影響見圖2。
圖2 超聲功率、超聲時(shí)間、料液比、超聲溫度對(duì)紫蘇葉花青素得率的影響Fig.2 The effect of ultrasonic power,ultrasonic time,solid-liquid ratio,ultrasonic temperature on the yield of anthocyanin from Perilla frutescens leaves
由圖2A知,超聲功率為450 W時(shí),花青素得率最高。過(guò)高的超聲功率對(duì)花青素有破壞作用,高提取功率下,樣品溫度會(huì)升高太快,花青素結(jié)構(gòu)遭到破壞,得率下降,低提取功率下,反應(yīng)溫度不會(huì)升高過(guò)快,得率隨功率(小于450 W)的增加有增大的趨勢(shì)。
由圖2 B知,當(dāng)超聲時(shí)間為20 min時(shí),花青素得率最高。隨著超聲波加熱時(shí)間的延長(zhǎng)得率呈現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì)。超聲波在短時(shí)間內(nèi)即可造成細(xì)胞破碎,增加花青素的溶出,得率升高;降低的原因可能是花青素在長(zhǎng)時(shí)間加熱過(guò)程中,熱穩(wěn)定性發(fā)生了改變,同時(shí)也會(huì)增加其他高分子雜質(zhì)的進(jìn)出,從而得率降低。
由圖2 C知,加大料液比,花青素得率會(huì)不斷增大,在料液比為1∶30(g/mL)時(shí),花青素得率達(dá)到最大,隨后,得率基本維持不變。是因?yàn)榱弦罕容^低時(shí),花青素的浸出率低,而料液比較高時(shí),浸提液中花青素濃度高,得率也相應(yīng)增高。
由圖2D知,隨著溫度的升高,所得花青素得率逐漸增多,40℃達(dá)到最大,為5.282 mg/100 g。溫度超過(guò)40℃時(shí),所得花青素含量反而降低??赡苁且?yàn)楦邷叵?,滲透和熱降解速度變快,花青素結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定而被分解,導(dǎo)致得率降低。
3.2.2 正交試驗(yàn)
超聲波輔助提取法正交試驗(yàn)結(jié)果見表4。
表4 超聲波輔助提取法正交試驗(yàn)結(jié)果表Table4 The table of orthogonal test results using ultrasoundassisted extraction
由表4表明,各因素對(duì)測(cè)定結(jié)果的影響次序?yàn)椋撼暪β剩境暅囟龋玖弦罕龋境晻r(shí)間。由極差分析得出最佳提取工藝為A'2B'2C'3D'2:超聲功率450 W,超聲時(shí)間 20 min,料液比 1∶40(g/mL),超聲溫度 40 ℃。在此條件下,進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn),重復(fù)3次,所得紫蘇葉花青素得率為5.489 mg/100 g,略多于正交試驗(yàn)最優(yōu)組合(處理 6)A'2B'3C'1D'2的 5.424 mg/100 g,所以選擇A'2B'2C'3D'2為最佳提取工藝。
3.2.3 乙醇提取與超聲波輔助提取花青素對(duì)比分析
不同提取方法比較見表5。
表5 不同提取方法比較Table5 Comparison of different extraction methods
由表5可知,超聲波輔助提取法較乙醇提取法,花青素得率提高了0.37倍,提取時(shí)間縮短了86.67%,提取溫度降低,降低了成本,進(jìn)一步對(duì)得到的花青素進(jìn)行活性研究。花青素雖有多種生物活性,但是一種不穩(wěn)定的天然色素[18],其穩(wěn)定性受到各種因素的影響,給花青素的保存、開發(fā)、利用造成一些不便,可在以后試驗(yàn)中嘗試膜過(guò)濾等方法提取純化,其組成成分及含量變化可通過(guò)液相色譜質(zhì)譜聯(lián)用(liquid chromatograph mass spectrometer,LC-MS)分析鑒定,其單體制備和合成途徑等均需進(jìn)一步探討。
3.3.1 FRAP法
FRAP法[19]反映的是三價(jià)鐵離子還原成二價(jià)鐵離子的能力。紫蘇葉花青素和VC的鐵離子還原/抗氧化能力見圖3。
圖3 紫蘇葉花青素和VC的鐵離子還原/抗氧化能力Fig.3 The ferric reducing/antioxident power of anthocyanins from Perilla frutescens leaves and VC
由圖3可知,在測(cè)定濃度范圍內(nèi),紫蘇葉花青素粗提物具有一定的鐵離子還原/抗氧化能力,抗氧化能力隨樣品的質(zhì)量濃度的增加而增強(qiáng),VC對(duì)Fe3+還原能力明顯強(qiáng)于紫蘇葉花青素粗提物。紫蘇葉花青素抗氧化活性與其化學(xué)結(jié)構(gòu)組分有關(guān)系,改變芳香環(huán)上的基團(tuán)種類及位置,抗氧化性隨之改變;紫蘇葉提取物抗氧化能力小于VC,主要是因?yàn)樘崛∥餅榇痔嵛铮腔钚晕镔|(zhì)及雜質(zhì)。
3.3.2 DPPH·清除能力
DPPH·是一種穩(wěn)定自由基,在517 nm處存在最大吸收值,其吸光值與濃度呈相關(guān)關(guān)系,當(dāng)加入自由基清除劑時(shí),未配對(duì)電子被配對(duì),自由基被抑制,吸光值會(huì)變小,以此來(lái)評(píng)價(jià)自由基清除能力[20]。紫蘇葉花青素和VC對(duì)DPPH·的清除能力見圖4。
圖4 紫蘇葉花青素和VC對(duì)DPPH·的清除能力Fig.4 Scavenging activities of anthocyanins from Perilla frutescens leaves and VCon DPPH·
由圖4可知,當(dāng)質(zhì)量濃度低于5%時(shí),VC對(duì)DPPH·的清除能力隨質(zhì)量濃度的增加而增強(qiáng),而花青素粗提物對(duì)DPPH·清除率緩慢增強(qiáng);當(dāng)質(zhì)量濃度繼續(xù)增大,清除率趨于平緩,這與蔣其忠[21]和王彥平[22]中的結(jié)果趨勢(shì)一致。VC清除DPPH·能力明顯高于花青素粗提物,這一結(jié)果與FRAP法結(jié)果相對(duì)應(yīng)。
3.3.3 ·OH清除能力
·OH是迄今所知生物體毒性最強(qiáng)、危害最大的一種重要的活性氧自由基,幾乎可以和所有的細(xì)胞組分反應(yīng)。紫蘇葉花青素和VC對(duì)·OH的清除能力見圖5。
由圖5可知,紫蘇葉花青素粗提物對(duì)·OH具有一定的清除能力,在測(cè)定范圍內(nèi),其濃度與清除率呈正相關(guān)關(guān)系,VC對(duì)·OH清除能力大于同濃度下紫蘇葉粗提取物。
圖5 紫蘇葉花青素和VC對(duì)·OH的清除能力Fig.5 Scavenging activities of anthocyanins from Perilla frutescens leaves and VCon·OH
3.3.4 O2-·清除能力
O2-·是人體內(nèi)產(chǎn)生的活性氧自由基,可在短時(shí)間內(nèi)引發(fā)自由基鏈?zhǔn)椒磻?yīng),能引發(fā)體內(nèi)脂質(zhì)過(guò)氧化,加快機(jī)體的衰老,危害人體健康。紫蘇葉花青素和VC對(duì)O2-·的清除能力見圖6。
圖6 紫蘇葉花青素和VC對(duì)O2-·的清除能力Fig.6 Scavenging activities of anthocyanins from Perilla frutescens leaves and VCon O2-·
由圖6知,紫蘇花青素粗提物對(duì)O2-·有一定的清除能力,同濃度下,清除能力低于VC,清除O2-·能力強(qiáng)于·OH能力,說(shuō)明其對(duì)不同自由基的清除具有選擇性,可以有針對(duì)性的清除某種自由基,提高清除能力。
表6 不同濃度紫蘇葉花青素粗提物的抑菌情況Table6 The antibacterial situation on different concentrations of anthocyanins from Perilla frutescens leaves
不同濃度紫蘇葉花青素粗提物的抑菌情況見表6。
采用打孔法觀察體外抑菌活性,發(fā)現(xiàn)抑菌圈直徑大小不一。不同濃度紫蘇葉花青素粗提物對(duì)不同的菌株均有一定的抑制效果,紫蘇葉花青素粗提物對(duì)大腸桿菌的抑菌效果最好,對(duì)腐敗希瓦氏菌的抑菌效果最差。紫蘇葉花青素粗提物對(duì)供試菌的MIC及MBC見表7。
表7 紫蘇葉花青素粗提物對(duì)供試菌的MIC及MBCTable7 The effect of anthocyanins from Perilla frutescens leaves on MIC and MBC of tested bacteria
紫蘇葉花青素粗提物的MIC值越小,其抑菌性越強(qiáng),抑菌效果越好。由表7知,紫蘇葉花青素粗提物在濃度為5 mg/mL對(duì)4種菌均具有抑制效果,對(duì)大腸桿菌的抑制效果較強(qiáng),其MIC和MBC分別為1.25 mg/mL和2.5 mg/mL,對(duì)金黃色葡萄球菌和熒光假單胞菌的抑制效果相當(dāng),其MIC和MBC分別為2.5 mg/mL和5 mg/mL,對(duì)腐敗希瓦氏菌的抑菌效果最差?;ㄇ嗨貙?duì)某些細(xì)菌抑制方面有一定潛能,而其抑菌和殺菌機(jī)理還有待進(jìn)一步考證。
乙醇提取法提取紫蘇葉花青素最佳條件為2.5%HCl-60%乙醇60℃提取2.5 h,得率為4.003 mg/100 g;超聲波輔助提取法紫蘇葉花青素最佳提取工藝為超聲功率 450 W,超聲時(shí)間 20 min,料液比 1 ∶40(g/mL),超聲溫度40℃,得率為5.489 mg/100 g;超聲輔助提取法較乙醇提取法,花青素得率提高了0.37倍,提取時(shí)間縮短了86.67%,提取溫度降低,降低了成本。通過(guò)檢測(cè)FPAR法,發(fā)現(xiàn)紫蘇葉花青素具有較強(qiáng)的鐵離子還原氧化能力,此外紫蘇葉花青素對(duì)DPPH·、·OH、O2-·有特定的清除能力,因此花青素具有一定的抗氧化能力。不同濃度紫蘇葉花青素粗提物對(duì)不同的菌株均有一定的抑制性能,對(duì)大腸桿菌有較好的抑制作用,其MIC和MBC分別為1.25 mg/mL和2.5 mg/mL,對(duì)腐敗希瓦氏菌的抑制作用不明顯。